Proceedings of the Korean Society of Food Hygiene and Safety Conference
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2002.05a
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pp.147-147
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2002
This experimental study was carried out to investigate on the safety of Nog-yong aqua-acupuncture solution in primary culture of adult rat hepatocytes. Primary culture of adult rat hepatocytes has been considered as a ideal model for toxicological studies because cultured hepatocytes maintained many liver-specific functions. In this research, we investigated the effects of Nog-yong aqua-aqupunture(1-10$\mu\textrm{g}$/ml) on cytotoxicites in primary culture of adult rat hepatocytes using LDH release assays. Hepatic glutathione level. glutathione-S-transferase activity, and albumin synthesis were not affected by treatment with Nog-yong aqua-aqupuntur alone. Nog-yong aqua-aqupuncoure solution(0.5-$10{\mu}\textrm{g}$/ml) on cytotoxicites in primary culture of adult rat hepatocytes using LDH release not significantly affected normal functional charaterists.
Kim, Hwan-Mook;Kim, Byung-Sam;Choe, Suck-Young;Yang, Kyu-Hwan
Toxicological Research
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v.4
no.1
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pp.37-45
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1988
Primary cultures of adult rat hepatocytes were used to study in vitro cytotoxic effects of T-2 toxin on liver cells. When T-2 toxin was added to the culture, a significant depression of the hormonal induction of ${\alpha}$-aminoisobutyric acid (AIB) uptake and tyrosine aminotransferase (TAT) activity was observed. However, T-2 toxin did not affect the uptake of ouabain into hepatocytes. Protein synthesis was inhibited by T-2 toxin, but RNA synthesis was not severely affected. The inhibitory effects of T-2 toxin on protein synthesis was diminished rapidly with culture time and the hepatocytes culture maintained control level of protein synthesis within 24 hrs.
Primary cultures of adult rat hepatocytes were used to study the cytotoxicity of D-galactosamine. Hepatocytes were isolated by a collagenase perfusion technique and maintained as monolayers in serum-free medium on collagen-coated culture dishes. Treatment of galactosamine to the culture markedly inhibited the uptake of ${\alpha}$-aminoisobutyric acid (AIB) inducible with glucagon and dexamethasone. At0.1 mM of galactosamine, AIB uptake was inhibited significantly when treated for 12 hr. At higher doses (0.25, 0.5 and 1.0mM), a significant inhibition was noticed after 1 hr exposure. Generally the magnitude of the inhibition was related to the dose and treatment time of galactosamine. Treatment of galactosamine also produced a dose- and treatment time-related suppression of the tyrosine aminotransferase (TAT) induction caused by dexamethasone. Meanwhile, uptake of ouabain was not affected by the treatment of galactosamine. The viability of the hepatocytes was decreased only slightly by the treatment of galactosamine; more than 87% of the cells excluded tryphane blue when treated 1 mM galactosamine for 12 hr. Galactosamine induced depressions of AIB uptake and TAT activity were prevented by the simultaneous addition of uridine to the culture. D-Galactosamine, cytotoxicity, hepatocytes culture, ${\alpha}$-aminoisobutyric acid uptake, tyrosine aminotransferase.
Human hepatocytes, with complete hepatic metabolizing enzymes, transporters and cofactors, represent the gold standard for in vitro evaluation of drug metabolism, drug-drug interactions, and hepatotoxicity. Successful cryopreservation of human hepatocytes enables this experimental system to be used routinely. The use of human hepatocytes to evaluate two major adverse drug properties: drug-drug interactions and hepatotoxicity, are summarized in this review. The application of human hepatocytes in metabolism-based drug-drug interaction includes metabolite profiling, pathway identification, P450 inhibition, P450 induction, and uptake and efflux transporter inhibition. The application of human hepatocytes in toxicity evaluation includes in vitro hepatotoxicity and metabolism-based drug toxicity determination. A novel system, the Integrated Discrete Multiple Organ Co-culture (IdMOC) which allows the evaluation of nonhepatic toxicity in the presence of hepatic metabolism, is described.
The effect of butylated hydroxytoluene (BHT) and its major metabolite, 3, 5-di-tert-butyl-4-hydroxybenzoic acid (BHT-acid) on the uptake of taurocholate into hepatocytes was studied using the primary culture of rat hepatocytes. Hepatocyte were isolated by an in situ collagenase perfusion technique and maintained as a monolayer in serum-free meadia for 24 hours before use. The uptake of taurocholate was saturable with an apparent Km of 12.8+2.8 MuM and Vmax of 0.18+0.01 nmol/mg/min. Both BHT and BHT-acid inhibited the hepatocellular uptake of taurocholate when they were added to the culture.
