Three 'stress probe' plasmids were constructed and characterized which utilize a green fluorescent protein (CFP) as a non-invasive reporter to elucidate Escherichia coli cellular stress responses in quiescent or 'resting' cells. Facile detection of cellular stress levels was achieved by fusion of three heat shock stress protein promoter elements, those of the heat shock transcription factor ${\sigma}^{32}$, pretense subunit ClpB, and chaperone DnaK, to the reporter gene $gfp_{uv}$. When perturbed by chemical or physical stress (such as heat shock, nutrient (amino acid) limitation, addition of IPTG, acetic acid, ethanol, phenol, antifoam, and salt (osmotic shock), the E. coli cells produced GFPuv which was easily detected from within the cells as emitted green fluorescence. A temporal and amplitudinal mapping of these responses was performed, demonstrating regions where quantitative delineation of cell stress was afforded.
In eukaryotes, ER stress induces UPR (unfolded protein response) via IRE1 activation which sends a molecular signal for XBP1 mRNA splicing in the cytosol. During this mRNA splicing, 23 nt removed in which contains PstI site and then resulting XBP1 product is not digested with PstI restriction enzyme. In this study, using this XBP1 mRNA splicing mechanism, the effect of heat shock on thyrocytes is studied, because heat shock response in the thyrocytes needs more study to understand thyroid physiology under alternative environments. ER inducible drugs (tunicamycin, DTT, $Ca^{2+}$ ionopore A23187, BFA) induce ER stress in the thyrocytes. From 3 hours after heat shock, ER stress is induced and which is reversible when heat shock is without. While $Ca^{2+}$ ionopore A23187 is reversible from ER stress by washing out the drug, thapsigagin is irreversible. Other ER inducible drugs are not so sensitive to ER stress repairing. XBP1 mRNA splicing in a cell is very available method to detect ER stress. It needs only a small quantity of total RNA and processing also very easy.
Nam, Bo-Hye;Park, Eun-Mi;Kim, Young-Ok;Kim, Dong-Gyun;Jee, Young-Ju;Lee, Sang-Jun;An, Cheul Min
한국패류학회지
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제29권3호
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pp.181-187
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2013
In order to investigate environmental stress inducible genes in abalone, we analyzed differentially expressed transcripts from a Pacific abalone, Haliotis discus hannai, after exposure to heat-, cold- or hyposalinity-shock by suppression subtractive hybridization (SSH) method. 1,074 unique sequences from SSH libraries were composed to 115 clusters and 986 singletons, the overall redundancy of the library was 16.3%. From the BLAST search, of the 1,316 ESTs, 998 ESTs (75.8%) were identified as known genes, but 318 clones (24.2%) did not match to any previously described genes. From the comparison results of ESTs pattern of three SSH cDNA libraries, the most abundant EST was different in each SSH library: small heat shock protein p26 (sHSP26) in heat-shock, trypsinogen 2 in cold-shock, and actin in hyposalinity SSH cDNA library. Based on sequence similarities, several response-to-stress genes such as heat shock proteins (HSPs) were identified commonly from the abalone SSH libraries. HSP70 gene was induced by environmental stress regardless of temperature-shock or salinity-stress, while the increase of sHSP26 mRNA expression was not detected in cold-shock but in heat-shock condition. These results suggest that the suppression subtractive hybridization method is an efficient way to isolate differentially expressed gene from the invertebrate environmental stress-response transcriptome.
Kim, Il-Sup;Moon, Hye-Youn;Yun, Hae-Sun;Jin, Ing-Nyol
Journal of Microbiology
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제44권5호
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pp.492-501
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2006
In this study, we attempted to characterize the physiological response to oxidative stress by heat shock in Saccharomyces cerevisiae KNU5377 (KNU5377) that ferments at a temperature of $40^{\circ}C$. The KNU5377 strain evidenced a very similar growth rate at $40^{\circ}C$ as was recorded under normal conditions. Unlike the laboratory strains of S. cerevisiae, the cell viability of KNU5377 was affected slightly under 2 hours of heat stress conditions at $43^{\circ}C$. KNU5377 evidenced a time-dependent increase in hydroperoxide levels, carbonyl contents, and malondialdehyde (MDA), which increased in the expression of a variety of cell rescue proteins containing Hsp104p, Ssap, Hsp30p, Sod1p, catalase, glutathione reductase, G6PDH, thioredoxin, thioredoxin peroxidase (Tsa1p), Adhp, Aldp, trehalose and glycogen at high temperature. Pma1/2p, Hsp90p and $H^+$-ATPase expression levels were reduced as the result of exposure to heat shock. With regard to cellular fatty acid composition, levels of unsaturated fatty acids (USFAs) were increased significantly at high temperatures ($43^{\circ}C$), and this was particularly true of oleic acid (C18:1). The results of this study indicated that oxidative stress as the result of heat shock may induce a more profound stimulation of trehalose, antioxidant enzymes, and heat shock proteins, as well as an increase in the USFAs ratios. This might contribute to cellular protective functions for the maintenance of cellular homeostasis, and may also contribute to membrane fluidity.
A varient strain of budding yeast, Hansenula anomala B-7 which had been identified to be highly resistant to cadmium ions, were observed by transmission electron microscopy. It was shown that the cells accumulated excess amounts of cadmium ions throughout inside the cell rather than on the cell surface. The cell growth in response to cadmium or heat shock stress has also been investigated. It was observed that the cells precultured in the presence of 500 $\mu$ g/ml of Cd ions grew slower than those precultured at 1, 000 $\mu$ g/ml of the metal ions, when they were cultivated in the media containing 1, 000 $\mu$g/ml of the metal ions. Heat shock, however, stimulated the cell growth transiently, when the cells were allowed to grow in the presence of 1, 000 $\mu$g/ml of the metal ions. But the cells given heat shock for more than 100 min received permanent damage to growth. Effects of both stresses on budding rate was also examined. It revealed that the stresses did not change the budding ratio much, which was contradictory to that observed from the same budding yeast, Saccharomyces cerevisiae. Furthermore, the cells treated with 1, 000 $\mu$g/ml of the metal ions not only induced, but also switched off the expression of several new proteins. Some of the cadmium stress-inducible proteins were estimated to be also induced by heat shock stress.
