Objective : The aim of this study was to evaluate the influence of three different media on preimplatation embryo development and the expression of Bcl-2, Mcl-1, Bax, and Bok in mouse. Materials and Methods: Two-cell embryos were retrieved from ICR female mice (4 weeks old) at 48 hr after hCG injection and cultured in Ham's F-10, HTF, and G1.2 media. The developmental rate of 2-cell embryos was evaluated from 24 hr to 72 hr after culture. RT-PCR was performed for the detection of Bcl-2, Mcl-1, Bax, and Bok gene expression. Results: The rates of morula and blastocyst in HTF and G1.2 media (88%, 98.1%) were significantly higher than those in Ham's F-10 media (39.6%) at 48 hr. Likewise, the rates of hatching and hatched blastocyst in HTF and G1.2 media (21.9%, 52.9%) were higher than those in Ham's F-10 media (3.5%) at 72 hr. Bcl-2 and Bax mRNAs were highly detected in embryos cultured in Ham's F-10 when compared in embryos cultured in HTF and G1.2. In contrast, the expression of Mcl-1 and Bok was not significantly different. Conclusion: These results show that HTF and G1.2 culture media increase the rate of blastocyst formation and stimulate Bcl-2 and Bax gene expression in mouse preimplantation embryos.
Park Y. S.;Kim S. S.;Park H. D.;Park H. J.;Kim J. M.
Journal of Embryo Transfer
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v.20
no.2
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pp.89-95
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2005
In this study, we investigated the effects of number, grade, stage and day of embryos on pregnancy and abortion rates of Holstein heifer recipients after transfer of in-vitro produced Korean Native Cattle (Hanwoo) embryos. When one, two or three blastocysts were transferred to recipients, pregnancy (32.0, 44.0 and $32.0\%$) and abortion (12.5, 13.6 and $6.3\%$) rates did not differ among treatments. The pregnancy and abortion rates of different grades of blastocysts were $40.8\~44.2\%\;and\;9.4\~16.3\%$, respectively. However, they were not significantly different. According to the stage of blastocyst, the pregnancy rates were similar between $39.1\%\;and\;45.3\%$. However, the abortion rate in hatched blastocyst stage $(20.8\%)$ was significantly higher than that in late blastocyst stage $(9.0\%)$. The pregnancy rates in day $7\cdot7$ and day $7\cdot8$ blastocyst (47.1 and $53.9\%$, respectively) was significantly higher than that in the day $9\cdot9\;and\;8\cdot9$ blastocyst (29.8 and $27.7\%$, respectively). The abortion rate was the highest in the day $9\cdot9$ blastocyst $(30.8\%)$ among treatments, and it was significantly different compared to that in the day $7\cdot7$ blastocyst $(10.1\%)$. Therefore, this study suggested that the pregnancy rate was affected by only day of embryos, while the abortion rate was affected by stage and day of embryos.
Objective: We studied the effect of the site of laser zona opening on the complete hatching of mouse blastocysts and the cell numbers of the completely hatched blastocysts. Methods: Mouse blastocysts were randomly allocated to the inner cell mass (ICM) group (zona opening performed at the site of the ICM, n=125), the trophectoderm (TE) group (zona opening performed opposite to the ICM, n=125) and the control group (no zona opening, n=125). Results: The rate of complete hatching of the blastocysts was not significantly different in the ICM and the TE group (84.8% vs 80.8%, respectively; p=0.402), but was significantly lower in the control group (51.2%, p<0.001). The cell numbers in the completely hatched blastocysts were comparable in the control group, the ICM group, and the TE group ($69{\pm}19.3$, $74{\pm}15.7$, and $71{\pm}16.8$, respectively; p=0.680). Conclusion: These findings indicate that the site of laser zona opening did not influence the rate of complete hatching of mouse blastocysts or their cell numbers.
The present study compares development of rabbit embryos generated using different oocyte activation protocols and reconstructed with embryonic or cumulus cells as nuclear donor. In vivo matured oocytes were collected from New Zealand White rabbits at 16 h after ovulation treatment and were activated at18 h of post-ovulation treatment. The following schemes of oocytes activation were tested: 1) single electric pulse (EP, 3.2 kV/cm, 3${\times}$20 $\mu$s, 0.3 M mannitol)+5 min culture in the presence of 5 mM Ionomycin, 2) single electric pulse (EP, 3.2 kV/cm, (${\times}$20 $\mu$s, 0.3 M mannitol)+1 h culture in the presence of 2 mM 6-DMAP, and 3) three electric pulses 30 min apart. Cleavage rate, percentage of expanded and hatched blastocysts as well as total cell number of blastomeres of parthenogenetic embryos were significantly higher using either EP+6-DMAP or 3${\times}$EP schemes, comparing with EP+Ionomycin. Development rate up to hatched blastocyst stage of cloned rabbit embryos using the EP+6-DMAP for activation of nuclei were 19% for embryonic cell nuclei and 36% for cumulus cell nuclei. The best activation protocol optimalized in this study was the combined treatment "P+6-DMAP" which may be potentially used for nuclear transfer protocol.
