Trypsin like protease (TLP) and metalloprotease (MTP) were induced in associated with the mycelium differentiation in Streptomyces albidoflavus SMF301. TLP and MTP were purified and characterized from the culture. The molecular mass of TLP and MTP were estimated to be 32 kDa and 18 kDa, respectively. The molecular mass of TLP and MTP were estimated to be 32 kDa and 18 kDa, respectively. The optimum pH and temperature of TLP were 10 and 40.$^{\circ}C$ Those of MTP were 8 and 55 $^{\circ}C$ TLP was stable at alkaline pH (6-9) and unstable above 45.$^{\circ}C$and MTP was stable at alkaline pH and unstable above 80.$^{\circ}C$ Km and Vmax values with benzoyl-arginyl p-nitroanilide of TLP were 139 $\mu$M, and 10 nmole of nitroanilide released per min per$\mu\textrm{g}$ protein, respectively. Km, and Vmax values with a synthetic substrate, leucine p-nitroanilide, or MTP were 58.9 $\mu$M, 3.47 nmol of nitroanilide released per min per$\mu\textrm{g}$protein, respectively. TLP was inhibited competitively by leupeptin; the inhibition constant was 0.0031 $\mu$M. MTP was inhibited by EDTA, phenonthroline and bestatin.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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1979.04a
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pp.113.2-114
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1979
$\beta-Galactosidase$ is an enzyme which catalizes hydrolysis of lactose, a natural substrate, to glucose and galctose and transferring some monosac-charide units to active acceptors as sugar or alcohol. The occurence of $\beta-Galactosidase$ is known in various microorganisms, animals and higher plants and has been studied by many investigatigators. Especially, a great deal of articles for the enzyme of E. coli have been presented in genetic control mechanism and induction-repression effects of proteins, On the other hand, in the dairly products industry, it is important to hydrolyes lactosd which is the principal sugar of milk and milk products. During the last few years, the interest in enzymatic hydrolysis of milk lactose has teen increased, because of the lactose intolerence in large groups of the population. Microbial $\beta-Galactosidases$ are considered potentially most suitable for processing milk to hydrolyse lactose and, in recent years, the immobilized enzyme from yeast has been examined. Howev, most of the microbial $\beta-Gal$ actosidase are intracellular enzymes, except a few fungal $\beta-Gala-$ ctosidases, and extracellular $\beta-Galactosidase$ which may be favorable to industrial applieation is not so well investigated. On this studies, a mold producing a potent extracellular $\beta-Galactosidase$ was isolated from soil and identified as an imperfect fungus, Beauveria bassians. In this strain, both extracellular and intracellular $\beta-Galactosidases$ were produced simultaneously and a great increase of the extracellular production was acheved by improving the cultural conditions. The extracellular enzyme was purified more than 1, 000 times by procedures including Phosphocellulose and Sephadex G-200 chromatographies. Several characteristics of the enzymewas clarified with this preparation. The enzyme has a main subunit of molecular weight of 80, 000 which makes an active aggregate. And at neutral pH range, it has optimum pH for activity and stability. The Km value was determined to be 0.45$\times$10$^{-3}$ M for $o-Nitrophenyl-\beta-Galactoside.$ In any event, it is interesting to sttudy the $\beta-Galactosidase$ of B. bassiana for the mechanism of secretion and conformational structure of enzyme.
A Bacillus strain which produces ${\beta}-galactosidase$ with high transgalactosylation activity, was isolated from soil and tentatively designated as Bacillus sp. A1. When ${\beta}-galactosidase$ from Bacillus sp. A1 reacted with 40% (w/w) lactose, transgalactosylation ratio reached up to 90% at the 70% conversion of the initial lactose. The biosynthesis of the enzyme in Bacillus sp. A1 required lactose as an inducer and was repressed by glucose. Observing that the addition of amino acids to culture medium resulted in enhancing, to a significant extent, both the growth and the enzyme production of the strain, yeast extract and commercially available hydrolysates of protein were examined for the suitability as amino acid source. As it turned out, SMP, an enzymatic hydrolysis product of soybean protein from Fuji Oil Co.(Japan), was the most suitable for optimization of the culture medium. When Bacillus sp. A1 was cultured in the presence of 0.5% SMP and 2% lactose, the enzyme activity increased up to $1.8\;U/m{\ell}-broth$.
A ploygalacturonase-produchg yeast was isolated from Cheju soil by selective eivichment media. One strain which has the highesl activity of polygalacturonase was selected. The characle~ishcs of the strain CS-2 were as follows: CS-2 utilized xylose. sucrose, maltose, u.ehalose, cellobiose. melibiose, lactose, raffinose, inosiiol, dulicilol, and dextrose, but did not utilized galactose, nitrate. nit~te, and lysine. Growth of CS-2 was inhibited by cyclohexamide, 1% acetic acid, and high concenaation (over 50%) of glucose. It grew at $30^{\circ}C$ but did 'IIOL $35^{\circ}C$. The cell size ofthe strain CS-2 was 2.9 p ~ n in length and 1.3 $\mu$ in diameter. Vegetable reproductmn was multiple budding and ascospre was present I to 4. Pseudomycelia or true myceliua formation were not observed In any of the cullureq. These results suggest that strain CS-2 is most likely a strain related Cryptococcus spp. (Cryptococcu spp. CS-2). When polygalacturonase or ihe yeast was induced by addition of polygalactoronic acid, polygalacturonase activity was detected in culture supernatent. There was a peak of specific activity a1 he mid-stationary phase(3 days culture) of growth. Polygalacturonase specific activity of Crylmcoccus sp. CS-2 was 2.96 unitsling. The molecular weighl ol'polygalacturonase was showed to be 46 KDa by both SDS-PAGE and activity stailling.
