• 제목/요약/키워드: hFSH

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CHO 세포와 형질전환 닭에 있어서 Retrovirus Vector System에 의한 hFSH 재조합 유전자의 전이와 발현 (Transfer and Expression of the Recombinant hFSH Gene in CHO Cells and Transgenic Chickens using Retrovirus Vector System)

  • 권모선;구본철;심호섭;박창식;이성호;김태완
    • 한국가축번식학회지
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    • 제27권3호
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    • pp.197-206
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    • 2003
  • hFSH는 $\alpha$$\beta$ subunit으로 구성된 heterodimer로서 두 subunit의 조합은 활성을 지닌 호르몬의 생산에 있어서 매우 중요한 단계이다. 이 조합과정의 효율을 증대하기 위하여 본 연구에서는 hFSH를 단일사슬의 단백질로 구축하고자 하였으며, 이의 일환으로 각 subunit 대한 cDNA단편을 연결하는 서열로 CTP linker를 도입하였다. 재조합한 hFSH-CTP 유전자는 pseudotype의 retrovirus vector system을 이용하여 CHO 세포와 닭의 배로 각각 전이되었다. CHO 세포에서의 FSH의 생산은 $\alpha$$\beta$를 각각 전이한 경우에 비해 hFSH-CTP를 전이한 경우에서 17배 이상 높은 것으로 나타났다. 닭에서는 유전자 전이를 시도한 62개체 중에서 11마리가 부화하였으며 그 중 10마리가 형질전환된 닭인 것으로 RT-PCR을 통하여 확인되었다. 그러나 개체의 혈중 FSH의 생산은 확인하지 못하였다. 이상의 실험 결과를 바탕으로 하여 재조합된 hFSH-CTP는 FSH의 발현에 매우 효율적인 구조로 생각되며, 또한 retrovirus를 이용한 유전자 전이 방법은 형질전환 가금의 생산에 있어서 매우 적절한 방법으로 사료된다.

배지 및 첨가호르몬이 돼지난포란의 체외발생능에 미치는 영향 (Influence of Media and Hormones on the In Vitro Development of Porcine Follicular Oocytes)

  • 박병권;이규승
    • 농업과학연구
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    • 제26권2호
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    • pp.19-24
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    • 1999
  • 본 실험은 배지 및 호르몬이 돼지 난포란의 체외성숙 및 체외발생능에 미치는 영향을 구명하기 위하여 실시하였다. 기본 배지는 TCM-199, Waymouth MB751/1 및 BMOC-II를 사용하였으며, 각각의 배지에 첨가된 호르몬은 hCG와 FSH를 사용하였다. 실험에서 얻어진 결과를 요약하면 다음과 같다. 1. TCM-199을 기본배양액으로 하여 돼지난포란을 체외배양하였을 때, 체외성숙률은 배양액내에 hCG 단독첨가의 경우가 78.05%, FSH 단독첨가에서 72.50%, hCG와 FSH의 병용첨가의 경우가 67.50%로서 호르몬을 첨가하지 않은 처리구의 54.29%에 비하여 유의적(P<0.05)으로 높은 성적을 나타냈으며, 수정후 같은 배지조건하에서 난할률은 호르몬 첨가의 경우(hCG 46.88%, FSH 31.04%, hCG+FSH 37.04%)가 무첨가구(89.47%)에 비하여 유의적(P<0.05)으로 낮았다. 2. Waymouth MB751/1을 배양액으로 하여 체외배양하였을 때, 체외성숙률은 배양액내에 hCG가 71.43%, hCG+FSH 병용첨가의 경우가 80.00%로서 호르몬을 첨가하지 않은 처리구의 25.64%에 비하여 유의적(P<0.05)으로 높은 성적을 나타냈다. 그러나, 난할률은 호르몬 첨가의 경우(hCG 46.67%, FSH 36.00%, hCG+FSH 35.71%)가 무첨가구(60.00%)에 비하여 낮은 성적을 나타냈다. 3. BMOC-II를 기본배양액으로 하여 체외배양 하였을 때, 체외성숙률은 배양액내에 hCG 단독첨가 66.7%, FSH 단독첨가 91.89%, hCG+FSH 병용첨가 81.82% 및 무첨가구 66.67%로 각각 나타나서 FSH 단독첨가의 경우가 가장 높은 성적을 나타냈다. 또한, 난할률은 hCG 단독첨가 79.17%, FSH 단독첨가 50.00%, hCG_FSH 병용첨가 66.67% 및 무첨가 81.82%로 각각 나타났다.

