Gastric cancer (GC) is a major health problem worldwide and is one of the ten most commonly diagnosed cancers in Jordan. GC is usually diagnosed at late aggressive stages in which treatment options are limited. Recently, heat shock proteins (HSPs) were found to be overexpressed in a wide range of malignancies have been considered as promising candidate biomarkers for GC. The aim of this study was to investigate pathogenic roles of a panel of cytosolic HSPs including HSP90, HSP70, HSP60 and HSP27 in GC. Immunohistochemistry was used to assess the level of expression of these proteins in archived tumor samples (N=87) representing various pathological characteristics of GC. HSP90, HSP60 and HSP27 were expressed abundantly in gastric tumors. On the other hand, HSP70 was reduced significantly and also found to be associated with Helicobacter pylori infection in tissues collected from GC patients. Furthermore, HSP27 was found to be associated with the level of differentiation. Our findings indicate a role of HSP70 as a potential prognostic biomarker, patients harboring positive HSP70 expression displaying worse disease free survival than those with negative HSP70 expression. Differential expression of HSPs may play crucial roles in the initiation and progression of GC, and could be exploited as future therapeutic targets.
The 90-kDa heat shock protein (HSP90) normally functions as a molecular chaperone participating in folding and stabilizing newly synthesized proteins, and refolding denatured proteins. The HSP90 inhibitor geldanamycin (GA) occupies the ATP/ADP binding pocket of HSP90 so inhibits its chaperone activity and causes subsequent degradation of HSP90 client proteins by proteasomes. Here we show that GA reduces the level of endogenous c-Jun in human embryonic kidney 293 (HEK293) cells in a time and dose dependent manner, and that this decrease can be reversed by transfection of HSP90 plasmids. Transfection of HSP90 plasmids in the absence of GA increases the level of endogenous c-Jun protein, but has no obvious affect on c-Jun mRNA levels. We also showed that HSP90 prolongs the half-life of c-Jun by stabilizing the protein; the proteasome inhibitor N-benzoyloxycarbonyl (Z)-Leu-Leu-leucinal (MG132) blocks the degradation of c-Jun promoted by GA. Transfection of HSP90 plasmids did not obviously alter phosphorylation of c-Jun, and a Jun-2 luciferase activity assay indicated that over-expression of HSP90 elevated the total protein activity of c-Jun in HEK293 cells. All our evidence indicates that HSP90 stabilizes c-Jun protein, and so increases the total activity of c-Jun in HEK293 cells.
Inhibitory effects of tannic acid on skin toxicity and heat shock protein induced by UVB were investigated. Tannic acid was administered either topically or orally for 3 days to hairless mice, which were previously irradiated with UVB. UVB was found to cause skin erythema . However, the skin erythema was decreased when tannic acid was administered either topically or orally. The heat shock proteins, Hsp-78 kDa and 70 kDa, were induced by UVB irradiation, but the induction was decreased by treatment of tannic acid in both topically and orally administered groups. The hsp induction was more prominent in orally administered groups than in topically administerd groups. However, the difference between two groups was not statistically significant. The route of administrations, topical and oral, does not affect the activity of tannic acid. In the skin tissue observation, tannic acid regenerated the epithelial cells with 7-9 cell layers which were injured by UVB. In conclusion, tannic acid has an ability to protect against UVB irradiation and regenerate the skin.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1999.04a
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pp.18-18
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1999
We characterized a cDNA clone for a low molecular weight heat-shock protein (LMW HSP) from tobacco named TLHS-l. Nucleotide sequence determination of TLHS-1 identified an open reading frame for 159 amino acids. To the upstream of the open reading frame, a sequence of 124 nucleotides was determined. To the 3' downstream of the open reading frame, 212 nucleotides were identified which carried poly(A)-tail. Comparison of the open reading frame and hydropathy plot of TLHS-1 with the previously reported class I LMW HSPs showed high identity which classified TLHS-1 as a class I LMW HSP cDNA clone. We proposed that there are six consensus regions in class I LMW HSPs. RNA blot hybridization for TLHS-1 showed a typical expression pattern of heat-shock-inducible gene from three common tobacco cultivars. The open reading frame of TLHS-1 was overexpressed in Escherichia coli. TLHS-1 protein confers thermal protection of other proteins in vitro and in vivo. Thermal induced aggregation of citrate synthase was reduced by purified TLHS-1 protein, and thermal death rate at $50^{\circ}C$ was reduced in E. coli expressing TLHS-l. From these data, we can expect that TLHS-1 acts as a molecular chaperone.perone.
The activation of heat shock factor 1 (HSF1) can be induced by the changes in environmental pH, but the mechanism of HSF1 activation by acidification is not completely understood. This paper reports that a low pH (pH~6.0) can trigger human HSF1 activation. Considering the involvement of the imidazole group of histidine residues under acid pH stress, an in vitro EMSA experiment, Trp-fluorescence spectroscopy, and protein structural analysis showed that the residue, His83, is the essential for pH-dependent human HSF1-activation. To determine the roles of His83 in the HSF1-mediated stress response affecting the cellular acid resistance, mouse embryo fibroblasts with normal wild-type or mutant mouse HSF1 expression were preconditioned by heating or pH stress. The results suggest that His83 is essential for HSF1 activation or the HSF1-mediated transcription of heat shock proteins, in protecting cells from acid pH stress.
