The base sequences representing human- and cow-specific 168 rRNA gene markers identified in a T-RFLP analysis were recovered from clone libraries. The human- and cow-specific primers were designed from these sequences and their specificities were analyzed with fecal DNAs from human, cow, and pig. The AllBac primer set showed positive results for all human, cow, and pig samples, whereas the human-specific primer set showed positive result only for the human sample but not for the cow or pig samples. Likewise, the cow-specific primer set showed positive results only for the cow sample but not for the human or pig samples. Real-time PCR assay with these primers was developed for the identification and quantification of fecal pollution in the river water. The human- and cow-specific markers were detected in the order of 9 $\log_{10}$ copies per gram wet feces, which were two orders of magnitude lower than those of total Bacteroidales. For the river water samples, the human-specific marker was detected in $1.7-6.2\;\log_{10}$ copies/100 ml water, which was 2.4-4.9 orders of magnitude lower than those of total Bacteroidales. There was no significant correlation between total Bacteroidales and conventional fecal indicators, but there was a high correlation between Bacteroidales and the human-specific marker. This assay could reliably identify and quantify the fecal pollution sources, enabling effective measures in the watersheds and facilitating water quality management.
A membrane-based oligonucleotide array was used to detect predominant bacterial species in human fecal samples. Digoxygenin-labeled 16S rDNA probes were generated by PCR from DNA that had been extracted from fecal samples or slurries. These probes were hybridized to an array of 120 oligonucleotides with sequences specific for 40 different bacterial species commonly found in human feces, followed by color development using an alkaline phosphatase-conjugated antibody and NBT /BCIP. Twenty of the species were detected by this method, but E. coli, which was present at $\~$1 $\times 10$^5$ CFU per gram feces, was not detected. To improve the sensitivity of this assay, reverse transcriptase-PCR was used to generate probes from RNA extracted from fecal cultures. Coupled with a chemiluminescence detection method, this approach lowered the detection limit for E. coli from $\~1$$\times 10$^6$ to ${\leq}$ 1 $\times 10$^5$ These results indicate that the membrane-array method with reverse transcriptase-PCR and chemiluminescence detection can simultaneously identify bacterial species present in fecal samples at cell concentrations as low as${\leq}$ 1 $\times 10$^5$ CFU per gram.
Metagenomic analysis of the human intestinal microbiota has extended our understanding of the role of these bacteria in improving human intestinal health; however, a number of reports have shown that current total fecal DNA extraction methods and 16S rRNA universal primer sets could affect the species coverage and resolution of these analyses. Here, we improved the extraction method for total DNA from human fecal samples by optimization of the lysis buffer, boiling time (10 min), and bead-beating time (0 min). In addition, we developed a new long-range 16S rRNA universal PCR primer set targeting the V6 to V9 regions with a 580 bp DNA product length. This new 16S rRNA primer set was evaluated by comparison with two previously developed 16S rRNA universal primer sets and showed high species coverage and resolution. The optimized total fecal DNA extraction method and newly designed long-range 16S rRNA universal primer set will be useful for the highly accurate metagenomic analysis of adult and infant intestinal microbiota with minimization of any bias.
We performed RT-nested PCR to study the distribution of human enteric viruses in urban rivers in Korea. During 2002-2003, water samples were collected from four rivers in Gyeonggi Province, South Korea. Among 58 samples, 45 (77.6%), 32 (55.2%), 12 (20.7%), 2 (3.4%), 4 (6.9%), and 4 (6.9%) showed positive results with adenoviruses (AdVs), enteroviruses (EVs), reoviruses (ReVs), hepatitis A viruses (HAVs), rotaviruses (RoVs), and sapoviruses (SVs), respectively. According to the binary logistic regression model, the occurrence of each enteric virus, except ReVs and HAVs, was not statistically correlated with the water temperature and levels of fecal coliforms (P<0.05). AdVs were most often detected; only 4 samples (6.9%) were negative for AdVs while positive for other enteric viruses in the studied sites. Our results indicated that monitoring human enteric viruses is necessary to improve microbial quality, and that AdVs detection by PCR can be a useful index for the presence of other enteric viruses in aquatic environments.
Youn, So Youn;Ji, Geun Eog;Han, Yoo Ri;Park, Myeong Soo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제27권5호
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pp.909-915
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2017
Bifidobacterium bifidum BGN4 (BGN4) has many proven beneficial effects, including antiallergy and anticancer properties. It has been commercialized and used in several probiotic products, and thus strain-specific identification of this strain is very valuable for further strain-dependent physiological study. For this purpose, we developed novel multiplex polymerase chain reaction (PCR) primer sets for strain-specific detection of BGN4 in commercial products and fecal samples of animal models. The primer set was tested on seven strains of B. bifidum and 75 strains of the other Bifidobacterium species. The BGN4-specific regions were derived using megaBLAST against genome sequences of various B. bifidum databases and four sets of primers were designed. As a result, only BGN4 produced four PCR products simultaneously whereas the other strains did not. The PCR detection limit using BGN4-specific primer sets was $2.8{\times}10^1CFU/ml$ of BGN4. Those primer sets also detected and identified BGN4 in the probiotic products containing BNG4 and fecal samples from a BGN4-fed animal model with high specificity. Our results indicate that the PCR assay from this study is an efficient tool for the simple, rapid, and reliable identification of BGN4, for which probiotic strains are known.