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Signal Transduction of Equine Follicle-Stimulating Hormone Receptor (eFSHR) by rec-eelFSHβ/α, Natural Porcine FSH, and Natural Human FSH

  • Byambaragchaa, Munkhzaya;Kim, Dae-Jung;Kang, Myung-Hwa;Min, Kwan-Sik
    • Reproductive and Developmental Biology
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    • 제42권1호
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    • pp.1-6
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    • 2018
  • In this study, we analyzed signal transduction by equine follicle-stimulating hormone receptor (eFSHR) on sti- mulation with recombinant $eelFSH{\beta}/{\alpha}$ ($rec-eelFSH{\beta}/{\alpha}$), natural porcine FSH (pFSH), and natural human FSH (hFSH). cAMP stimulation in CHO-K1 cells expressing eFSHR was determined upon exposure to different doses (0-1450 ng/mL) of these hormones. The $EC_{50}$ value of $rec-eelFSH{\beta}/{\alpha}$ was 53.35 ng/mL. The Rmax values of $rec-eelFSH{\beta}/{\alpha}$ and pFSH were 28.12 and 2.88 ng/mL, respectively. The activity of $rec-eelFSH{\beta}/{\alpha}$ was much higher than that of natural pFSH. However, signal transduction in CHO PathHunter Parental cells expressing eFSHR was not enhanced by stimulation with natural hFSH. Thus, $rec-eelFSH{\beta}/{\alpha}$ was completely active in cells expressing eFSHR. However, natural hFSH did not invoke a signal response in cells expressing eFSHR. Particularly, natural pFSH was weakly active in the same cells. These results showed that $eelFSH{\beta}/{\alpha}$ has potent activity in cells expressing eFSHR. Thus, $rec-eelFSH{\beta}/{\alpha}$ may efficiently bind to eFSHR, where as natural hFSH does not bind to eFSHR.

한국 재래산양에서의 과배란유기와 외래유전자 주입에 적합한 수정란의 회수에 관한 연구 (Studies on the Superovulation and Collection of microinjectable Embryos in Korean Native Goats (Capra hircus aegagrus))

  • 윤우식;이철상;;방남수;구덕본;한용만;신상태;유욱준;박창식
    • 한국가축번식학회지
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    • 제21권4호
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    • pp.373-379
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    • 1997
  • This study was carried out to determine the hormone treatment scheme for an efficient superovulation and optimal recovery time for obtaining pronuclear embryos suitable for DNA injection in Korean native goats. For a superovulation, FSH(5.6mg) was given over four days in twice daily injections with (FSH/hCG group) or without(FSH group) hCG(100 IU) co-injection at the time of 7th FSH injection. Estrus cycle was synchronized by norgestomet ear-implantation for 11 days and its removal at the time of 6th FSH injection. Among the treated goats, the percentage of ovulated goats, which were examined at 70 to 76 h following implant removal, was greater in FSH/hCG group than in FSH group (100% vs 36.4%) but there was no significant difference in the mean numbers of ovulation points and fertilization rates between the two groups. To optimize hCG treatment scheme and recovery time, we injected hCG at the time of 7th (FSH/hCGa) or 8th(FSH/hCGb) FSH injection and then examined the developmental stage of the embryos recovered at different times after implant removal. In FSH/hCGa group, significant portions(31 to 44%) were beyond 1-cell stage, which was non-injectable, irrespective of their recovery time. However, in FSH/hCGb group recovered at 70 to 76 h after implant removal, great portions(69%) were fertilized and most of them(96.6%) were injectable 1-cell stage. Considering together the fertilization rate and developmental stage of recovered embryos, it is recommendable to administrate hCG at the time of final 8th FSH injection and collect the embryos at 70 to 76 h after implant removal to obtain injectable embryos as many as possible in Korean native goats.

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In Vitro에서 Retrovirus Vector System을 이용한 재조합 hFSH 유전자의 발현 (In Vitro Expression of the Recombinant hFSH Gene using Retrovirus Vector System)

  • 민경헌;권모선;김태완;구본철
    • Reproductive and Developmental Biology
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    • 제35권1호
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    • pp.115-121
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    • 2011
  • hFSH is a glycoprotein secreted from anterior pituitary and consists of ${\alpha}$ and ${\beta}$ subunits. Because of its major biological functions including sperm formation in the male and for follicular growth, FSH is used to cure woman's sterility. In this study we tried to produce recombinant hFSH in vitro using a retrovirus expression vector. Two major components of the vector we constructed are: ( i ) a DNA fragment containing ${\alpha}$ and ${\beta}$ genes fused by a DNA sequence coding carboxyl terminal peptide (CTP) of human chorionic gonadotropin, (ii) a DNA fragment corresponding woodchuck hepatitis virus posttranscriptional regulatory element (WPRE). Evaluation of expression profile of the recombinant FSH using reverse transcription PCR and enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Among three cell lines tested, HeLa cells were the best for hFSH expression (5,395 mIU/ml), then followed by chicken embryonic fibroblast (CEF) cells and Chinese hamster ovary (CHO) cells in the order of hFSH production. In addition to the amount, the FSH produced from HeLa cells was highest in terms of biological activity which was determined by measuring cAMP.

