Nitrogen fixation (nif) genes of Rhizobium leguminosarum were transferred to nif Klebsiella pneumoniae and E. coli by conjugation after partial heat induction of $RP_4$ :: Mu cts in Rhizobium $R^+$ transconjugant, and the hybrid plasmids in the transconjugant strains were isolated and characterized. In order to transfer the nif genes from Rhizobium, the hybrid plasmid $RP_4$ :: Mu cts was transferred by conjugation from E. coil to the symbiotic nitrogen fixer, R. leguminosarum. After stabillity test, the $RP_4$ :: Mu cts in Rhixobium $R^+$ transconjugant was subjected to partial heat induction by culturing it statically at $38^{\circ}C$ for 16 hours, and then conjugated with the nif defective mutant strains of K. pneumoniae or nif mutant strains of E. coli having whole nif gene plasmid. Recombinant strains of K. pneumoniae, which could grow in a N-free medium and exhibit the nitrogenase activity were selected. However, in the case of E. coli, they could grow well in a NA medium containing antibiotices, but hardly frow in a N-free medium. The hybrid plasmids in these transconjugal strains were isolated by gel electrophoresis and compared their molecular sizes.
The $Km^{r}$ gene and plasmid of natural isolate and genetically modified microorganisms (GMM) rearranged by conjugation in water environments were comparatively analyzed by agarose gel electrophoresis and Southern analysis. The transfer rates of the $Km^{r}$ gene from GMM strains were generally 100 times higher than thosc of natural iso]ate(DKI) under laboratory cnvironments, but their transfer rate was not much different in Moosimcheon River water. The conjugants obtained in LB(Luria-Bertani broth) and FW(filtered river water) water under laboratory conditions showed same number of the plasmids. but the sizes of the plasmids were changed. The $Km^{r}$ gene in the conjugants was found in the same position as the pDKJO] $Km^{r}$ plasmid. In case of the GMM strains as donor. the large plasmids of 180 kb appeared in conjugants obtained in LB and FW water. Especially, the $Km^{r}$ gene in the donor of DKC600 was found to be inserted into chromosome of the conjugant obtained in FW water. However. in the conjugants obtained from DKl and DKB 701 in Moosimcheon River water, the plasmids were rearranged by 4 and 8. respectively, and all of them showed hybridization by the $Km^{r}$ probe. But the small plasmids of the recipient disappeared in the conjugant from DKC600 as donor, and the rearranged plasm ids and chromosome in the conjugants were observed to be hybridized with the $Km^{r}$ probe. Therefore, rearrangement of $Km^{r}$ gene and plasmids by conjugation was found to be afTected diversely by cellular characteristics as well as by environmental factors.
A hybrid linear polymer-dendrimer block copolymer, poly(ethylene glycol)-block-poly(L-lysine) dendrimer, was synthesized and introduced to form polyionic complexes with DNA. The copolymer formed core-shell type nanoparticles with plasmid DNA. From dynamic light scattering experiments, the mean diameter of the polyplexes was observed to be 154.4 nm. The complex showed much increased water solubility compared to poly(L-lysine). The plasmid DNA in polyplexes was efficiently protected from the enzymatic digestion of DNase I. The cytotoxicity and transfection efficiency for 293 cells was measured in comparison with poly(Llysine).
A 16 kilobase (kb) HindIII fragment of alkalophilic Bacillus sp. YC-335 containing a gene for xylanase synthesis was inserted at the HindIII site of pBR322 and cloned in Escherichia coli HB101. After subcloning of recombinant plasmid pYS52, the 1.5 kb fragment was found to code for xylanase activity, and the hybrid plasmid was named pYS55. The DNA insert of the plasmid was subjected to restriction enzyme mapping, which showed that pYS55 had single site for PuvII and SstI in the 1.5 kb insert fragment. Southern hybridization analysis revealed that the cloned gene was hybridized with chromosomal DNA from alkalophilic Bacillus sp. YC-335. About 64% of the enzyme activity was observed in the extracellular and periplasmic space of E. coli HB10l carrying pYS55.
To develop a yeast strain which stably secretes both $\alpha$-amylase and glucoamylase and therefore is able to convert starch directly to ethanol, a mouse salivary $\alpha$-amylase cDNA gene with a yeast alcohol dehydrogenase I promoter has been introduced into the cell of a Saccharomyces diactaticus hybrid strain secreting only glucoamylase. To secrete both enzymes more stably without loss of the $\alpha$-amylase gene during a cell-multiplication, an integrating plasmid vector containing $\alpha$-amylase gene was constructed and introduced into the yeast cell. The results showed that the linearized form of the integrating vector was superior in the transformation efficiency and the rate of the expression of the $\alpha$-amylase gene than the circular type of the vector. The yeast transformant having a linearized plasmid vector exhibited higher mitotic stability than the yeast transformant habouring episomat plasmid vector. The transformant containing the linearized vector producing both $\alpha$-amylase and glucoamylase exhibited 2-3 times more amylolytic activity than the original untransformed strain secreting only glucoamylase.
