The human body is continuously threatened by pathogens, and the immune system must maintain a balance between fighting infection and becoming over-activated. Mucosal surfaces cover several anatomically diverse organs throughout the body, such as the respiratory and gastrointestinal tracts, and are directly exposed to the external environment. Various pathogens invade the body through mucosal surfaces, making the mucosa the frontline of immune defense. The immune systems of various mucosal tissues display distinctive features that reflect the tissues' anatomical and functional characteristics. This review discusses the cellular components that constitute the respiratory and gastrointestinal tracts; in particular, it highlights the complex interactions between epithelial and immune cells to induce Ag-specific immune responses in the lung and gut. This information on mucosal immunity may facilitate understanding of the defense mechanisms against infectious agents that invade mucosal surfaces, such as severe acute respiratory syndrome coronavirus 2, and provide insight into effective vaccine development.
장관은 우리 몸에서 가장 넓은 표면적을 가지고 있으며, 외부로부터 침입하는 이물에 대항하여 면역세포의 배치가 필수적이다. 항원과 만난 적이 없는 naive lymphocyte는 임파절 등 2차 임파기관의 수지세포(dendritic cell)가 임파구에 항원을 제시할 때 레티노인산(retinoic acid)을 생산하여 제공함으로써, 소장 조직에 특이적으로 임파구가 호밍(homing)하는 능력을 부여한다. 한편, 장에 있어서는 식품항원에 대한 면역반응을 억제할 필요가 있는데, RA는 T세포의 기능분화를 억제하여 면역관용의 성립에도 관여함이 밝혀졌다.
The herpes virus entry mediator (HVEM) is a member of the tumor necrosis factor receptor superfamily (TNFRSF), and therefore it is also known as TNFRSF14 or CD270 (1,2). In recent years, we have focused on understanding HVEM function in the mucosa of the intestine, particularly on the role of HVEM in colitis pathogenesis, host defense and regulation of the microbiota (2-4). HVEM is an unusual TNF receptor because of its high expression levels in the gut epithelium, its capacity to bind ligands that are not members of the TNF super family, including immunoglobulin (Ig) superfamily members BTLA and CD160, and its bi-directional functionality, acting as a signaling receptor or as a ligand for the receptor BTLA. Clinically, Hvem recently was reported as an inflammatory bowel disease (IBD) risk gene as a result of genome wide association studies (5,6). This suggests HVEM could have a regulatory role influencing the regulation of epithelial barrier, host defense and the microbiota. Consistent with this, using mouse models, we have revealed how HVEM is involved in colitis pathogenesis, mucosal host defense and epithelial immunity (3,7). Although further studies are needed, our results provide the fundamental basis for understanding why Hvem is an IBD risk gene, and they confirm that HVEM is a mucosal gatekeeper with multiple regulatory functions in the mucosa.
Objective: This study was conducted to investigate the effects of dietary multi-strain probiotic (MSP) (Bacillus coagulans Unique IS2 + Bacillus subtillis UBBS14 + Saccharomyces boulardii Unique 28) on performance, gut morphology and expression of nutrient transporter related genes in broiler chickens. Methods: A total of 256 (4×8×8) day-old CARIBRO Vishal commercial broiler chicks of uniform body weight were randomly distributed into four treatments with 8 replicates each and having eight chicks in each replicate. Four dietary treatments were T1 (negative control-basal diet), T2 (positive control-antibiotic bacitracin methylene disalicylate at 20 mg/kg diet), T3 (MSP at 107 colony-forming unit [CFU]/g feed), and T4 (MSP at 108 CFU/g feed). Results: During 3 to 6 weeks and 0 to 6 weeks, the body weight gain increased significantly (p<0.05) in T3 and T4 groups. The feed intake significantly (p<0.05) reduced from T1 to T3 during 0 to 3 weeks and the feed conversion ratio also significantly (p<0.05) improved in T3 and T4 during 0 to 6 weeks. The humoral and cell mediated immune response and the weight of immune organs were also significantly (p<0.05) improved in T3 and T4. However, significant (p<0.05) dietary effects were observed on intestinal histo-morphometry of ileum in T3 followed by T4 and T2. At 14 d post hatch, the relative gene expression of glucose transporter (GLUT5), sodium-dependent glucose transporter (SGLT1) and peptide transporter (PepT1) showed a significant (p<0.05) up-regulating pattern in T2, T3, and T4. Whereas, at 21 d post hatch, the gene expression of SGLT1 and PepT1 was significantly (p<0.05) downregulated in MSP supplemented treatments T3 and T4. Conclusion: The supplementation of MSP at 107 CFU/g diet showed significant effects with improved performance, immune response, gut morphology and expression of nutrient transporter genes. Thus, the MSP could be a suitable alternative to antibiotic growth promoters in chicken diets.
