The characteristics of the amyloid proteins were histochemically investigated with the amyloidladen organs from bovine(15 cases), canine(1 case), feline(1 case), and artificially induced rabbit amyloidosis(1 case). The amyloid-laden organs from bovine, canine and experimental rabbit amyloidosis showed potassium-permanganate-senstive reaction, revealing complete disappearance for Congo red affinity, loss of brick-red colored fluorescence and green birefringence. From these findings, the amyloids from bovine, canine and experimentally induced rabbit amyloidosis were thought to be equivalent to amyloid protein A (AA protein). In the present feline case with amyloidosis, however, the amyloid proteins revealed potassium permanganate-resistant reaction, showing unchanged affinity for Congo red, and immunoglobulin was also deposited in the glomeruli of the kidney. From these findings, the amyloid proteins from feline case with amyloidosis were considered to be equivalent to amyloid light chain-related proteins (AL protein).
Purpose: Dual reporter gene imaging has several advantages for more sophisticated molecular imaging studies such as gene therapy monitoring. Herein, we have constructed hepatoma cell line expressing dual reporter genes of sodium iodide symporter (NIS) and enhanced green fluorescence protein (EGFP), and the functionalities of the genes were evaluated in vivo by nuclear and optical imaging. Materials and Methods: A pRetro-PN vector was constructed after separating NIS gene from pcDNA-NIS. RSV-EGFP-WPRE fragment separated from pLNRGW was cloned into pRetro-PN vector. The final vector expressing dual reporter genes was named pRetro-PNRGW. A human hepatoma (HepG2) cells were transfected by the retrovirus containing NIS and EGFP gene (HepG2-NE). Expression of NIS gene was confirmed by RT-PCR, radioiodine uptake and efflux studies. Expression of EGFP was confirmed by RT-PCR and fluorescence microscope. The HepG2 and HepG2-NE cells were implanted in shoulder and hindlimb of nude mice, then fluorescence image, gamma camera image and I-124 microPET image were undertaken. Results: The HepG2-NE cell was successfully constructed. RT-PCR showed NIS and EGFP mRNA expression. About 50% of cells showed fluorescence. The iodine uptake of NIS-expressed cells was about 9 times higher than control. In efflux study, $T_{1/2}$ of HepG2-NE cells was 9 min. HepG2-NE xenograft showed high signal-to-background fluorescent spots and higher iodine-uptake compared to those of HepG2 xenograft. Conclusion: A hepatoma cell line expressing NIS and EGFP dual reporter genes was successfully constructed and could be used as a potential either by therapeutic gene or imaging reporter gene.
Objective : The water extract of Danguiyonghoihwan (DGYHW) has been traditionally used in treatment of tinnitus in Oriental Medicine. However, little is known about the mechanism by which DGYHW rescues auditory neuronal cells from injury damages. Therefore, in this study I effort to elucidate the mechanism of the cytoprotective effect of the DGYHW extract on glutamate-induced auditory sensorineuronal cell death. Methods : I determined the elevated cell viability by DGYHW extract on glutamate-induced auditory sensorineuronal cell death. Glutamate induced neuronal damage in oranotypic explant culture also, glutamate decreased cell viability on VOT-33 cells but pretreatment with DGYHW inhibited cell death. Results : One of the main mediator of glutamate-induced cytotoxicity was known to generation of reactive oxygen species (ROS). Pretreatment with DGYHW inhibited this ROS generation from glutamated-stimulated VOT-33 cells. Also, I identified that the ROS-induced DCF-DA green fluorescence is reduced by DGYHW pretreatment. The critical markers of apoptotic cell death were cleavages of procaspase-3 protease protein. So I checked the expression level and cleavage of procaspase-3 protease protein. Glutamate-treated VOT-33 cells were shown to have cleavage of procaspase-3 protease proteins and following reduction of expression of these proteins. But I found that pre-treatment with DGYHW protects glutamate-induced changes of biochemical marker protein, caspase-3. Conclusion : These findings indicated that DGYHW may prevent cell death from glutamate induced VOT-33 cell death by inhibiting the ROS generation and modulation of protein expressions in procaspase-3, catalase and Bcl-2.
