The relationship between second messenger cGMP and human cytomegalovirus (HCMV) replication was investigated. First, the intracellular level of cGMP ([cGMP]i) in HCMV-infected cells was measured. The [cGMP]i increased at early times after HCMV infection, reached maximum level at 12 hr and returned to basal level at 24 hr after virus infection, while [cGMP]i in mock-infected cells remained relatively unchanged. Increasing [cGMP]i resulted in enhanced transcription of HCMV major immediate early gene. For early gene expression, cGMP had varying effect. Expression of 1.2 kb RNA decreased and 2.2 kb RNA increased with increasing cGMP, while 2.7 kb RNA gene expression was not affected. HCMV early genes are regulated by immediate early gene, and the effect of cGMP on the regulatory effect of major immediate early gene on early genes was investigated. In the absence of cGMP, major immediate early gene repressed 2.7 kb RNA gene expression, while 1.2 kb RNA and 2.2 kb RNA early genes were not significantly affected. In the presence of $1\;{\mu}M$ cGMP, however, major immediate early gene stimulated the expression of three early genes.
For rapid and sensitive measurement of antiviral activities, application of a recombinant virus containing firefly luciferase gene was attempted. Recombinant human cytomegalovirus (HCMV) containing luciferase gene driven by HCMV late gene pp28 promoter (HCMV/pp28-luc) was used to test the antiviral activities of three known compounds and the result was compared with results from the conventional plaque assay for measuring the production of infectious viruses. When human fibroblast cells were infected with HCMV/pp28-luc, luciferase activity was observed at 2 days after infection and reached maximum at 6 days after infection, whereas the production of infectious virus was maximal at 4 days after infection. The antiviral activities of ganciclovir, acyclovir, and papaverine were measured in HFF cells infected with HCMV/PP28-luc and the luciferase activity was compared with the infectious virus titers. Luciferase activity decreased as the concentration of ganciclovir or papaverine increased, while there was a slight decrease in luciferase activity with acyclovir. The level of the decrease in Luciferase activity was comparable to the level of decrease in the production of infectious virus. Therefore, the antiviral assay using recombinant virus HCMV/pp28-luc resulted in sensitivity similar to the conventional plaque assay with a significant reduction in assay time.
Purpose: The purpose of this study is to describe the rate of cytomegalovirus (CMV) virolactia, and the prevalence of breast milk (BM)-transmitted postnatal CMV infection among premature infants after freeze-thawing (FT) and Holder pasteurization (HP) of breast milk. Methods: This is a single-center, retrospective study of 312 infants born at less than 32 weeks of gestation, or with a birth weight less than 1,500 g from January 2013 to June 2017. All infants were screened for CMV-specific immunoglobulin (Ig) G and IgM at birth. Initial CMV specific polymerase chain reaction (PCR) and CMV culture were performed on mothers' BM and babies' urine within the first 21 days of life. FT and HP of BM was used to prevent the transmission of CMV. For the surveillance of postnatal CMV infection, CMV culture and CMV specific PCR of urine from babies were repeated one to two months after the initial screening. Screening for viremia and viruria was performed if postnatal CMV infection was suspected. Results: Among 178 BM samples obtained from mothers of CMV-IgG-seropositive infants, 80 (44.9%) were CMV PCR positive. CMV deoxyribonucleic acid (DNA) was detected in five of the 22 BM samples (22.7%) obtained from the mothers of CMV-IgG seronegative infants. When CMV DNA load in BM was measured before and after HP, various results were shown. Sixty-three infants out of 232 (27.2%) were evaluated for postnatal CMV infection and four infants out of 63 (6.3%) were infected. Conclusion: Interventions to prevent BM-transmitted CMV infection can reduce the chance of postnatal CMV infection, but not completely eliminate it.
Cytomegalovirus (CMV), a beta-herpesvirus with worldwide distribution, exhibits host persistence, a distinguishing characteristic of all herpesviruses. This persistence is dependent upon restricted gene expression in infected cells as well as the ability of productively infected cells to escape from normal cell-mediated anti-viral immunosurveillance. Type I (IFN-α/β) and type II (IFN-γ) interferons are major components of the innate defense system against viral infection. They are potent inducers of MHC class I and II antigens and of antigen processing proteins. Additionally, IFNS mediate direct antiviral effects through induction effector molecules that block viral infection and replications such as 2′, 5-oligoadenylate synthetase (2, 5-OAS). IFNS function through activation of well-defined signal transduction pathways that involve phosphorylation of constituent proteins and ultimate formation of active transcription factors. Recent studies have shown that a number of diverse viruses, including CMV, EBV, HPV mumps and Ebola, are capable of inhibiting IFN-mediated signal transduction through a variety of mechanisms. As an example, CMV infection inhibits the ability of infected cells Is transcribe HLA class I and II antigens as well as the antiviral effector molecules 2, 5-OAS and MxA I. EMSA studies have shown that IFN-α and IFN-γ are unable to induce complete signal transduction in the presence of CMV infection, phenomena that are associated with specific decreases in JAKl and p48. Viral inhibition of IFN signal transduction represents a new mechanistic paradigm for increased viral survival, a paradigm predicting widespread consequences in the case of signal transduction factors common to multiple cytokine pathways.
