Kim, Min-Soo;Yoon, Yeo-Sang;Seo, Jae-Gu;Lee, Hyun-Gi;Chung, Myung-Jun;Yum, Do-Young
Toxicological Research
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제29권2호
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pp.129-135
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2013
Salmonella is one of the major pathogenic bacteria that cause food poisoning. This study investigated whether heat-killed as well as live Lactobacillus protects host animal against Salmonella infection. Live and heat-killed Lactobacillusacidophilus was administered orally to Sprague-Dawley rats for 2 weeks before the rats were inoculated with Salmonella. Rise in body temperature was moderate in the group that was treated with heat-killed bacteria as compared to the Salmonella control group. The mean amount of feed intake and water consumption of each rat in the heat-killed bacteria group were nearly normal. The number of fecal Salmonellae was comparable between the live and the heat-killed L. acidophilus groups. This finding shows that L. acidophilus facilitates the excretion of Salmonella. Moreover, the levels of pro inflammatory cytokines, including tumor necrosis factor (TNF)-alpha and interleukin (IL)-1 beta, in the heat-killed L. acidophilus group were significantly lower when compared to the levels in the Salmonella control group. These results indicate that nonviable lactic acid bacteria also could play an important role in preventing infections by enteric pathogens such as Salmonella.
Dental pulp infection is most commonly caused by extensive dental caries, and some bacterial species invade root canals; bacterial components and products are thought to be associated with the pathogenesis of periapical periodontitis. A principle driving force behind pulpal disease response appears to lie in the host immune system's to bacteria and their products. We examined the production of interleukin $1{\beta}$ (IL-$1{\beta}$) and tumor necrosis factor ${\alpha}$(TNF-${\alpha}$) from human peripheral mononuclear cells, lymphocytes and monocytes stimulated by heat-killed Acitnobacillus actinomycetemcomitans (ATCC 29523), Porphyromonas gingivalis (ATCC 33277) and Prevotella intermedia (ATCC 25611), and also by their sonicated bacterial extracts (SBE), respectively. The effects of three strains of heat-killed bacteria and their SBEs on the morphology of cultured blood cell lines HL-60 (KCLB 10240) and J774A.1 (KCLB 40067) were observed under the inverted microscope. Ultrastructural changes of J774A.1 exposed to heat-killed P. intermedia and its SBE were investigated using transmission electron microscopy. Production of IL-$1{\beta}$ was reduced in human peripheral mononuclear cells after stimulation by sonic bacterial extracts of A. actinomycetemcomitans, P. gingivalis, and P. intermedia. Heat-killed and sonic extract of P. gingivalis inhibited the production of TNF-${\alpha}$ in peripheral mononuclear cells. Production of TNF-${\alpha}$ was inhibited in peripheral monocytes after stimulation by sonic extracts of A. actinomycetemcomitans, P. gingivalis, and P. intermedia. HL-60 and J 774A.1 cells showed granular degeneration after treatment with heat-killed and sonic extracts of A. actinomycetemcomitans, P. gingivalis, and P. intermedia Chromatin margination and shrinkage were observed in 774A.1 treated with heat-killed P. intermedia. Cell wall structure and organelles were destroyed and vacuoles were formed in cytoplasm in J774A.1 treated with P. intermedia sonic extract. These results suggest that A actinomycetemcomitans, P gingivalis and P intermedia may have an important role in the formation and progression of pulpal diseases via both modulation of production of IL-$1{\beta}$ and TNF-${\alpha}$ from blood mononuclear cells and cytopathic effects.
This study proposed to demonstrate the neuroprotective effects of heat-killed Levilactobacillus brevis KU15152. Heat-killed L. brevis KU15152 showed antioxidant activity similar to that of Lacticaseibacillus rhamnosus GG, in terms of radical scavenging activity. To evaluate the neuroprotective effects, conditioned medium (CM) obtained by incubating heat-killed bacteria in intestinal cells (HT-29) was used through gut-brain axis. CM from L. brevis KU15152 protected neuroblastoma cells (SH-SY5Y) against H2O2-induced oxidative stress. Pretreatment with CM significantly alleviated the morphological changes induced by H2O2. Heat-killed L. brevis KU15152 showed an increased brain-derived neurotrophic factor (BDNF) expression in HT-29 cells. L. brevis KU15152-CM remarkably downregulated the Bax/Bcl-2 ratio, while upregulating the expression of BDNF and tyrosine hydroxylase (TH) in SH-SY5Y cells. Furthermore, L. brevis KU15152-CM reduced caspase-3 activity following H2O2 treatment. In conclusion, L. brevis KU15152 can be potentially used as food materials to avoid neurodegenerative diseases.