Protein methylation occurs ubiquitously in nature and involves N-methylation of lysine, arginine, histidine, alanine, proline and glutamine, O-methylesterfication o dicarboxylic acids, and S-methylation of cysteine and methionine. In nature, methylated amino acids accur in highly specialized proteins such as histones, flagella proteins, myosin, actin, ribosomal proteins. hn RNA-bound protein, HMG-1 and HMG-2 protein, opsin, EF-Tu, EF-$1\alpha$, porcine heart citrate synthase, calmodulin, ferredoxin, $1\alpha$-amylase, heat shock protein, scleroderma antigen, nucleolar protein C23 and IF-3l.
Tolerance of Mycobacterium sp. against organic solvents has been induced for the cholesterol side chain degradation by adding chemicals associated with synthesis of fatty acids or alcohols. Biotin of 300 .mu.g/1 and 0.5% aqueous ethanol solution were optima for the enhancement of ethanol tolerance of the microorganism. The induction of ethanol tolerance by biotin was found to be due to increase of degree of unsaturation of the fatty acids in membranous phospholipid of the cell, especially due to increase of oleic acid content. However when 0.5% of ethanol was added for the ethanol tolerance induction, there was an ambiguous correlation between ethanol tolerance and degree of unsaturation of the fatty acids, in spite of the fact that the induction increased the content of unsaturated fatty acids. Addition of 0.5% of ethanol induced several ethanol shock proteins having molecular weight similar to that of heat shock proteins.
When NIH3T3 cells were exposed to mild heat and recovered at $37^{\circ}C$ for various time intervals, they were thermotolerant and resistant to subsequent stresses including heat, oxidative stresses, and antitumor drug methotrexate which are apoptotic inducers. The induction kinetics of apoptosis by stresses were determined by DNA fragmentation and protein synthesis using $[35^S]$methionine pulse labeling. We investigated the hypothesis that thermotolerant cells were resistant to apoptotic cell death compared to control cells when both cells were exposed to various stresses inducing apoptosis. The cellular changes in thermotolerant cells were examined to determine which components are involved in this resistance. At first, the degree of resistance correlates with the extent of heat shock protein synthesis which were varied depending on the heating times at $45^{\circ}C$ and recovery times at $37^{\circ}C$after heat shock. Secondly, membrane permeability change was observed in thermotolerant cells. When cells prelabeled with $[^{3}H]$thymidine were exposed to various amounts of heat and recovered at $37^{\circ}C$ for 1/2 to 24 h, the permeability of cytosolic $[^{3}H]$thymidine in thermotolerant cells was 4 fold higher than that in control cells. Thirdly, the protein synthesis rates in thermotolerant and control cells were measured after exposing the cells to the same extent of stress. It turned out that thermotolerant cells were less damaged to same amount of stress than control cells, although the recovery rates are very similar to each other. These results demonstrate that an increase of heat shock proteins and membrane changes in thermotolerant cells may protect the cells from the stresses and increase the resistance to apoptotic cell death, even though the exact mechanism should be further studied.
Proceedings of the Korean Society of Plant Biotechnology Conference
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2005.11a
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pp.40-64
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2005
Much biochemical information on peroxiredoxins (Prxs) has been reported but a genuine physiological function for these proteins has not been established. We show here that two cytosolic yeast Prxs, cPrxI and II, exist in a variety of forms that differ in their structure and molecular weight (MW) and that they can act both as a peroxidase and as a molecular chaperone. The peroxidase function predominates in the lower MW proteins, whereas the chaperone function is more significant in the higher MW complexes. Oxidative stress and heat shock exposure of yeasts causesthe protein structures of cPrxI and II to shift from low MW species to high MW complexes. This triggers a peroxidase-to-chaperone functional switch. These in vivo changes are primarily guided by the active peroxidase site residue, $Cys^{47}$, which serves as an efficient $'H_2O_2-sensor'$ in the cells. The chaperone function of the proteins enhances yeast resistance to heat shock.
Magnaporthe oryzae, the causal agent of the rice blast disease, poses a worldwide threat to stable rice production. The large-scale functional characterization of genes controlling the pathogenicity of M. oryzae is currently under way, but little is known about heat shock protein 40 (Hsp40) function in the rice blast fungus or any other filamentous plant pathogen. We identified 25 genes encoding putative Hsp40s in the genome of M. oryzae using a bioinformatic approach, which we designated M. oryzae heat shock protein forty (MHF 1-25). To elucidate the roles of these genes, we characterized the functions of MHF16 and MHF21, which encode type ill and type n Hsp40 proteins, respectively. MHF16 and MHF21 expression was not significantly induced by heat shock, but it was down-regulated by cold shock. Knockout mutants of these genes $({\Delta}$mhf16 and ${\Delta}$mhf21) were viable, but conidiation was severely reduced. Moreover, sectoring was observed in the ${\Delta}mhf16$ mutant when it was grown on oatmeal agar medium. Conidial germination, appressorium formation, and pathogenicity in rice were not significantly affected in the mutants. The defects in conidiation and colony morphology were fully complemented by reintroduction of wild type MHF16 and MHF21 alleles, respectively. These data indicate that MHF16 and MHF21 play important roles in conidiation in the rice blast fungus.
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