Total thirty of flushing were attempted on day 4 to 15 of estrus cycle with S heifers and 9 cows by nonsurgical method. The flushed or recovered rate among flushings was 86.7% (26/30) or 88.5% (23/26), respectively. There was no difference in the recovered rate between heifers (85.7%,6/7) and cows (89.5%, 17119). The embryo was recovered on day 4 to 15 of estrus cycle from the donors in natural heat without any technical difficulties.The I2FG Foley catheter used for pubertal heifers had sometimes plug in it with uterine mucus during flushing of uterine horn. But the problem could be overcomed by pumping the catherter with fluthing solution or by changing the catheter. Three normal embryos were recovered from 3 pubertal (10-11 month old) heifers. The rate of normal and abnormal eggs was 60.9% (14123) and 39.1% (9/23), respectively. The abnormal eggs were on degenerating except one unfertilized egg and were mostly recovered from heifers or cows flushed consecutively during the estrus cycle. The developmental states of normal embryos were l6-cells on day 5, 32-cells on day 6, compacted-morula on day 7, early-to expanded-blastocyst on day 8-to 9, and hatching-to hatched-blastocyst on day 10 to 11 of estrus cycle. The stage of embryos on day 8 to 10 showed varities among donors. On day 8 to 9 of estrus cycle hatching-blas tocyst was recovered from some donors.
The purpose of this study was to investigate the effect of Matrigel on the development of bovine embryos after in vitro fertilization. Bovine embryos were cultured in Ⅰ) SOF+ 0.8% BSA(SOF-B), Ⅱ) SOF+ 0.8% BSA plus 0.8% Matrigel(SOF-M) and III) SOF+0.8% BSA and 10% FBS(SOF-BF). The addition of Matrigel appeared not to increase the proportion of blastocysts (SOF-B, 26.6%; SOF-M, 28.2%; SOF-BF, 26.2%). However, the proportion of hatched blastocysts were significantly increased(P<0.05) by Matrigel(SOF-B, 23.7%; SOF-M, 48.7%; SOF-BF, 18.5%). The means of cell number blastocyst was not significantly different among the treatment groups(SOF-B, 172.7±35.5; SOF-M, 175.1±37.4; SOF-BF, 172.8±38.1). The proportion of apoptotic cells in blastocyst was also found to be not significant among the treatment groups(SOF-B, 3.6±3.2%; SOF-M, 4.3±2.6%; SOF-BF, 4.9±4.3%). In this experiment, Matrigel appeared to support embryonic hatching of bovine embryos. Results suggest that Matrigel, as extracellular matrix components, may be another avenue for formulating more physiological culture system in serum-free culture.
Kim, Ju-Hwan;Park, Kee-Sang;Lee, Taek-Hoo;Chun, Sang-Sik;Song, Hai-Bum
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.27
no.1
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pp.1-7
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2000
Objective: Mammalian embryos undergo changes of energy environment for transfer from oviduct to uterus. Also, the human reproductive organ (oviduct, uterus) contains energy sources of different concentration (oviduct - glucose: 0.5 mM, pyruvate: 0.32 mM, lactate: 10.5 mM; uterus - goucose: 3.15 mM, pyruvate: 0.1mM, lactate: 5.87 mM, respectively). This study was conducted to examine the effect of these energy sources added in DMEM with glutamine on the mouse embryo development. Methods: There was used ICR female mouse. Two cell embryos of mouse are collected by method of 'flushing'. Flushing fluid was used Ham's F-10 added to 20% FBS. The collected 2 cell embryos were cultured in media such as Control (only DMEM), group A and B (DMEM supplemented with 0.5 mM and 3.15 mM glucose), and group C and D (DMEM supplemented with 0.1 mM and 0.32 mM pyruvate), and group E and F (DMEM supplemented with 5.87 mM and 10.5 mM lactate). All experimental media supplemented with 20% hFF, respectively. Pattern of embryo development was observed to interval at 24hr during 96hr. Results : The media with glutamine added glucose (group A: 51.0%; group B: 48.4%) was significantly (p<0.05) higher than other experimental group in development into the morula stage after 24 hr in culture, but not significantly different compared with control and the rate of development into the blastocyst was significantly (p<0.05) low in the both of pyruvate (group C: 7.9% group D: 6.8%) and lactate (group E: 7.1%, group F: 7.1%) treatment group after 48 hr in culture. Development into the blastocyst and hatched balstocyst after 72 hr in culture revealed similarly in control (81.9%) and glucose treatment group (group A: 83.3%, group B: 82.8%). However, development into the hatched and attached blastocyst after 96hr in culture revealed significantly (p<0.05) development in the glucose treatment group (group A: 82.3%, group B: 78.5%) than control (63.2%), and its of pyruvate (group C: 34.1%, group D: 34.1%) and lactate (group E: 25.9%, group F: 33.3%) treatment group were significantly (p<0.05) lower than control similar to previous observations. Conclusion : The glucose added to the DMEM with only glutamine, as energy source, was highly to the rate of development compared with control, but the other energy sources were not, synthetically. Above refer to, the human reproductive organ (oviduct, uterus) contains energy sources of different concentration. Thus, further studies are will examine continuously to effects by interaction of different energy sources in the mouse embryo development, and these results will provide to foundation on the human embryo culture.