We investigated the protein productivity of the promoters for genes showing prolonged induction upon cold shock in Escherichia coli. Six low temperature inducible genes (frdA, glpB, hypB, katG, nupG, ompT) were selected based on the previously reported cDNA microarray based global transcription profiling of Escherichia coli Kl2 in response to cold shock. Their promoter regions were isolated from the genomic DNA of E. coli JM109 and expression levels induced by the promoters were examined by using green fluorescence protein (GFP) as a reporter at $15^{\circ}C$ and $37^{\circ}C$. Among the six promoters, the promoter for nupG showed the highest and prolonged expression at both temperatures and the cold inducibility of nupG promoter was not observed.
Kim Hye Sun;Chung Hyunjoo;Kong Kyoung-Ah;Park Sungdo;Kim Myoung Hee
Biomedical Science Letters
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v.11
no.2
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pp.135-141
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2005
A Jopock (Jpk), a trans-acting factor associating with the position-specific regulatory element of murine Hoxa-7, has shown to have a toxicity to both prokaryotic and eukaryotic cells when overexpressed. Since Jpk protein harbors a transmembrane domain and a putative endoplasmic reticulum (ER)-retention signal at the N-terminus, a subcellular localization of the protein was analyzed after fusing it into the green fluorescent protein (GFP): Both N-term (Jpk-EGFP) and C-term tagged-Jpk (EGFP-Jpk) showed to be localized in the ER when analyzed under the fluorescence microscopy after staining the cells with ER- and MitoTracker. Since ER stress triggers the ER-stress mediated apoptosis to eliminate the damaged cells, we analyzed the expression pattern of Jpk under ER-stress condition. When MCF7 cells were treated with the ER-stress inducer such as DTT and EGTA, the expression of Jpk was upregulated at the transcriptional level like that of Grp78, a molecular chaperone well known to be overexpressed under ER-stress condition. In the presence of high concentration of ER-sterss inducer (10 mM), about 70 (DTT) to $95\%$ (EGTA) of cells died stronly expressing ($10\~12$ fold) Jpk. Whereas at the low concentration ($0.001\~1.0\;mM$) of the inducer, the expression of Jpk was increased about 2.5 (EGTA) to 5 fold (DTT), which is rather similar to those of ER chaperone protein Grp78. These results altogether indicate that the ER-stress upregulated the expression of Jpk and the excess stress induces the ER-stress induced apoptosis and the concomitant expression of Jpk.
During the fermentation process of Saccharomyces cerevisiae, yeast cells must rapidly respond to a wide variety of external stresses in order to survive the constantly changing environment, including ethanol stress. The accumulation of ethanol can severely inhibit cell growth activity and productivity. Thus, the response to changing ethanol concentrations is one of the most important stress reactions in S. cerevisiae and worthy of thorough investigation. Therefore, this study examined the relationship between ethanol tolerance in S. cerevisiae and a unique protein called alcohol sensitive RING/PHD finger 1 protein (Asr1p). A real-time PCR showed that upon exposure to 8% ethanol, the expression of Asr1 was continuously enhanced, reaching a peak 2 h after stimulation. This result was confirmed by monitoring the fluorescence levels using a strain with a green fluorescent protein tagged to the C-terminal of Asr1p. The fluorescent microscopy also revealed a change in the subcellular localization before and after stimulation. Furthermore, the disruption of the Asr1 gene resulted in hypersensitivity on the medium containing ethanol, when compared with the wild-type strain. Thus, when taken together, the present results suggest that Asr1 is involved in the response to ethanol stress in the yeast S. cerevisiae.
Hyo Seo Kang;Tae Hee Nam;Woo Ju Lee;Joon Sang Lee;Sangsu Shin
Korean Journal of Poultry Science
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v.50
no.4
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pp.261-266
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2023
The skeletal muscles of livestock play a crucial role as protein sources for humans, and the consumption of poultry meat is steadily increasing worldwide. Numerous genes, including myogenic regulatory factors, are involved in myogenesis, and precise regulation of them is essential. In this study, genes specifically expressed in muscles were selected, and their promoters were cloned and analyzed. The analysis of gene expression in various tissues of animals revealed that many genes exhibited specific expression patterns in skeletal muscles, with TNNT3, TNNC2, and MYF6 genes showing similar patterns in poultry. The promoter regions of three genes were amplified by polymerase chain reaction to sizes of 1.2 kb, 1.03 kb, and 1.43 kb, respectively. These fragments were then inserted at the front of the enhanced green fluorescent protein gene in vectors. It was confirmed that the sequences of three promoters closely matched the chicken genome sequences. Upon introducing vectors with each promoter into QM7 quail muscle cells, all three promoters successfully induced the expression of the green fluorescent protein. The brightness of the green fluorescence in each promoter was approximately seven times dimmer compared to the control, CMV-IE promoter. It is predicted that more than 230 transcription factors can bind to each promoter, especially various transcription factors expressed in muscles, including myogenic regulatory factors such as MYF5, MYOD, and MYOG. These promoters can be valuable for studying gene expression in poultry muscle cells, and further research is needed to precisely investigate the regulatory region of gene expression in promoters.
