Xylanase is a class of enzymes that hydrolyze the linear polysaccharide ${\beta}$-1,4-xylan into xylose. This enzyme is applied in the process of paper making and may be used for the process of biofuel production in the future. The Paenibacillus donghaensis JH8, isolated from Donghae deepsea sediment and reported as a novel bacterium, was known to degrade xylan and its xylanase was characterized in this study. The enzyme was maximally induced in the presence of 0.1% xylan. The production of xylanase was started at early logarithmic phase and reached about 55 miliunit at stationary phase of growth. The optimal temperature and pH of extracellular xylanase were found to be $40^{\circ}C$ and pH 6.0, respectively. The activity of xylanase was inhibited by the presence of $Ca^{2+}$, $Mn^{2+}$, $Fe^{2+}$, $Cu^{2+}$, $Al^{3+}$ or EDTA, and activated by $K^+$, $Ag^+$ or DTT. This xylanase was stable at $40^{\circ}C$ for 120 min, but lost almost their activity in 30 min at $60^{\circ}C$. Zymography analysis of concentrated culture supernatant revealed one major band at 42 kDa and two faint bands at 68 and 120 kDa.
The gene encoding for isoamylase of the Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum (Pcc) LY34 was cloned and expressed into Escherichia coli $DH5{\alpha}$. Isoamylase catalyzes the hydrolysis of ${\alpha}-1,6-glycosidic$ linkages specifically in amylopectin, glycogen, and derived oligosaccharides, while the enzyme did not hydrolyze ${\alpha}-1,4-glycosidic$ linkages of amylose. The isoamylase gene (glgX) had an open reading frame of 1,977 bp encoding 658 amino acid residues with a calculated molecular weight of 74,188 Da. The molecular weight of the enzyme was also estimated to be 74 kDa by activity staining of a SDS-PA gel. The mature GlgX had a calculated pI of 4.91. Isoamylase from Pcc LY34 had 70% amino acid identity with isoamylase from Pectobacterium chrysanthemi and contained the four regions conserved among all amylolytic enzymes. The isoamylase was optimally active at pH 7.0 and $40^{\circ}C$. GlgX was $Ca^{2+}-dependent$. The changes of Asp-335, Glu-370, and Asp-442 into Ala, respectively, using site-directed mutagenesis techniques showed that three residues are essential to isolamyalse (GlgX) activity. The sequences around those residues were highly conserved in isoamylase of different origins and GlgX of the glg operon in glycongen biosynthesis.
It is the most important thing to substitute sweet potato for wheat flour as the brewing material of Maggerley(Korean wine) in order to save precious wheat flour which is now consumed as the sole material in it. In this study, the fermenting mash material has been prepared with combination of wheat (KIorean wine) as a first step of sabing wheat flour consuming. The combination ratio of wheat flour and sweet potato starch in mashing, in this experiment, are such as mashing plot of 100% wheat flour (No.3 plot), 50% wheat flour plus 50 % of sweet potato starch (No.2plot), 30% wheat flour plus 70% starch syrup of sweet potato (No. 4 plot), and 60% wheat flour plus sweet potato starch (No. 1 plot). The results of fermentation and chemical components of each mash in experimental plot are as following : 1. Alocholic fermentation was most vigorous in No.4 plost among them, the next are in order to hydrolyze and break down the protein sourece to glucose and amino acid, the new enzymic source were added in experimantal amsh before putting yeasts, those enzymic sources have been developed and prepared in this laboratory No.4 and No.2 plot at same degree. Generally, the activities of alcholic fermentation of all plots are vigorous and fair. The acidity of each fermented mash is in the rangw of 3.7-4.8. 2. Amounts of amino acids in fermented mash are in the range of 145 mg per 100 ml and 158 mg for all experiments, and these amounts are much more than those of present commerical Maggerley. However, the amount of it in the No.4 plots is much less among the m, this is due to the lack of protein source in starch syrup. 3. Amounts of organic acids in fermented mash are in the range of 0.44g per 100ml and 0.62g, these amounts are generally much more than those of the present commercial Maggerley. 4. The result of sensory test for the experimental Maggerley shows good taste and flavour in comparison with those of commercial Maggerely. 5. It is proved that these experimental fermentation of Maggerley is succesful in the partial substitution of sweet potato starch potato starch for wheat flour, and it is also be able to make a good Maggerley in all aspects of quality.