Saccharomyces cerevisiae Hsp30 is a plasma membrane heat shock protein that is induced by various environmental stress conditions. However, the functional role of Hsp30 during diverse environmental stressors is not presently known. To gain insight into its function during thermal stress, we have constructed and characterized a ${\Delta}hsp30$ strain during heat stress. $BY4741{\Delta}hsp30$ cells were found to be more sensitive compared with BY4741 cells, when exposed to a lethal heat stress at $50^{\circ}C$. When budding yeast is exposed to either heat shock or weak organic acid, it inhibits Pma1p activity. In this study, we measured the levels of Pma1p in mutant and Wt cells both during optimal temperature and heat shock temperature. We observed that $BY4741{\Delta}hsp30$ cells showed constitutive reduction of Pma1p. To gain further insights into the role of Hsp30 during heat stress, we compared the total protein profile by 2D gel electrophoresis followed by identification of differentially expressed spots by LC-MS. We observed that contrary to that expected from thermal-stress-induced changes in gene expression, the ${\Delta}hsp30$ mutant maintained elevated levels of Pdc1p, Trx1p, and Nbp35p and reduced levels of Atp2p and Sod1p during heat shock. In conclusion, Hsp30 is necessary during lethal heat stress, for the maintenance of Pma1p and a set of thermal stress response functions.
Heat shock proteins (HSPs) are highly conserved cellular proteins that contribute to adaptive responses of organisms to a variety of stressors. In response to stressors, cellular levels of HSPs are increased and play critical roles in protein stability, folding and molecular trafficking. The mRNA expression pattern of two well-known heat shock protein transcripts, HSP70 and HSP90 were studied in two tissues of nerve ganglia, cerebral ganglion and pleuropedal ganglion of Pacific abalone (Haliotis discus hannai). It was observed that both HSP70 and HSP90 transcripts were upregulated under heat stress in both ganglion tissues. Expression level of HSP70 was found higher than HSP90 in both ganglia whereas cerebral ganglion showed higher expression than pleuropedal ganglion. The HSP70 and HSP90 showed higher expression at Day-1 after exposed to heat stress, later decreased at Day-3 and Day-7 onwards. The present result suggested that HSP70 and HSP90 synthesize in nerve ganglion tissues and may provide efficient protection from stress.
dela Cruz, Joseph;Byambaragchaa, Munkhzaya;Choi, Seok-Geun;Hwang, Seong-Gu
한국축산시설환경학회지
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제20권4호
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pp.147-154
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2014
Heat stress is a significant burden to animal production in most areas of the world. Improving our knowledge of physiological and metabolic mechanisms of acclimation may contribute to the development of procedures that may help to maintain health and production efficiency under hot temperature. The effect of Ulmus pumila (UP) extract in inducing Heat Shock Proteins (HSPs) expression in heat-stressed RAW264.7 macrophage cells was investigated. Cell viability assay showed a dose dependent increase in cells after treatment with UP for 24 hours. RT-PCR and western blot analysis showed that increasing concentrations of UP induce the expression of Heat Shock Factor 1 (HSF1) and dose dependently upregulated the expression of Heat shock protein 70 (Hsp70) and Hsp90. LPS-induced nitric oxide was dose-dependently reduced while phagocytic activity greatly recovered with UP treatment. These data demonstrated that UP can be a potential candidate in the development of cytoprotective agent against heat stress.
The decrease in sperm quality under heat stress causes a great loss in animal husbandry production. In order to reveal the mechanism underlying the sperm quality decrease caused by heat stress, we first established a mild heat-treated mouse model. Then, the sperm quality was identified. Further, the testicular proteome profile was mapped and compared with the control using 2D electrophoresis and mass spectrometry. Finally, the differential expressed proteins involved in the heat stress response were identified by real-time PCR and Western blotting. The results showed that heat stress caused a significant reduction in mouse sperm quality (P<0.05). Further, 52 protein spots on the 2D gel were found to differ between the heat-shocked tissues and the control. Of these spots, some repair proteins which might provide some explanation for the influence on sperm quality were found. We then focused on Bag-1, Hsp40, Hsp60 and Hsp70, which were found to be differently expressed after heat shock (P<0.05). Further analysis in this heat-shocked model suggests numerous potential mechanisms for heat shock-induced spermatogenic disorders.
The threat posed by increased surface temperatures worldwide has attracted the attention of researchers to the reaction of animals to heat stress. Spermatogenesis in animals such as stallions is a temperature-dependent process, ideally occurring at temperatures slightly below the core body temperature. Thus, proper thermoregulation is essential, especially because stallion spermatogenesis and the resulting spermatozoa are negatively affected by increased testicular temperature. Consequently, the failure of thermoregulation resulting in heat stress may diminish sperm quality and increase the likelihood of stallion infertility. In this review, we emphasize upon the impact of heat stress on spermatogenesis and the somatic and germ cells and describe the subsequent testicular alterations. In addition, we explore the functions and molecular responses of heat shock proteins, including HSP60, HSP70, HSP90, and HSP105, in heat-induced stress conditions. Finally, we discuss the use of various therapies to alleviate heat stress-induced reproductive harm by modulating distinct signaling pathways.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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