인공수정 시술시 저용량 FSH(Low-dose FSH) 용법의 임상적 효용성에 관한 연구 (The Clinical Efficacy of the Low-dose FSH Regimen for Intrauterine Insemination)

  • 한명석
    • Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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    • 제28권1호
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    • pp.47-53
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    • 2001
  • Objective: This study is to investigate the clinical efficacy of low-dose FSH regimen, comparing with clomiphene citrate and human menopausal gonadotropin (CC/hMG) regimen. Methods: Retrospective study of the ovulatory factor infertility 39 patients who had been treated by intrauterine insemination (IUI). The 31 cycles of 21 patients were stimulated by CC/hMG regimen, the 22 cycles of 18 patients were stimulated by low-dose FSH regimen. We compared the rate of clinical pregnancy, multiple pregnancy and ovarian hyperstimulation syndrome (OHSS) of both group. Results: The rate of clinical pregnancy of the CC/hMG group was 25.7% per cycle, and that of the low-dose FSH group was 54.5% per cycle. The low-dose FSH group showed a higher rate of clinical pregnancy per cycle than CC/hMG group (p=0.028). However, no differences was found statistically in the rate of multiple pregnancy and OHSS between CC/hMG group (22.2%, 5.7%) and low-dose FSH group (33.3%, 13.6%). Conclusion: This study showed that the low-dose FSH regimen is superior to CC/hMG regimen in getting clinical pregnancy, but dose not reduce the ovulation induction complications.

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Production of Bovine Nuclear Transfer Embryos Using Fibroblasts Transfected with Single-Chain Human Follicle-Stimulating Hormone Gene

  • Yoon, Ji Young;Kwon, Mo Sun;Kang, Jee Hyun;Ahn, Kwang Sung;Kim, So Seob;Kim, Nam-Hyung;Kim, Jin-Hoi;Kim, Teoan;Shim, Hosup
    • Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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    • 제22권2호
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    • pp.168-173
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    • 2009
  • Human follicle-stimulating hormone (hFSH) is a pituitary glycoprotein that regulates follicular development and ovulation. Clinically, hFSH has been used to induce follicular growth in infertile women. The hormone is composed of heterodimers, including a common ${\alpha}$ subunit among the gonadotropin family and a hormone-specific ${\beta}$ subunit. Since assembly of the heterodimer is a rate-limiting step in the production of functional hFSH, transgenic clone cows carrying a single-chain hFSH transgene may efficiently produce functional hormone. Genes encoding the ${\alpha}$ and ${\beta}$ subunits of hFSH were linked using the C-terminal peptide sequence from the ${\beta}$ subunit of human chorionic gonadotropin. Bovine fetal fibroblasts were transfected with the gene construct, including the goat ${\beta}$-casein promoter and a single-chain hFSH coding sequence. Transfected fibroblasts were transferred into enucleated oocytes, and individual nuclear transfer (NT) embryos developed to the blastocyst stage were analyzed for the transgene by polymerase chain reaction. Seventy eight blastocysts (30.8%) were developed from 259 reconstructed embryos. Among these blastocysts, the hFSH gene was detected in 70.8% (34/48) of the embryos. Subsequent transfer of hFSH-transgenic clone embryos to 31 recipients results in 11 (35.5%) early pregnancies. However, all fetuses were lost before reaching day 180 of gestation. The results from this study demonstrated that bovine NT embryos carrying single-chain hFSH could be produced, and further extensive studies in which NT embryos are transferred to more recipients may give rise to single chain hFSH-transgenic cows for biomedical applications.

hFSH 유전자가 도입된 소 태아섬유아세포를 이용한 형질 전환 복제 수정란의 발달 (Development of Transgenic NT Embryos Using Bovine Fetal Fibroblasts Transfected with hFSH Gene)