Recent studies have revealed that probiotics and their metabolites are present under various conditions; however, the role of probiotic metabolites (i.e., postbiotics in pathological states) is controversial. Natural killer (NK) cells play a key role in innate and adaptive immunity. In this study, we examined NK cell activation influenced by a postbiotics mixture in response to gut microbiome modulation in stress-induced mice. In vivo activation of NK cells increased in the postbiotics mixture treatment group in accordance with Th1/Th2 expression level. Meanwhile, the Red Ginseng treatment group, a reference group, showed very little expression of NK cell activation. Moreover, the postbiotics mixture treatment group in particular changed the gut microbiome composition. Although the exact role of the postbiotics mixture in regulating the immune system of stress-induced mice remains unclear, the postbiotics mixture-induced NK cell activation might have affected gut microbiome modulation.
Dietary conjugated linoleic acid(CLA) has been shown to affect immune function. Thus, the objective of this study was to investigate the effects of CLA on the mice that treated prednisone. Mice were randomized into 6 groups and fed diet containing either 0(control, P), 0.5%(CLA1, CP1) or 1.5%(CLA2, CP2) CLA for Sweets. Before 1 week of finishing diet supplement CP1, CP2, and P group treated the prednisone by subcutaneous injection. The levels of serum immunoglobulin A, G, E, gut lumen s-IgA, MLN immunoglobulin A, body weight, mucosal protein was compared. The level of serum IgA in CLA1, CLA2, CP1, and CP2 group increased, while which of P group was decreased. The level of serum IgG in CLA 1 group increased, while which of the other group no differences. Serum IgE level showed no difference and the immunoglobulin production in MLN lymphocyte in CLA 1 group increased. The level of gut lumen s-IgA in P group showed decreased, while which of the other group showed no differences. These results support the view that CLA supplement partially enhance the cell-mediated immunity and overcome the immunosuppressive effect of prednisone.
This review delved into the intricate relationship between the gastrointestinal microbiome and gastric cancer, particularly focusing on post-treatment alterations, notably following gastrectomy, and the effects of anticancer therapies. Following gastrectomy, analysis of fecal samples revealed an increased presence of oral cavity aerotolerant and bile acid-transforming bacteria in the intestine. Similar changes were observed in the gastric microbiome, highlighting significant alterations in taxon abundance and emphasizing the reciprocal interaction between the oral and gastric microbiomes. In contrast, the impact of chemotherapy and immunotherapy on the gut microbiome was subtle, although discernible differences were noted between treatment responders and non-responders. Certain bacterial taxa showed promise as potential prognostic markers. Notably, probiotics emerged as a promising approach for postgastrectomy recovery, displaying the capacity to alleviate inflammation, bolster immune responses, and maintain a healthy gut microbiome. Several strains, including Bifidobacterium, Lactobacillus, and Clostridium butyricum, exhibited favorable outcomes in postoperative patients, suggesting their potential roles in comprehensive patient care. In conclusion, understanding the intricate interplay between the gastrointestinal microbiome and gastric cancer treatment offers prospects for predicting responses and enhancing postoperative recovery. Probiotics, with their positive impact on inflammation and immunity, have emerged as potential adjuncts in patient care. Continued research is imperative to fully harness the potential of microbiome-based interventions in the management of gastric cancer.