Miller, Daniel M.;Cebulla, Colleen M.;Sedmak, Daniel D.
Journal of Microbiology
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v.38
no.4
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pp.203-208
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2000
Cytomegalovirus (CMV), a beta-herpesvirus with worldwide distribution, exhibits host persistence, a distinguishing characteristic of all herpesviruses. This persistence is dependent upon restricted gene expression in infected cells as well as the ability of productively infected cells to escape from normal cell-mediated anti-viral immunosurveillance. Type I (IFN-$\alpha$/$\beta$) and type II (IFN-γ) interferons are major components of the innate defense system against viral infection. They are potent inducers of MHC class I and II antigens and of antigen processing proteins. Additionally, IFNS mediate direct antiviral effects through induction effector molecules that block viral infection and replications such as 2', 5-oligoadenylate synthetase (2, 5-OAS). IFNS function through activation of well-defined signal transduction pathways that involve phosphorylation of constituent proteins and ultimate formation of active transcription factors. Recent studies have shown that a number of diverse viruses, including CMV, EBV, HPV mumps and Ebola, are capable of inhibiting IFN-mediated signal transduction through a variety of mechanisms. As an example, CMV infection inhibits the ability of infected cells Is transcribe HLA class I and II antigens as well as the antiviral effector molecules 2, 5-OAS and MxA I. EMSA studies have shown that IFN-$\alpha$ and IFN-γ are unable to induce complete signal transduction in the presence of CMV infection, phenomena that are associated with specific decreases in JAKl and p48. Viral inhibition of IFN signal transduction represents a new mechanistic paradigm for increased viral survival, a paradigm predicting widespread consequences in the case of signal transduction factors common to multiple cytokine pathways.
Ganciclovir resistance of human cytomegalovirus is associated with mutations in the viral UL97 gene and poses severe problems for immunocompromised patients. In this study, PCR-based restriction fragment length polymorphism and sequencing analyses detected the UL97 D605E mutation in all five clinical isolates from patients with ganciclovir-resistant human cytomegalovirus infection during prolonged ganciclovir therapy, whereas the M460V mutation was only present in 1 of 5 isolates. On the other hand, the detection rates of the D605E mutation in the stored available DNA samples from the donor and allogeneic stem cell transplantation recipients were 66.7% and 93.7%, respectively, suggesting that the presence of D605E mutation was not associated with the ganciclovir exposure. Although the D605E mutation may not be related to ganciclovir resistance, we suggest that this mutation could be an important molecular marker of human cytomegalovirus evolution in East Asian countries. Moreover, the restriction fragment length polymorphism method using the restriction enzyme HaeIII, which is generally used to detect the UL97 A591V mutation, could also detect the D605E mutation and may therefore be a useful tool for future research on the investigation of UL97 gene mutations.
Kwon Tae Won;Kim Do Kyun;Ye Jeong Sook;Lee Won Joo;Moon Mi Sun;Joo Chul Hyun;Lee Heuiran;Kim Yoo Kyum
Journal of Microbiology
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v.42
no.4
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pp.299-304
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2004
To investigate the presence of infectious agents in human atherosclerotic arterial tissues. Atherosclerotic plaques were removed from 128 patients undergoing carotid endarterectomy or other bypass procedures for occlusive disease, and from twenty normal arterial wall samples, obtained from transplant donors with no history of diabetes, hypertension, smoking, or hyperlipidemia. Using the polymerase chain reaction (PCR) or reverse transcription-PCR, these samples were analyzed for the presence of Chlamydia pneumoniae, cytomegalovirus, enterovirus, adenovirus, herpes simplex viruses types 1 and 2, and Epstein-Barr virus. The amplicons were then sequenced, and phylogenetic analyses were performed. Enteroviral RNA was found in 22 of 128 atherosclerotic vascular lesions $(17.2\%),$ and C. pneumoniae and cytomegalovirus were each found in 2 samples $(1.6\%).$ In contrast, adenovirus, herpes simplex viruses, and Epstein-Barr virus were not identified in any of the atherosclerotic samples. Enterovirus was detected in 6/24 $(25.0\%)$ aortas, 7/33 $(21.2\%)$ carotid arteries, 6/40 $(15.0\%)$ femoral arteries, and 3/31 $(9.7\%)$ radial arteries of patients with chronic renal failure. There were no infectious agents detected in any of the control specimens. Using phylogenetic analysis, the enterovirus isolates were clustered into 3 groups, arranged as echovirus 9 and coxsackieviruses Bl and B3. Enteroviral RNA was detected in $17.2\%$ of atherosclerotic plaques, but was not observed in any of the control specimens. This suggests a connection between enteroviral infection and atherosclerosis. These findings differ from those of other studies, which found more frequent incidence of C. pneumoniae and cytomegalovirus infection in atherosclerotic plaques.