Analysis of Production of Thermostable Alkaline Protease using Thermoactinomyces sp. E79. Jung, Sang Won, Sung-Sik Park, Yong-Cheol Park" Tae Kwang Oh2, and Jin-Ho Seo*, Department of Food Science and Technology, Seoul National University, Suwon 441-744, Korea, 1lnterdisciplinary program [or Biochemical Engineering & Biotechnology, Seoul National Univer5it}~ Seoul 151 "7421 Koreal 2Microbial Enzyme RU, Korea Research Institute of Bioscience & Biotechnology, Po. Box 1151 Yusong, Taejon 305"6001 Korea - This research was undertaken to analyze fermentation properties of Thermoactinomyces sp. E79 for production of a thermostable alkaline protease, which is able to specifically hydrolyze defatted soybean meal (DSM) to amino acids. TIle optimum pH for cell growth and protease production was pH 6.7, Thermoactinomyces sp. E79 did not grow at pHlO Among carbon sources tested, soluble starch was the best for protease production, while glucose repressed protease production. Tryptone was found to be the best nitrogen source for cell growth and soytone was good tor protease production. Oxygen transfer rate played an important role in producing thermostable alkaline protease. Ma'<..imum values of 6.58 glL of dry cell weight and 43.0 UJmL of protease activity were obtained in a batch fermentation using a 2.5 L jar fermentor at 1.93 X 102 hr-l of volumetric oxygen transfer coeff'jcient (kLa). Addition of 200 mgIL humic acid to the growth medium resulted in 1.64 times higher protease activity and 1.77 times higher cell growth than the case without humic acid addition.
A putative cyclomaltodextrinase gene (licd) was found from the genome of Listeria innocua ATCC 33090. The licd gene is located in the gene cluster involved in maltose/maltodextrin utilization, which consists of various genes encoding maltose phosphorylase and sugar ABC transporters. The structural gene encodes 591 amino acids with a predicted molecular mass of 68.6 kDa, which shares less than 58% of amino acid sequence identity with other known CDase family enzymes. The licd gene was cloned, and the dimeric enzyme with C-terminal six-histidines was successfully produced and purified from recombinant Escherichia coli. The enzyme showed the highest activity at pH 7.0 and 37℃. licd could hydrolyze β-cyclodextrin, starch, and maltotriose to mainly maltose, and it cleaved pullulan to panose. It could also catalyze the hydrolysis of acarbose to glucose and acarviosine-glucose. In particular, it showed significantly higher activity towards β-cyclodextrin and maltotriose than towards starch and acarbose. licd also showed transglycosylation activity, producing α-(1,6)- and/or α-(1,3)-linked transfer products from the acarbose donor and α-methyl glucopyranoside acceptor.
Chi, Won-Jae;Youn, Young Sang;Kim, Jong-Hee;Hong, Soon-Kwang
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.43
no.2
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pp.134-141
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2015
An agarolytic marine bacterium (H9) was isolated from the coastal seawater of the West Sea, South Korea. The isolate, H9, was gram-negative and rod-shaped with a smooth surface and polar flagellum. Cells grew at 20-30℃, between pH 5.0 and 9.0, and in ASW-YP (Artificial Sea Water-Yeast extract, Peptone) media containing 1-5% (w/v) NaCl. The G+C content was 41.56 mol%. The predominant isoprenoid quinone in strain H9 was ubiquinone-8. The major fatty acids (>10%) were C16:1ω7c (34.3%), C16:0 (23.72%), and C18:1ω7c (13.64%). Based on 16S rRNA gene sequencing, and biochemical and chemotaxonomic characterization, the strain was designated as Pseudoalteromonas sp. H9 (=KCTC23887). In liquid culture supplemented with 0.2% agar, the cell density and agarase activity reached a maximum level of OD = 4.32 (48 h) and OD = 3.87 (24 h), respectively. The optimum pH and temperature for the extracellular crude agarases of H9 were 7.0 and 40℃, respectively. Thin-layer chromatography analysis of the agarase hydrolysis products revealed that the crude agarases hydrolyze agarose into neoagarotetraose and neoagarohexaose. Therefore, the new agar-degrading strain, H9, can be applicable for the production of valuable neoagarooligosaccharides and for the complete degradation of agar in bio-industries.