We compared the effects of two different systems of collagen matrix protein application on the survival and the biological functions of cultured primary hepatocytes. The rat liver primary hepatocytes were grown for approximately 40 days in vitro either on single collagen gel or between collagen sandwich gels. The morphological changes were observed for this culture period. While the hepatocytes grown on single gel began to die around at 7 days of culture, the cells grown between collagen gels still maintained their viability and began to die after 15 days. As markers for liver hepatic functions, we determined the biochemical activities of hepatocytes such as the secretions of albumin, fibronectin, fibrinogen, urea, and the reduction of secreted ammonia. We found that the rat hepatocytes cultured between collagen gels maintained fairly good biochemical functions than the hepatocytes cultured on single gel did. Therefore, the application of an extracellular matrix protein, collagen, in sandwich form was confirmed as a better choice for maintaining the functional hepatocytes culture for long term in vitro.
Human and rat hepatocytes were isolated by nonperfusion method and cultured for longer than 5 days. Human liver biopsy sample and rat liver were used as hepatocyte source. Several physical and chemical factors which were influencing on hepatocyte isolation procedure were examined and a batch isolation procedure was established for small size sample of rat liver. Isolated hepatocytes showed normal morphlologica characteristics in microscopy and electron microscopical examinations and a morphologica response to phalloidin. Isolated cells were cultured as a monolayer and proven to have intact morphological characteristics for longer than 15 days. Because human liver sample is harder and tighter compared with rat liver, a standard procedure for rat hepatocytes was slightly modified to reduce mechanical damage. Similarly with rat hepatocytes, isolated human hepatocytes showed a normal morphological characteristics and could be cultured for longer than 15days. Human and rat hepatocytes were examined on their functional integrities including cytochrome-P450 related enzyme activity and it's inducibility, hormonal inducibility of AIB uptake and TAT activity, albumin synthesis, DNA synthesis, cellular protein maintenance. In all parameters used in the present study, human and rat hepatocytes showed normal functional characteristics.
Lim, Malgum;Kim, Yeongji;Shin, Yurianna;Oh, Keon Bong;Hwang, Seongsoo;Kim, Youngim;Hur, Tai-Young;Ock, Sun A
Journal of Embryo Transfer
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v.31
no.3
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pp.169-177
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2016
There is a growing interest in the application of primary hepatocytes for treatment of liver diseases in humans and for drug development. Several studies have focused on long-term survival and di-differentiation blocking of primary hepatocytes in an in vitro culture system. Therefore, the present study also aimed to optimize an in vitro culture system using primary rat hepatocytes. Primary rat hepatocytes from 6-week-old male Crl:CD rats were isolated using a modified two-step collagenase perfusion. Healthy $3.5{\times}10^6$ primary rat hepatocytes were seeded into a 2 dimensional (2D) culture in a 25T culture flask coated with collagen type I or into a 3D culture in a 125-ml spinner flask for 7 days. Production of plasma protein (ALB and TF), apoptosis (BAX and BCL2), and CYP (CYP3A1) related genes were compared between the 2D and 3D culture systems. The 3D culture system had an advantage over the 2D system because of the relatively high expression of ALB and low expression of BAX in the 3D system. However, the level of CYP3A1 did not improve in the 3D culture with and without the presence of a dexamethasone inducer. Therefore, 3D culture has an advantage for albumin production and primary rat hepatocyte survivability, but a low expression of CYP3A1 indicated that primary rat hepatocytes require a high-density culture for stress reduction by continuous flow.
Proceedings of the Korean Environmental Sciences Society Conference
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2003.11a
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pp.159-164
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2003
Effects of Al on vitellogenin (VTG) and VTG mRNA induction by estradiol-17 $\beta$($E_2$) were examined in primary hepatocyte culture of rainbow trout. Hepatocytes were precultured for 2 days and then E2 ($2{\times}10^{-6}$M) and Al ($10^{-6}-10^{-4}$M) were simultaneously added to the incubation medium. Hepatocytes were cultured for 5 more days. Media and hepatocytes were then analyzed by SDS-PAGE and Northern blotting for VTG and VTG mRNA, respectively. These metal had no appreciable effect on the viability of hepatocytes in culture. However, Al interfered with VTG production and VTG mRNA expression. Al reduced VTG production in a concentration-dependent way and a significant reduction accurred at Al concentrations greater than $5{\times}10^{-5}$M. VTG mRNA expression also decreased with a negative correlation with Al concentration (r=-0.98). These results suggest that Al inhibit VTG production at the transcriptional level to reduce VTG mRNA expression.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.20
no.1
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pp.40-45
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1991
The release of hepatic triglyceride lipase from cultured rat hepatocytes and its hormonal regulation were studied. The activity of lipase released into the medium in the presence of heparin was increasing during 24 hours on the 2nd of culture while this was 10% in the absence of heparin as compared with the lipase activity in the presense of heparin. When hepatocytes were cultured with anti-hepatic triglyceride lipase lgG the lipase activity was supp-ressed by 92% The results suggest that the enzyme relaeased into culture medium is identical to hepatic triglyceride lipase which can be released only in the presence of heparin the model of release being similar to that of lipoprotein lipase from adipocytes. The addition of monensin to the medium resulted in The inhibition of lipase secretion by 61% Insulin enhanced lipase activity only 20% whereas dexamethasone suppressed the activity by 44% These data inidica-ted that hepatic triglyceride lipase is secreted and released from hepatocytes in the presence of heparin and its secretion is regulated by hormones.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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