Human cytomegalovirus (HCMV) replication and $Ca^{2+}$ response in human cell lines of neuronal origin were investigated. SK-N-SH (neuroblastoma cells) and A172 cells (glioblastoma cells) were used. SK-N-SH cells were permissive for HCMV multiplication with a delay of one day compared to virus multiplication in human embryo lung (HEL) cells. The delay of HCMV multiplication in SK-N-SH cells appeared to be correlated with a delay in the $Ca^{2+}$ response. The cytoplasmic free $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) began to increase at 12 h p.i. in HCMV-infected SK-N-SH cells, while $[Ca^{2+}]_i$ increase in HCMV-infected HEL cells was observed as early as 3 h p.i. On the whole, the level of the increase in $[Ca^{2+}]_i$ in SK-N-SH cells was about 30% of that in HEL cells. On the other hand, in A172 cells infected with HCMV, neither production of infectious virus nor detectable increase in $[Ca^{2+}]_i$ was observed. Treatment with TPA of HCMV-infected SK-N-SH cells resulted in $[Ca^{2+}]_i$ increase at 6 h p.i. The stimulatory effect of TPA on HCMV- induced $[Ca^{2+}]_i$ increase continued until 12 h p.i., but TPA failed to stimulate the $Ca^{2+}$ response in SK-N-SH cells at 24 h p.i., suggesting that the effect of TPA had disappeared in SK-N-SH cells at that time point. In conclusion, SK-N-SH cells are permissive for HCMV replication and the delay in $Ca^{2+}$ response may be a consequence of the lower responsiveness of SK-N-SH cells than HEL cells to HCMV infection.
Infection with human cytomegalovirus (HCMV) is of considerable clinical relevance after placental transmission and in immunosuppressed patients such as transplant recipients or patients with AIDS. The rapid detection method of HCMV has been required to overcome the time-consuming methods such as classical plaque assay or other immunological methods. This study was performed to establish the in situ ELISA, in which human lung fibroblasts infected with HCMV were fixed and used directly as antigen in 96 well culture plate. Expressed HCMV antigens were detected with HCMV-specific monoclonal antibodies. This method could detect HCMV dose-dependently upto $3{\times}10^2\;pfu/ml$. Antiviral activity of ganciclovir could be assayed within the known range of effective dose. This result showed that HCMV could be quantitated by in situ ELISA. The chemical, which was selected on the basis of component analysis in natural product, was tested to have the anti-HCMV activity by in situ ELISA, and three among five samples were found to have anti-HCMV activity with the dose-dependent manner. Conclusively in situ ELISA could be useful method for quantitation of HCMV and screening antiviral activity of samples to HCMV.
Monocytic cells in myeloid lineage are known for latent site of HCMV Previous studies have suggested that HCMV regulates cell cycle progression in a variety of cells, but studies in monocytic cells are limited. In this study, we attempted to understand cell cycle changes after HCMV infection in the monocytic cell lines. Flow cytometric analyses using propidium iodide revealed that the proportion of G0-G1 phase was increased and the proportion of S phase decreased in HCMV-infected THP-1 cells, but not in HL-60 cells. BrdU-incorporation assay supported that cell proliferation was inhibited in HCMV-infected THP-1 cells by inhibition of de novo DNA synthesis. Western blot analysis revealed that p21, inhibitor of cell cycle progression from G1 phase to S phase, was induced in HCMV-infected THP-1 cells but not in HL-60 cells. Thus, HCMV inhibited cell pro-liferation by arresting the cell cycle at G0-G1 phase through induction of p21 protein in promocytic THP-1 cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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