In this study, we conducted a next generation sequencing based microbial community analysis to investigate gut microbiota of the two commercially most available swine breeds, Yorkshire and Landrace. Bacterial 16S rRNA gene was amplified from fecal DNA using universal primer sets designed for V4 regions. Our comparison analysis of the gut microbiota of the two breeds suggested that their gut microbiota changed depending on the growth stages, while the difference between the two breeds was insignificant. However, there was a limited number of genera, the abundance of which was found to be different between the breeds. Those included the genus Xylanibacter in the Yorkshire samples, which was previously reported as a fiber digesting bacteria, likely increasing energy harvesting capacity of swine. In addition, others included opportunistic pathogens mostly found in the Yorkshire samples while the Landrace samples had significantly more prevalent Clostridium_IV species that were known to play a key role in systemic immunity of hosts. While microbial community shifts was found to be associated with growth stages, the difference between the two breeds seemed to be insignificant. However, there were several bacterial genera showing differential abundance, which may affect growth of hosts.
The intestinal immune system can discriminate between harmful and unharmful antigens and do not provoke productive immunity to unharmful antigen. Thus oral administration of antigen is one of classical methods for inducing antigen-specific immune tolerance in the periphery. Furthermore, oral tolerance has been investigated for the treatment of autoimmune disorders in human clinical trials. However, the detail mechanism of oral tolerance and contributing factors are not defined clearly at this time. Recent studies demonstrate unique types of immune cell that suppressing immune response, such as regulatory T cell and tolerogenic dendritic cell. This article reviews the factors involved in oral tolerance and discusses our current understanding base on the recent literatures and our works.
Objective: The intestinal microbiota plays an important role in host physiology, metabolism, immunity, and behavior. And host genetics could influence the gut microbiota of hybrid animals. The three-way cross model is commonly utilized in commercial pig production; however, the use of this model to analyse the gut microbial composition is rarely reported. Methods: Two three-way hybrid pigs were selected, with Saba pigs as the starting maternal pig: Duroc× (Berkshire×Saba) (DBS) pig, Berkshire×(Duroc×Saba) (BDS) pig. One hundred pigs of each model were reared from 35 days (d) to 210 d. The body weight or feed consumption of all pigs were recorded and their feed/gain (F/G) ratio was calculated. On day 210, 10 pigs from each three-way cross were selected for slaughter, and cecal chyme samples were collected for 16S rRNA gene sequencing. Results: The final body weight (FBW) and average daily gain (ADG) of DBS pigs were significantly higher than those of BDS pigs (p<0.05), while the F/G ratios of DBS pigs were significantly lower than those of BDS pigs (p<0.05). The dominant phyla in DBS and BDS pigs were Bacteroidetes (55.23% vs 59%, respectively) and Firmicutes (36.65% vs 34.86%, respectively) (p>0.05). At the genus level, the abundance of Prevotella, Roseburia, and Anaerovibrio in DBS pigs was significantly lower than in BDS pigs (p<0.01). The abundance of Eubacterium, Clostridium XI, Bacteroides, Methanomassiliicoccus, and Parabacteroides in DBS pigs was significantly higher than in BDS pigs (p<0.05). The FBWs and ADGs were positively correlated with Bacteroides, ClostridiumXI, and Parabacteroides but negatively correlated with the Prevotella, Prevotella/Bacteroides (P/B) ratio, Roseburia, and Anaerovibrio. Conclusion: These results indicated that host genetics affect the cecal microbiota composition and the porcine gut microbiota is associated with growth performance, thereby suggesting that gut microbiota composition may be a useful biomarker in porcine genetics and breeding.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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