프로바이오틱스에 대한 연구는 주로 생균의 효과가 많이 알려져 있지만 가열 처리된 유산균인 사균체의 기능에 대한 연구도 활발히 이루어지고 있다. 본 연구에서는 락토바실러스 아시도필러스 CBT LA1의 사균체의 장관장벽 기능에 대하여 in vitro, in vivo에서 실험하였다. 이를 위하여, 세포표면 소수성 상호작용력(cell surface hydrophobicity), 자가응집력(autoaggregation), 세포에 부착하는 능력(cell adhesion)과 자가응집력(autoaggregation), LPS와의 결합력을 조사하였다. 또한 HT-29 장상피세포에서 LPS로 유도되는 IL-8의 발현을 억제하는 효과를 조사하였다. CBT LA1을 80도에서 121도까지 10분 동안 열을 처리하였을 때, 80도에서 열을 처리한 CBT LA1 사균체가 가장 높은 세포에 부착하는 능력을 보여 주었다. CBT LA1 생균과 비교했을 때, 80도에서 열을 처리한 CBT LA1 사균체는 높은 LPS와의 결합력, 소수성 상호작용력, 자가응집력, HT-29 세포에 부착하는 능력과 IL-8의 발현을 억제하는 능력을 보여주었다. In vivo 실험에서 FITC로 label된 LPS를 투여하였을 때 16시간 후, CBT LA1 사균체를 섭취한 동물의 장관 내 LPS가 가장 많이 제거되었다. 이러한 연구 결과들은 CBT LA1 생균처럼 CBT LA1 사균체도 장관장벽 기능을 가지며 이는, 파마바이오틱스로서 그 가능성을 시사한다.
Probiotics modulate the gut microbiota, which in turn regulate immune responses to maintain balanced immune homeostasis in the host. However, it is unclear how probiotic bacteria regulate immune responses. In this study we investigated the immunomodulatory effects of heat-killed probiotics, including Lactiplantibacillus plantarum KC3 (LP3), Lactiplantibacillus plantarum CKDB008 (LP8), and Limosilactobacillus fermentum SRK414 (LF4), via phagocytosis, nitric oxide (NO), and pro-inflammatory cytokine production in macrophages. We thus found that heat-killed LP8 could promote the clearance of foreign pathogens by enhancing the phagocytosis of macrophages. Treatment with heat-killed LP8 induced the production of NO and pro-inflammatory cytokines, including TNF-α, IL-6, and IL-1β. In addition, heat-killed LP8 suppressed the production of NO and cytokines in LPS-induced RAW264.7 cells, suggesting that heat-killed LP8 exerts immunomodulatory effects depending on the host condition. In sum, these results indicate that heat-killed LP8 possesses the potential for immune modulation while providing a molecular basis for the development of functional probiotics prepared from inactivated bacterial cells.
The present study represents the investigation of in vitro immunopotentiating activities of cellular fractions of major lactic acid bacteria found in kimchi (KLAB) and bifidobacteria. The macrophage cells, RAW264.7, were stimulated with heat-killed whole-cell, cell-wall, and cytoplasmic fractions of four strains of KLAB (Leuconostoc mesenteroides, Leuconostoc citreum, Lactobacillus plantarum, and Lactobacillus sake) and two strains of bifidobacteria (Bifidobacterium longum and Bifidobacterium lactis) each, and then the production of nitric oxide (NO) and cytokines including tumor necrosis $factor-\alpha\;(TNF-\alpha)$ and interleukin-6 (IL-6) was measured by Griess and ELISA assays, respectively. Heat-killed wholecell and cell-wall fractions-but not the cytoplasmic fraction-from all strains of KLAB significantly increased the production of NO in RAW264.7 cells, and all fractions from bifidobacteria exerted similar effects. In the production of $TNF-\alpha$, heat-killed whole-cell and cell-wall fractions of L. plantarum showed the strongest effect, followed by L. sake and B. lactis, whereas other KLAB fractions did not exert any effect. In the production of IL-6, only whole-cell and cell-wall fractions of L. plantarum were effective. These results, taken together, indicate that L. plantarum might playa critical role in the immunopotentiating activities of kimchi.
The purpose of this study was to determine the probiotic properties of Lactobacillus brevis KCCM 12203P isolated from the Korean traditional food kimchi and to evaluate the antioxidative activity and immune-stimulating potential of its heat-killed cells to improve their bio-functional activities. Lactobacillus rhamnosus GG, which is a representative commercial probiotic, was used as a comparative sample. Regarding probiotic properties, L. brevis KCCM 12203P was resistant to 0.3% pepsin with a pH of 2.5 for 3 h and 0.3% oxgall solution for 24 h, having approximately a 99% survival rate. It also showed strong adhesion activity (6.84%) onto HT-29 cells and did not produce β-glucuronidase but produced high quantities of leucine arylamidase, valine arylamidase, β-galactosidase, and N-acetyl-β-glucosaminidase. For antioxidant activity, it appeared that viable cells had higher radical scavenging activity in the 2,2-diphenyl-1-picryl-hydrazyl (DPPH) assay, while in the 2-azinobis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS) assay, heat-killed cells had higher antioxidant activity. Additionally, L. brevis KCCM 12203P showed higher lipid oxidation inhibition ability than L. rhamnosus GG; however, there was no significant difference (p < 0.05) between heat-killed cells and control cells. Furthermore, heat-killed L. brevis KCCM 12203P activated RAW 264.7 macrophage cells without cytotoxicity at a concentration lower than 108 CFU/ml and promoted higher gene expression levels of inducible nitric oxide synthase, interleukin-1β, and interleukin-6 than L. rhamnosus GG. These results suggest that novel L. brevis KCCM 12203P could be used as a probiotic or applied to functional food processing and pharmaceutical fields for immunocompromised people.