  • 양병철;임기순;김동훈;민관식;윤두학;박효숙;김세웅;황인선;서진성;성환후;양보석
    • 한국수정란이식학회지
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    • 제21권1호
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    • pp.13-20
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    • 2006
  • 본 연구의 목적은 요를 통해 hFSH를 발현하는 형질 전환 소의 생산이다. 요의 분비와 관련 있는 유전자로서 mUII promoter를 사용하여 hFSH유전자를 구성했다. 태아섬유아세포(KbFF)는 임신 45일령의 태아(male)에서 채취하였다. hFSH gene은 pcDNA3(neo) vector와 같이 KbFF 세포에 electroporation 방법으로 transfection하였다. 유전자를 transfection한 세포는 G-418로 2주 동안 배양하였고, 선발된 colony는 PCR로 확인하였다. 핵이 제거된 난자는 hFSH가 transfection된 세포와 transfection 되지 않은(control) 세포를 이용하여 핵이식하였다. 48시 간 후 hFSH가 transfection된 세포는 68.7%의 수정란이 난할되었으며, 8일 후 15.7%의 수정란이 배반포로 발달하였다. 그러나 대조구에서는 67.6%가 난할되었으며, 24.5%가 배반포로 각각 발달하였다. 이들 배반포에서 apoptosis 분석 결과 hFSH 유전자가 transfection된 또는 transfection되지 않은 대조구에서 유의적인 차이는 보이지 않았다. 배반포는 53두의 수란우에 이식하여 두 마리의 산자가 생산되었으나(1.9%) hFSH가 transfection되지 않은 것으로 나타났다. 이 결과는 선발된 hFSH colony에서 transfection되지 않은 세포가 혼합되어 있었다는 것을 나타내 주고 있으며, colony의 선발과 검증에 더 많은 연구의 필요성이 있음을 나타내준다.

GFP 및 hFSH Gene을 이용한 형질전환 복제수정란의 생산

  • 양병철;임기순;김동훈;이상기;박수봉;성환후;민관식;이연근;장원경
    • 한국동물번식학회:학술대회논문집
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    • 한국동물번식학회 2003년도 학술발표대회 발표논문초록집
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    • pp.42-42
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    • 2003
  • 복제기술은 기존의 형질전환 동물 생산의 효율을 향상시킬 수 있는 기술로서 인정하고 있으며 또한 이를 이용하여 형질전환 동물의 생산이 이루어지고 있다. 따라서 본 연구는 표지유전자 (GFP)와 유용유전자 (hFSH)를 이용하여 임신 45일령에 채취한 태아섬유아세포에 transfection 하고, transfection 된 세포의 효율적인 선발과 이를 이용한 형질전환 복제 수정란을 생산하고자 실시하였다. 대조구 (KbFF), GFP (79KbFF-GFP c-3) 및 hFSH (79KbFF-hFSH n-1)에 공시한 세포는 모두 동일한 태아유래의 세포 (모 79, 부 KPN178,♂)를 이용하였다. pAB-eGFP와 hFSH 유전자는 각파 electroporation 방법을 이용하여 transfection 하고, 이를 2주 동안 G418로 배양하며 selection 하였다.

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융모성 성선자극 호르몬 및 난포 자극호르몬 수용체의 293세포에서 기능적으로 발현 (Functional Expression of Lutropin/Choriogonadotropin and Follitropin Receptor cDNAs in 293 Cells)

  • Min, K.S.
    • 한국가축번식학회지
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    • 제23권4호
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    • pp.347-352
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    • 1999
  • 1. 유전자 재 조합 호르몬 (eCG IPMSG, hCG 및 hFSH)의 활성체크 및 세포내 signal transduction에 관한 기초연구를 위하여 rat의 융모성 성선자극 호르몬 수용체 (LH/CGR) 및 난포 자극호르몬 수용체 (FSHR)를 이미 보고되어진 염기배열에 의하여 PCR 방법으로 크로닝 하여, human embryonic kidney 유래의 293 세포에 transfection 하여 세포 표면에 LH/CGR와 FSHR를 발현하는 cell lines을 분리하였다. 2. hCG와 FSH의 signal을 전달하는 능력은 hCG와 FSH 또는 eCG의 농도증가에 따라 이들 수용체로 하여금 세포내의 cAMP 분비가 증가함을 알 수 있었다. 즉, transfection 되어진 이들 수용체를 발현하는 수용체의 대부분은 ligand binding 기능올 가지고, cAMP 반응에 의한 생리활성을 분석할 수 있으며, 또한 유전자 재조합당 단백질 호르몬 (eCG, hCG 및 hFSH)의 signal transduction, 구조 및 기능연구에 활용할 수 있다.

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