Objectives : To assess the availability of the glycophorin A (GPA) assay to detect the biological effect of ionizing radiation in workers exposed to low-doses of radiation. Methods : Information on confounding factors, such as age and cigarette smoking was obtained on 144 nuclear power plant workers and 32 hospital workers, by a self-administered questionnaire. Information on physical exposure levels was obtained from the registries of radiation exposure monitoring and control at each facility. The GPA mutant assay was performed using the BR6 method with modification by using a FACScan flow cytometer. Results : As confounders, age and cigarette smoking habits showed increasing trends with GPA variants, but these were of no statistical significance. Hospital workers showed a higher frequency of the GPA variant than nuclear power plant workers in terms of the NO variant. Significant dose-response relationships were obtained from in simple and multiple linear regression models. The slope of the regression equation for nuclear power plant workers was much smaller than that of hospital workers. These findings suggest that there may be apparent dose-rate effects. Conclusion : In population exposed to chronic low-dose radiation, the GPA assay has a potential to be used as an effective biologic marker for assessing the bone marrow cumulative exposure dose.
Eighty-one workers including 38 employees directly incinerating industry wastes were recruited from a company located in South Korea. To evaluate the association between urinary 1-hydroxypyrene glucuronide (1-OHPG) levels, as internal dose of polycyclic aromatic hydrocarbon (PAH) exposure, and glycophorin A (GPA) mutation frequency, as an early biologic effect indicator. Urinary 1-OHPG levels were measured by synchronous fluorescence spectroscopy after immunoaffinity purification using monoclonal antibody 8E11. Erythrocyte GPA variant frequency (NN or NO) was assessed in MN heterozygotes with a flow cytometic assay. The GSTM1 and GSTT1 genotypes were assessed by a multiplex PCR method. The GPA NN phenotype frequency was higher in occupationally exposed group (n=14, mean$\pm$S.D. 6.6$\pm$12.0 in 10/SUP 6/ erythrocyte cells) than in non-exposed group (n=22, 2.1$\pm$3.5). Similarly, the GPA(NO or NN) phenotype frequency was higher in exposed group (n=14, 9.7$\pm$17.3) than non-exposed group (n=22, 4.2$\pm$6.3). The above differences failed to reach statistical significance, but a significant increase was seen in GPA variant frequency levels with increase in urinary 1-OHPG levels (Spearman's correlation: p=0.06 (NO), p=0.07 (NO or NN)). When this association was evaluated by GSTM1 genotype status, the association between GPA mutation and urinary 1-OHPG levels was stronger in individuals with GSTM1 present genotype (Spearmans correlation; r=0.50, p=0.02). These results suggest that the association between urinary 1-OHPG and GPA mutation is be modulated by the GSTM1 genotype.
Objective: This study aimed to validate the statistical evidence from the genome-wide association study (GWAS) as true-positive and to better understand the effects of the glycophorin C (GYPC) gene on serum hemoglobin traits. Methods: Our initial GWAS revealed the presence of two single nucleotide polymorphisms (SNPs) (ASGA0069038 and ALGA0084612) for the hemoglobin concentration trait (HGB) in the 2.48 Mb region of SSC15. From this target region, GYPC was selected as a promising gene that associated with serum HGB traits in pigs. SNPs within the GYPC gene were detected by sequencing. Thereafter, we performed association analysis of the variant with the serum hemoglobin level in three pig populations. Results: We identified one SNP (g.29625094 T>C) in exon 3 of the GYPC gene. Statistical analysis showed a significant association of the SNP with the serum hemoglobin level on day 20 (p<0.05). By quantitative real-time polymerase chain reaction, the GYPC gene was expressed in eight different tissues. Conclusion: These results might improve our understanding of GYPC function and provide evidence for its association with serum hemoglobin traits in the pig. These results also indicate that the GYPC gene might serve as a useful marker in pig breeding programs.
A library of unlimited number of novel lectins with diverse specificities has been previously generated by randomly mutating the carbohydrate-recognition domain of Maackia amurensis hemagglutinin (MAH). To establish the experimental environment capable of selecting high affinity mutant lectins in E. coli, phage display system was adapted. Carbohydrate binding capacity of two phagemid vectors, pComb3 and pComb8 displaying wild-type MAH lectin was assessed. Specific bindings of pComb3 and pComb8 phages expressing w.t. MAH to affinity-purified polyclonal anti-MAH antibody and to glycophorin was demonstrated. Both phages also showed strong hemagglutinating activity to intact but not sialidase-treated human erythrocytes, which is consistent to the specificity of native MAH. Taken together, two different phage display vectors successfully allowed the expression of active MAH as a fusion protein on the surface of bacteriophage, which will lead to preparation of unique plant lectins with high affinity toward a variety of carbohydrate chains.