Various constituents in clinical specimens, particularly feces, can inhibit the PCR assay and lead to false-negative results. To ensure that negative results of a diagnostic PCR assay are true, it should be properly monitored by an inhibition control. In this study, a cloning vector harboring a modified target DNA sequence (${\approx}375bp$) was constructed to be used as a competitive internal amplification control (IAC) for a conventional PCR assay that detects ${\approx}550bp$ of the Cryptosporidium oocyst wall protein (COWP) gene sequence in human feces. Modification of the native PCR target was carried out using a new approach comprising inverse PCR and restriction digestion techniques. IAC was included in the assay, with the estimated optimum concentration of 1 fg per reaction, as duplex PCR. When applied on fecal samples spiked with variable oocysts counts, ${\approx}2$ oocysts were theoretically enough for detection. When applied on 25 Cryptosporidium-positive fecal samples of various infection intensities, both targets were clearly detected with minimal competition noticed in 2-3 samples. Importantly, both the analytical and the diagnostic sensitivities of the PCR assay were not altered with integration of IAC into the reactions. When tried on 180 randomly collected fecal samples, 159 were Cryptosporidium-negatives. Although the native target DNA was absent, the IAC amplicon was obviously detected on gel of all the Cryptosporidium-negative samples. These results imply that running of the diagnostic PCR, inspired with the previously developed DNA extraction protocol and the constructed IAC, represents a useful tool for Cryptosporidium detection in human feces.
In order to investigate whether or not Total Coliforms (T.C.) and Fecal Coliforms (F.C.) are compatible as indicator microorganisms of waterbome enteric viruses, a total of 192 surface water samples from 24 locations in Korea were tested for T.C., F.C., and human enteric viruses from July 2003 to January 2006. Altogether, the number of T.C. in each samples was ranged from $0{\sim}5.3{\times}10^4$ colony forming unit(CFU)/100mL, and the number of F.C. ranged from $0{\sim}5.0{\times}10^3CFU/100mL$ per sample. Thirty-three percent of the samples tested positive for human enteric viruses after the total culturable virus assay. The results of the statistical analysis showed that T.C. and F.C. had a significant correlation with turbidity and temperature, but the waterbome enteric viruses did not. When compared to the number of T.C. or F.C. per sample, the concentration of waterbome enteric viruses was not found to be correlated. In conclusion, it is suggested that T.C. and F.C. may not be sufficient microbial indicators of waterbome enteric viruses in the samples analyzed in this study. However, further research is needed to find other microbial indicators of waterbome enteric viruses and to develop more advanced and sensitive methods to detect waterborne enteric viruses.
Yoo, Sung J.;Sunwoo, Sun Young;Seo, Sang Won;Lyoo, Young S.
대한수의학회지
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제55권1호
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pp.41-46
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2015
Increasing presence of wild boar around cities and suburban areas is a growing concern with respect to agronomy, environmental ecology, and public safety. In this study, antibiotic resistance profiles of Escherichia (E.) coli isolated from wild boar and domestic pig fecal samples were compared. Eighty E. coli samples were isolated from wild boars. Resistance of the bacteria to 14 common antimicrobial agents used in human and veterinary medicine was evaluated. Ninety-five E. coli isolates from domestic pig farms were used for comparison. Common and distinct antibiotic resistance patterns were observed when comparing wild boar and domestic pig isolates, indicating that wild boars may significantly influence environmental microbiology.
Piliated Lactobacillus rhamnosus (pLR) strains possess higher adherent capacity than non-piliated strains. The objective of this study was to isolate and characterize probiotic pLR strains in human fecal samples. To this end, mouse polyclonal antiserum (anti-SpaA) against the recombinant pilus protein (SpaA) of L. rhamnosus strain GG (LGG) was prepared and tested for its reactivity and specificity. With the anti-SpaA, a method combining the de Man, Rogosa, and Sharpe (MRS) agar plating separation and colony immunoblotting (CIB) was developed to isolate pLR from 124 human fecal samples. The genetic and phenotypic characteristics of the resultant pLR isolates were compared by randomly amplified polymorphic DNA (RAPD) fingerprinting, and examination of adhesion to Caco-2 cells, hydrophobicity, autoaggregation, and in vitro gastrointestinal tolerance. Anti-SpaA specifically reacted with three pLR strains of 25 test strains, as assessed by western blotting, immunofluorescence flow cytometry, and immunoelectron microscopy (IEM) assays. The optimized MRS agar separation plus anti-SpaA-based CIB procedure could quantitatively detect $2.5{\times}10^3CFU/ml$ of pLR colonies spiked in $10^6CFU/ml$ of background bacteria. Eight pLR strains were identified in 124 human fecal samples, and were confirmed by 16S RNA gene sequencing and IEM identification. RAPD fingerprinting of the pLR strains revealed seven different patterns, of which only two isolates from infants showed the same RAPD profiles with LGG. Strain PLR06 was obtained with high adhesion and autoaggregation activities, hydrophobicity, and gastrointestinal tolerance. Anti-SpaA-based CIB is a rapid and inexpensive method for the preliminary screening of novel adherent L. rhamnosus strains for commercial purposes.
To investigate the infection status of pigs with Cryptosporidium parvum, 589 fecal samples were collected from pigs raised at farm in Chungcheongbuk-do and Chungcheongnam-do. Of the 589 pig fecal samples, 62 (10.5%) were positive for C. parvum. The area showing the highest positive rate was Dangjin-gun, Chungcheongnam-do (14.0%), and the lowest (0%) Salmi-myon, Chungcheongbuk-do. The positive rate of C. parvum in Judok-eup increased from 12.7% in the winter to 22.1 % in the summer. The results of this study suggest that the pigs may be a source of human C. parvum infection.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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