Human pancreatic lipase is a digestive enzyme which is synthesized in pancreas, secreted into small intestine, and there hydrolyze the fat in food. Pancreatic lipase protein composes of catalytic domain and colipase-binding domain. In this research, the gene segments corresponding to total protein, catalytic domain, and co lipase-binding domain were cloned by PCR method, inserted into an expression vector, and then used to transform Escherichia coli BL21 (DE3). The recombinant proteins produced were purified and injected intramuscularly three times into laying hens. The egg yolk antibodies (IgY) were obtained from the egg yolks and tested for their antibody titer. Among three IgY, the IgY against colipase-binding domain showed the highest antibody titer. All three IgY had inhibitory effects on the porcine pancreatic lipase. Among them, the IgY against colipase-binding domain showed the highest inhibition effects. The fat diet with corn oil and IgY was administrated to the experimental rats and their blood compositions were examined with time course. The triglyceride concentration of treated rats was decrease meaningfully when compared with those of control rats. This suggested that the IgY against colipase-binding domain antigen inhibited pancreatic lipase in vivo.
In this study, attempts were made to develop a garlic juice extraction method that would result in minimum changes in quality. Protopectinase and a mutienzyme containing cellulase, pectinesterase, ${\beta}-glucanase$, etc. were applied to garlic residue after first extraction, and the yields of garlic juice and the flavor component changes of the juices were investigated. Enzyme concentrations of 0.04, 0.08, and 0.12% which were based on pulp weight before extraction were added and allowed to hydrolyze for 30, 60, 90 and 120 min,. respectively. Increase in the garlic juice yield was observed according to the amount of enzyme added and the reaction time until reaching a maximum point. When 0.12% protopectinase was applied to the garlic residue for 90 min, the yield increased by 13.8%. Under the same conditions, when multienzyme was applied to the garlic residue, the yield increased by 14.5%, which was considered the maximum. The flavor compounds decreased when compared with the total GC peak area of garlic juice prepared without enzymes(control). The volatile flavor compounds in garlic juice prepared with 0.12% protopectinase for 60 min decreased by 6%. The free sugars profile of the garlic juice prepared with 0.12% protopectinase for 60 min was similar to that of the control. The type of enzyme used did not affect the free amino acid profile of the garlic juice. These results indicate that the optimum conditions for extraction of garlic juice are hydrolyzing the residue with 0.12% protopectinase for 60 min, extracting garlic juice from the hydrolyzed reside, and then combining the extracted juice with the first extraction.
An alkaliphilic bacterium, Bacillus sp. strain BK, was found to produce extracellular cellulase-free xylanolytic enzymes with xylan-binding activity. Since the pellet-bound xylanase is eluted with 2% TEA from the pellet of the culture, they contain a xylan-binding region that is stronger than the xylan-binding xylanase of the extracellular enzyme. The xylanases had a different molecular weight and xylan-binding ability. The enzyme activity of xylanase in the extracellular fraction was 6 times higher than in the pellet-bound enzyme. Among the enzymes, xylanase had the highest enzyme activity. When Bacillus sp. strain BK was grown in pH 10.5 alkaline medium containing xylan as the sole carbon source, the bacterium produced xylanase, arabinofuranosidase, acetyl esterase, and $\beta$-xylosidase with specific activities of 1.23, 0.11, 0.06, and 0.04 unit per mg of protein, respectively. However, there was no cellulase activity detected in the crude enzyme preparation. The hydrolysis of agricultural residues and kraft pulps by the xylanolytic enzymes was examined at 50$^{\circ}C$ and pH 7.0. The rate of xylan hydrolysis in com hull was higher than those of sugarcane bagasse, rice straw, com cop, rice husk, and rice bran. In contrast, the rate of xylan hydrolysis in sugarcane pulp was 2.01 and 3.52 times higher than those of eucalyptus and pine pulp, respectively. In conclusion, this enzyme can be used to hydrolyze xylan in agricultural residues and kraft pulps to breach and regenerate paper from recycled environmental resources.
To enhance the capability of starch fermentation of the transformant TSD-14, the heat treated protoplasts of TSD-14 were fused with the protoplasts of C. tropicalis (lys$^-$) in the presence of 30% (w/ v) PEG and 20 mM CaC1$_2$. Fusants were selected by nutritional complementation on minium medium and the fusion frequency was 4.4$\times$10$^{-5}$. All fusants tested were possessed of complemented traits concerning carbon compound assimilation, and the cell volumes of the fusants were approximately 1.5 times larger than the parental strains. The fusants were genetically very stable, and were able to hydrolyze alpha 1,4-glucosidic linkage as well as alpha 1,6-linkage of starch contrary to one of parents TSD-14, The most promising fusant FSC-14-75 produced 8.7% (v/v) of ethanol from 15% liquefied potato starch medium, but the result was enhanced to 9.3% (v/v) by addition of 0.3% peptone. The corresponding fermentation efficiency was 86.0%.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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