Leukemia is a clonal disorder with blocked normal differentiation and cell death of hematopoietic progenitor cells. Traditional modalities with most used radiation and chemotherapy are nonspecific and toxic which cause adverse effects on normal cells. Differentiation inducing therapy forcing malignant cells to undergo terminal differentiation has been proven to be a promising strategy. However, there is still scarce of potent differentiation inducing agents. We show here that Angelica sinensis polysaccharide (ASP), a major active component in Dong quai (Chinese Angelica sinensis), has potential differentiation inducing activity in human chronic erythro-megakaryoblastic leukemia K562 cells. MTT assays and flow cytometric analysis demonstrated that ASP inhibited K562 cell proliferation and arrested the cell cycle at the G0/G1 phase. ASP also triggered K562 cells to undergo erythroid differentiaton as revealed by morphological changes, intensive benzidine staining and hemoglobin colorimetric reaction, as well as increased expression of glycophorin A (GPA) protein. ASP induced redistribution of STAT5 protein from the cytoplasm to the nucleus. Western blotting analysis further identified that ASP markedly sensitized K562 cells to exogenous erythropoietin (EPO) by activating EPO-induced JAK2/STAT5 tyrosine phosphorylation, thus augmenting the EPO-mediated JAK2/STAT5 signaling pathway. On the basis of these findings, we propose that ASP might be developed as a potential candidate for chronic myelogenous leukemia inducing differentiation treatment.
Kim, Seok-Ho;Yang, Hee-Young;Jeong, Dong-Kee;Lee, Sang-Ryeul;Ryoo, Zae-Young;Lee, Tae-Hoon
Reproductive and Developmental Biology
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제31권4호
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pp.241-248
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2007
Epigenetic modification dependent DNA methyltransferases (DNMTs) play an important role in tissue- and stage-specific gene regulation and normal mammalian development. In this study, we show that DNMTs are expressed at different levels during hematopoietic stem cell (HSC) differentiation to proerythrocytes. DNMT1, DNMT3A, and DNMT3B were highly expressed at day 7 after differentiation. We used specific siRNA as a tool to probe the relationship between the expression of DNMTs and erythropoietic differentiation. When introduced siRNA of DMNT1 and DMNT3b in human $CD34^+$ cells, these more differentiated into erythrocytes. This was confirmed by glycophorin A (GPA) positive cell analysis and globin gene expression. $GPA^+$ cells increased up to $20{\sim}30%$, and ${\gamma}$- and ${\epsilon}$-globin genes increased in siRNA transfected cells. Therefore, our data suggest that suppression of DNA methylation can affect positively differentiation of HSC and may contribute to expression of erythrocyte lineage genes including GPA and globins.
The proteins of the race horse erythrocyte membrane were analysed by polyacrylamide gel electrophoresis in sodium dodecyl sulfate(SDS-PAGE), and their relations to the fast erythrocyte sedimentation rate(ESR) of the race horse were investigated. The erythrocyte sedimentation rate of race horse were very fast compared with the human one(33 times <$90^{\circ}-plastic-ESR/30m$> and 25 times <$90^{\circ}-micro-ESR/30m$> as fast as the human one) are reported previously. Although the general protein profiles of the race horse erythrocyte membranes were almost similar to that of human, band 3 content was showing higher in race horse (34.7%) than in human (25.3%). The glycoprotein profiles of the race horse erythrocyte membranes revealed by periodic acid Schiff's(PAS) stain showed a marked difference from that of human. The PAS-1(glycophorin) and PAS-2(sialoglycoprotein) present in human erythrocyte memo brane were almost absent from the Holstein and race horse erythrocyte membranes, but PAS-2 was more in only race horse from that of human. Instead, the bovine erythrocyte membranes showed a strong PAS-B near the origin of the electrophorograms and the race horse erythrocyte membranes showed a strong PAS-negative band near the end of the electrophorograms, which is named as PAS-E in this study. These results suggest that the fast sedimentation rate of race horse erythrocyte is due in part to the presence of more band 3 protein fraction and PAS-E glycoproteins in the race horse erythrocytes.