A high environmental temperature affects the economic performance of pigs. Heat shock protein 70 (HSP70) has been reported to participate importantly in thermotolerance. This study aims to produce transgenic pigs overexpressing porcine HSP70.2, the highly inducible one of HSP70 members, and to prove the cellular thermotolerance in the primary fibroblasts from the transgenics. A recombinant plasmid in which the sequence that encodes the porcine HSP70.2 gene is fused to green fluorescence protein (GFP) was constructed under the control of cytomegalovirus (CMV) enhancer and promoter. Two transgenic pigs were produced by microinjecting pCMV-HSP70-GFP DNA into the pronucleus of fertilized eggs. Immunoblot assay revealed the varied overexpression level (6.4% and 1.4%) of HSP70-GFP in transgenic pigs. After heating at $45^{\circ}C$ for 3 h, the survival rate (78.1%) of the primary fibroblast cells from the highly expressing transgenic pig exceeded that from the non-transgenic pig (62.9%). This result showed that primary fibroblasts overexpressing HSP70-GFP confer cell thermotolerance. We suggest that transgenic pigs overexpressing HSP70 might improve their thermotolerance in summer and therefore reduce the economic loss in animal production.
To investigate the function of chloroplast small heat shock protein (HSP), transgenic tobacco plants (Nicotiana tabacum L, cv. SR-1) that constitutively overexpress the rice chloroplast small HSP (Oshsp26) were generated. Effects of constitutive expression of the Oshsp26 on thermotolerance were investigated with the chlorophyll fluorescence. After 5-min incubation of leaf discs at high temperatures, an increase in the Fo level, indication of separation of LHCII from PSII, was mitigated by constitutive expression of the chloroplast small HSP When tobacco plantlets grown in Petri dishes were incubated at $20^{\circ}C$/TEX> for 45 min and subsequently incubated at $20^{\circ}C$/TEX> leaf color of wild-type plant became gradually white and all plantlets were finally died. Under the conditions in which all the wild-type plants died, more than 80% of the transformants remained green and survived. It was also found that the levels of Oshsp26 protein accumulated in transgenic plants were correlated with the degree of thermotolerance. These results suggest that the chloroplast small HSP plays an important role in protecting photosynthetic machinery, as a results, increases thermotolerance of whole plant during heat stress.
This study was to detect the expression of heart fatty acid-binding protein (H-FABP) and adipocyte fatty acid-binding protein (A-FABP) gene mRNA in different tissues of Rugao and Luyuan chickens at 56 d and 120 d by real-time fluorescence quantitative reverse transcription polymerase-chain reaction (FQ-RT-PCR). The primers were designed according to the sequences of HFABP, A-FABP and GAPDH genes in Gallus gallus, which were used as target genes and internal reference gene, respectively. The levels of H-FABP and A-FABP gene expression were detected by SYBR Green I FQ-RT-PCR. The relative H-FABP and A-FABP gene mRNA expression level was calculated with 2-$^{{\Delta}Ct}$. Melting curve analysis showed a single peak of three genes. Intramuscular fat (IMF) content in breast muscle and leg muscle of the two chicken breeds at 120 d was higher than at 56 d. IMF content in breast muscle and leg muscle at 56 d and 120 d in Luyuan was significantly higher than in Rugao, however, abdominal fat of Luyuan was significantly lower than that of Rugao. The relative H-FABP gene mRNA expression level in cardiac muscle was the highest in both chicken breeds. The relative H-FABP and A-FABP gene expression of different tissues in Luyuan was higher than in Rugao. H-FABP gene mRNA expression had a negative effect on IMF of leg and breast muscles, and was significantly negatively correlated with IMF content. The relative A-FABP gene mRNA level in abdominal fat was higher than in liver. The A-FABP gene mRNA was not expressed in leg, breast and cardiac muscles. A-FABP gene mRNA expression level was significantly positively correlated with abdominal fat and had a significant effect on abdominal fat but not IMF content.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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