We constructed hybrid plasmids to allow controlled and extracellular production of human alpha-interferon in Escherichia coli. The hybrid plassmids were constructed by transferring alpha-lFN gene from plasmid Hif-2h which has the alpha-lFN gene at PstI restriction site of pBR322, to plasmids pIN -IIIB3 and pIN-IIIC3 at restriction sites between HindIII and BamHI. Plasmids pIN-IIIB3 and pIN-IIIC3 carry E. coli lipoprotein promoter, lac promoter and operator in tandem. The plasmids also have lacl genes which encode for lac repressors, which allows controlled expression of genes cloned to the plasmids by using of inducer IPTG. Lipoprotein signal sequence is located just ahead of cloning sites of the plasmids, which helps cells to excrete or secrete cloned gene products. Plasmid pUC9 was used as a intermediate vector for transferring of alpha-lFN gene from Hif-2h to pIN vectors in order to solve the problem of different restriction sites between Hif-2h and pIN vectors.
Growth hormone-releasing hormone (GHRH), a hypothalamic neuropeptide can stimulate the growth hormone secretion from the anterior pituitary. In this study, a porcine GHRH expression plasmid pHC-GHRH was used to enhance growth performance through ectopic expressions in muscle tissues of rats. Rats injected with the plasmid of pHC-GHRH and pCMV-GHRH exhibited cumulative weight gains 6.4% and 1% greater than controls. During a 5-day period, significant weight gain differences were observed as follows compared with that of control: during 5-10 days post-injection (DPI) period, the group pHC-GHRH on average 14.5% heavier than controls, $40.73{\pm}0.88$ g vs. $35.57{\pm}1.23$ g (p = 0.0023); during 10-15 DPI period, the group pHC-GHRH on average 13.6% heavier than controls, $37.49{\pm}2.85$ g vs. $33.00{\pm}1.56$ g (p = 0.0146); during 15-20 DPI period, the group pHC-GHRH on average 17.8% heavier than controls, $25.64{\pm}1.39$ g vs. $21.77{\pm}1.27$ g (p<0.05). In addition, plasmids-treated rats maintained higher serum IGF-I than controls. Significant differences of IGF-I were observed on 13 DPI and on 40 DPI in pHC-GHRH group compared with that of controls. This was accomplished through the use of an improved expression cassette that included the cytomegalovirus (CMV) immediate early enhancer/promoter in combination with a 1.5-kilobase portion of porcine ${\alpha}$-skeletal muscle actin promoter.
A bacterial isolate of DJ-12 capable of degrading 4-chlorobenzoic acid (4CBA) as well as 4-chlorobiphenyl (4CB) was used in this study. Its biodegradability of 4CBA was tested and the location of the genes coding for degradation of 4CBA was investigated by the nethod of in vivo cloning. The genes were found to be existed in the plasmid of pDJ121 which is about 65kb in size and which has 9, 11, 10, and 19 restriction sites for EcoRI, HindIII, SalI, and PstI, respectively. The hybrid plasmid of pDK450 was constructed by ligation of the EcoRI fragments of pDJ121 with pKT230 as a vector. In the recombinant cells selected through transformation of the hybrid vector into Pseudomonas putida KT2440, the 4CBA-degrading genes of DJ-12 were proved to be cloned and expressed in the Pseudomonas sp.
For the construction of plasmid and bmNPV sarrying the FRT recognition site for the FLP recombinases, we synthesized the wild type FRT dligonucleotides. The target FRT sequences consist of three 13bp repeated DNA sequences; two repeats in a direct orientation and one inverted relative to the other two. In addition, there is an 8bp spacer region between the repeats which determune the orientation of the FRT recombination site. In order to place the FRT site both in target BmNPV genome and the transfer vector, we constructed a plasmid, FRT site both in the target BmNPv genome and the transfer vector, we constructed a plasmid, pFRT$\beta$-gal, carrying the FRT sites within the cloning sites of pSV vector and a recombinant BmNPV, vFRTPH, carrying the FRT sites at a downstream of polyhedrin promotor, respectively. In order to test the functionality of the FLP/FRT site-specific recombination system, vFRTPH, pFRT$\beta$-gal and pHsFLP DNA were co-transfected into BmN-4 cells. The resulting recombinant virus was designated a vFRT$\beta$2-gal. From construction analysis of the vFRT$\beta$2-gal with PCR technique it was concluded that the entire pFRT$\beta$-gal plasmid with $\beta$-galactosidase gene and origines of replication flanked by two functional hybrid FRT sequences. The efficiency of recombination was 8.7%, which was higher than that(2.2%) of recombination between a conventional transfer vector and the wild type BmNPV.
Hybrid plasmid pEA24, shuttle vector YRp7 carrying amylase gene of Bacillus amyloliquefaciens, was transformed to yeast Saccharomyces cerevisiae, and the expression of B. amyloliquefaciens amylase gene in yeast was investigated. The frequency of transformation to S. cerevisiae DBY747 with YRp7 was increased by treatment of 40% polyethylene glycol (MW 4, 000), PH 7.0, at 3$0^{\circ}C$, and by regeneration used 2% top agar. The amount of cellular amylase activity produced by S. cerevisiae containing pEA24 was 2% of that secreted from B. amyloliquefaciens, but in case of S. cerevisiae transformant, the amylase secreted was not detected. A comparison of genetic stability of pEA24 and YRp7 plasmids in yeast was carried out by cultivation of transformants in tryptophan-supplement-medium. The pEA24 plasmid was more unstable than YRp7 in S. cerevisiae. The size of pEA24 extracted from S. cerevisiae transformants was found to be identical with that from E. coli transformants by agarose gel electrophoresis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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