Jeong, Minju;Kim, Jae Hwan;Yang, Hee;Kang, Shin Dal;Song, Seongbong;Lee, Deukbuhm;Lee, Ji Su;Park, Jung Han Yoon;Byun, Sanguine;Lee, Ki Won
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제29권8호
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pp.1248-1254
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2019
Identification of novel probiotic strains is of great interest in the field of functional foods. Specific strains of heat-killed bacteria have been reported to exert immunomodulatory effects. Herein, we investigated the immune-stimulatory function of heat-killed Lactobacillus plantarum KCTC 13314BP (LBP). Treatment with LBP significantly increased the production of $TNF-{\alpha}$ and IL-6 by macrophages. More importantly, LBP was able to enhance the phagocytic activity of macrophages against bacterial particles. Activation of p38, JNK, ERK, $NF-{\kappa}B$, and STAT3 was involved in the immunomodulatory function of LBP. LBP treatment significantly increased production of $TNF-{\alpha}$ by bone marrow-derived macrophages and splenocytes, further confirming the immunostimulatory effect of LBP in primary immune cells. Interestingly, the immunomodulatory effects of LBP were much stronger than those of Lactobacillus rhamnosus GG, a well-known probiotic strain. These results indicate that LBP can be a promising immune-enhancing functional food agent.
The incidence of stress-related type 2 diabetes (stress-T2D), which is aggravated by physiological stress, is increasing annually. The effects of Lactobacillus, a key component of probiotics, have been widely studied in diabetes; however, studies on the effects of postbiotics are still limited. Here, we aimed to examine the mechanism through which heat-killed Lactiplantibacillus plantarum LRCC5314 (HK-LRCC5314) alleviates stress-T2D in a cold-induced stress-T2D C57BL/6 mouse model. HK-LRCC5314 markedly decreased body weight gain, adipose tissue (neck, subcutaneous, and epididymal) weight, and fasting glucose levels. In the adipose tissue, mRNA expression levels of stress-T2D associated factors (NPY, Y2R, GLUT4, adiponectin, and leptin) and pro-inflammatory factors (TNF-α, IL-6, and CCL-2) were also altered. Furthermore, HK-LRCC5314 increased the abundance of Barnesiella, Alistipes, and butyrate-producing bacteria, including Akkermansia, in feces and decreased the abundance of Ruminococcus, Dorea, and Clostridium. Thus, these findings suggest that HK-LRCC5314 exerts protective effects against stress-T2D via gut microbiome modulation, suggesting its potential as a supplement for managing stress-T2D.
본 연구는 Enterococcus faecalis EF-2001 사균체를 발효유에 첨가하였을 시 나타나는 생리활성을 검증하고자 실시하였다. 발효유는 같은 양의 starter만 넣은 일반발효유 NFM, E. faecalis EF-2001 사균체를 100 ㎍/mL의 농도로 첨가한 EFM1, E. faecalis EF-2001 사균체를 500 ㎍/mL의 농도로 넣은 EFM2를 제조하였다. E. faecalis EF-2001 사균체를 발효유 첨가하였을 때 나타나는 항염증 효과를 검증하기 위해 mouse 유래 대식세포인 RAW 264.7 cell을 이용하였다. RAW 264.7 cell을 이용한 세포독성 실험의 결과, 사균의 농도가 높아질수록 세포 생존율이 유의적으로 감소하였으며(p<0.05), 80% 이상의 세포 생존율을 가지는 농도인 5, 10, 15 ㎍/mL에서 실험을 진행하였다. Nitric oxide의 생성 억제능 측정결과는 LPS 처리군에 비해 발효유에서 NO 생성을 저해하는 경향을 나타냈다. 또한, 일반발효유보다 사균을 첨가한 발효유에서 NO 생성을 더욱 저해하는 결과를 나타내었다. Prostaglandin E2의 억제율 측정결과도 15 ㎍/mL의 농도에서 PGE2 분비량을 감소시킴을 확인하였으며, 일반 발효유보다 사균이 첨가된 발효유에서 더욱 억제됨을 확인하였다. 따라서, 본 연구를 통해 E. faecalis EF-2001 사균체가 발효유에 첨가되어도 염증 매개물질인 NO 및 PGE2의 생성을 감소시킴으로써 추후 사균체가 첨가된 발효유 제조 및 연구에 대한 기초 연구 결과로 활용될 수 있을 것으로 사료된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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