The proteins of the ruminant erythrocyte membranes were analysed by polyacrylamide gel electrophoresis in sodium dodecyl sulfate, and their relations to the slow erythrocyte sedimentation rate(ESR) of the ruminants were investigated by treating the erythrocytes with proteinases such as trypsin, chymotrypsin and pronase, and glycosidases such as neuraminidase and galactosidase. Protein content in the erythrocyte membrane was $2.85{\pm}0.28$ in human, $3.60{\pm}0.41$ in Korean cattle, $3.71{\pm}0.36$ in Holstein, $4.13{\pm}0.83$ in Korean native goat and $3.94{\pm}0.56mg/ml$ in sheep, showing higher in ruminant animals than in human(p<0.01). Although the general protein profiles of the ruminant erythrocyte membranes were almost similar to that of human, all the ruminant erythrocyte membranes showed one additional protein band, called band-Q in the previous report on proteins of bovine erythrocyte membrane, which migrated electrophoretically to the mid position between band-2 and band-3 in human erythrocyte membranes. The glycoprotein profiles of ruminant erythrocyte membranes revealed by periodic acid Schiff(PAS) stain showed a marked difference from that of human. The PAS-1(glycophorin) and PAS-2(sialoglycogrotein) present in human erythrocyte membranes were almost absent from the ruminant animals. Instead, a strong PAS-positive band near the origin of the electrophorograms, which was named as PAS-B in the previous report on proteins of bovine erythrocyte membranes, was shown in the ruminant animals except sheep. In addition, the erythrocyte membranes of Korean native goat and sheep showed a moderate PAS-negative band near the tracking dye of the electrophorograms, which was named as PAS-G in this study. In the erythrocyte treated with the enzymes, the migration of each protein fracture of erythrocyte membranes in response to each enzyme was diverse according to different species or breed of ruminant animals. Among others, band-Q present in ruminants was slightly or moderately decreased by trypsin-, chymotrypsin-, and pronase- treatments of the erythrocytes, but not only in sheep. It was particularly noticeable that PAS-B, a fraction of glycoprotein, present in ruminants except sheep, was better digested by proteinases than by glycosidases, showing remarkable increase(p<0.01) of the ESR in accord with complete digestion(disappearance) of the PAS-B band by pronase, trypsin or chymotrypsin treatment of erythrocytes. In sheep, there was almost no any response to the various enzymes in general protein and glycoprotein profiles of the erythrocyte membranes except PAS-G, which was markedly decreased by pronase treatment of the erythrocytes. Nevertheless, the ESRs were accelerated in erythrocytes treated with pronase, trypsin, chymotrypsin and neuraminidase. Erythrocyte osmotic fragility was increased in erythrocytes treated with only pronase among five enzymes in all the human and ruminant animals used in this study.
The proteins of the bovine erythrocyte membrane were analyzed by polyacrylamide gel electrophoresis in sodium dodecyl sulfate, and their relations to the slow sedimentation rate of bovine erythrocytes were investigated by treating the erythrocytes with trypsin. The erythrocyte sedimentation rates of bovine erythrocytes from Holstein and Korean native cattle were very slow compared with the human one (1/7 as slow as the human one) as reported previously. However, when human and Holstein erythrocytes were treated with trypsin (0.2 and 0.5 mg/ml) for 1 hour at ${37^{\circ}C}$, their sedimentation rates were markedly accelerated while the sedimentation rate of Korean native cattle's erythrocytes were not affected. Although the general protein profiles of the bovine erythrocyte membranes were almost similar to that of human, bovine erythrocyte membranes showed one additional protein band, called band Q in this study, which migrated electrophoretically to the mid-position between band 2 and band 3 in human erythrocyte membranes. Treatment of Holstein and human erythrocytes with trypsin caused a decrease or disapperance of the band Q from the erythrocyte membrane. Although the band Q in Korean native cattle's erythroyte membrane was decreased by trypsin treatment of the erythrocytes, the magnitude of the decrement was not so pronounced as in the case of human and Holstein erythrocytes. The glycoprotein profiles of the bovine erythrocyte membranes revealed by periodic acid-Schiff stain showed a marked difference from that of human. The PAS-1 (glycophorin) and PAS-2 (sialoglycoprotein) present in human erythrocyte membrane were almost absent from the bovine erythrocyte membranes. Instead, the bovine erythrocyte membranes showed a strong PAS-positive band near the origin of the electrophorograms, which is named as PAS-B in this study. The PAS-B band was disappered completely by the trypsin treatment of Holstein erythrocytes whereas the PAS-B band in Korean native cattle's erythrocyte membrane still remained after the trypsin treatment. The trypsin treatment of Korean native cattle's erythrocytes, however, led to the appearance of small molecular weight peptides, indicating that the high molecular weight glycoproteins were degraded by trypsin as in human and Holstein ones. These results suggest that the slow sedimentation rate of bovine erythrocytes is due in part to the presence of band Q protein fraction and PAS-B glycoprotein in the bovine erythrocytes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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