Kim, Jae-Young;Lee, Eun-Ji;Park, Jin-Mo;Lee, Hong-Cheol;Park, Hum-Dai;Kim, Jae-Myeong
Journal of Embryo Transfer
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v.26
no.2
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pp.117-122
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2011
In this study, we examined the effectiveness of in vitro fertilization of porcine immature oocytes on the embryo development of blastocysts or hatched blastocysts and the number of cells according to the in vitro fertilization conditions. In the in vitro fertilization of in vitro matured porcine oocytes, there were no significant differences between treatment groups regarding fertilization rate, blastocyst rate, and embryo development of hatched blastocysts according to the storage periods of liquid sperm of 24, 48, and 72 hours. The embryo development rate of hatched blastocysts after the fertilization according to different spermatozoa concentrations ($0.4{\times}10^5$, $1.2{\times}10^5$, and $3.6{\times}10^5$ cells/ml) showed the highest rate in the group with a spermatozoa concentration of $1.2{\times}10^5$ cells/ml; in particular, this rate was significantly higher than that in the $0.4{\times}10^5$ cells/ml group (p<0.05). The total number of blastocysts cells as well as trophectoderms (TE) that developed in each treatment group were also significantly higher in the $1.2{\times}10^5$ cells/ml group than in any other groups (p<0.05). In contrast, the embryo development rate of blastocysts according to different co-incubation periods of sperm and oocyte (1, 3, and 6 hr) was high in the 6-hour group; in particular, the rate was significantly higher than that of the I-hour group (p<0.05). Furthermore, the total number of oocytes cells and TEs that developed was significantly higher in the 6-hour group than any other group (p<0.05). In this study, the most effective treatment conditions for porcine embryo development and high cell number were found to be as follows: a sperm storage period of less than 72 hours, a spermatozoa concentration of $1.2{\times}10^5$ cells/ml, and a 6-hour co-incubation period for sperm and ooocyte.
This experiment was designed to evaluate effects of nonspecific immunostimulator(NIS) Barodon-FX(equation omitted), anionic alkali mineral complex and far-infrared radiation solution on in vivo-produced mouse and in vitro-produced bovine embryos to blastocyst development. Proportion of mouse embryos developing into blastocyst was not greater in BSA- and Barodon-added medium than in BSA-control, but there was signifcantly different(P < 0.05) in hatching and hatched blastocyst development between 0.25% Barodon-and PVP-contained medium(54.7%) than PVP-control(32.5%). BOEC and GC resulted in higher proliferation rate(24∼40% and 17∼22%, respectively) in 0.25∼0.5% Barodon-added medium than in controls, but proliferation of GC and CC greatly decreased in 1∼2% Barodon-added medium. Effect of Barodon on cell proliferation greatly varied among somatic cells. Proportion of early bovine embryos developing into morula and blastocyst was significantly greater(P < 0.05) in 0.5% Barodon-added medium(50% and 63.6%) than in control(31.6% and 27.4%) under co-culture with BOEC and GC, but developmental rate was not different between other Barodon treatments and control. These data indicate that effect of Barodon on cell proliferation significantly varied between somatic cells and that addition of 0.5% Barodon in BOEC-coculture system may further improve blastocyst development in early bovine embryos.
RNA interference (RNAi) is an acknowledged useful and effective tool to study gene function in various cells. Here, we suppressed the Connexin 43 (Cx 43) gene expression during in vitro development of ovine pre-implantation embryos using the RNAi method. The 353 bp Cx 43 double-stranded RNA was microinjected into in vitro fertilized ovine zygotes, and the levels of target mRNA and protein were investigated. Control groups included uninjected zygotes or those injected with RNase-free water. The dsRNA injection resulted in the specific reduction of Cx 43 transcripts as analyzed by quantitative real-time RT-PCR and decreased protein levels as shown by Western blot analysis at the blastocyst stage. Microinjection of Cx 43 dsRNA led to 20.3%, 21.7% and 34.5% blastocyst rates and 19.2%, 37.5% and 41.3% hatched blastocyst rates in Cx 43 dsRNA-injected, water-injected and uninjected groups, respectively. Then the RNAi could not significantly affect cell number and cell death rates of blastocysts. Therefore, suppression of Cx 43 dsRNA and proteins did not apparently affect the development potential of ovine pre-implantation embryos but may play a role in embryo quality. RNAi technology is a promising approach to study gene function in early ovine embryogenesis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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