For screening thermostable $\alpha$-amylase from thermophiles, various samples from extreme environments such as hot spring and sewage near them, and compoat, wereexamined microbial growth in enrichment culture medium at 55$\circ$C on the assumption that enzymes from thermophiles are inevitable thermostable. One strain showing higher $\alpha$-amylase activity was pure cultured and designated as Bacillus sp. TR-25 from the results of morphological, cultural and physiological characteristics. The most important carbon sourses for the enzyme production were soluble starch, dextrin, potato starch and corn starch. Glucose and fructose had a catabolite repression on the enzyme production. The good nitrogen sources for the enzyme production were yeat extract, nutrient broth, tryptone, corn steep liquor and ammonium sulfate. The enzyme production was accelerated by addition of CaCl$_{2}$. $\cdot $ H$_{2}$O. The optimal medium composition for the enzyme production was soluble starch 2.0%, yeast extract 0.55, CaCl$_{2}$ $\cdot $ 2H$_{2}$O 0.015, Tween 80 0.001%, pH8.0, respectively. In jar fermenter culture, this strain shows a rapid growth and required cheaper carbon and nitrogen source. These properties are very useful to fermentation industry. The $\alpha$-amylase of this strain demonstrated a maximum activity at 80$\circ$C, pH 5.0, respectively. And calcium ion did not improve thermostability of the enzyme. At 10$0^{\circ}C$, this enzyme has 235 of relative activity. Transformation was carried out by thermophilic Bacillus sp. TR-25 genomic DNA. As a result, the transformant has increased thermostable $\alpha$-amylase activity.
In order to investigate the function of xylA promoter(Pxyl) as regulatory region Pxyl-lacZ fusion gene was constructed by the insertion of xylA promoter to the multiple cloning site of upstream of lacZ gene in a multicopy numbered plasmid pMC1403 containing promoterless lac operon, which was designated pMCX191, and Pxyl-lacZ fragment from pMCX191 was inserted to low copy numbered plasmid pLG339, designated pLGX191. The expressions of ${\beta}-galactosidase$ in these recombinant plasmids containing Pxyl-lacZ fusion gene were induced strongly by the addition of xylose, repressed by the addition of 0.2% glucose in the presence of xylose. The catabolite repressions were derepressed by the addition of 1 mM cAMP as same as native xylA gene. The fragment of xylA promoter was partially deleted from the upstream of xylA promoter by exonuclease III to investigate the regulation site of xylA promoter and the degrees of deletion derivatives of xylA promoter were analyzed by the DNA base sequencing. By the investigations of the induction by xylose, repression by glucose and derepression by cAMP on xylose isomerase production, the regulation site of xylA promoter may be located in segment between -165 and -59 bp upstream from the initiation site of xylA translation.
Gardenia fructus has been reported to have bioactivities of lowering blood glucose, antitumor, antithrombosis, repression of neogenesis of blood vessels, antioxidant and antibiosis. However, the nitrite scavenging activity and utilization in meat products have not been studied. The substitution effect for nitrite and antibiosis of Gardenia fructus extract (GFE) were investigated by measuring the residual nitrite contents and storage properties of pork patties prepared with nitrite (50, 100, and 150 ppm) and GFE (0, 0.25, 0.5%). The CIE $L^*$ and CIE $a^*$ of pork patties decreased, while CIE $b^*$ increased as the addition of GFE increased. Patties with more GFE added tended to be lower in pH when stored at $4^{\circ}C$ for 6 wk, but TBARS and VBN were not affected by the addition of GFE. Residual nitrite in patties was lowered as the storage period was lengthened and as the GFE addition was increased. During the storage at $4^{\circ}C$, Escherichia coli was not detected, and the total aerobic bacterial count was decreased as more GFE was added, showing the substitution effect of GFE for nitrite in antimicrobial activity. In conclusion, the results show that GFE has nitrite scavenging and antibiotic activities in meat products, suggesting its potential use in healthy and sustainable foods with diverse biofunctionalities.
Specific carotenoids and astaxanthin biosynthesis power of Phaffia rhodozyma mutant 876, which was obtained after NTG a and UV treatments, was higher than those of the wild type by 40% and 50%, respectively. The mutant strain did not show t the catabolite repression even at 22% (w/v) glucose concentration. The optimum C{N ratio was 2.0, and the optimum t temperature and initial pH were $22^{\circ}C$ and 6.0, respectively. 80th cell growth and astaxanthin formation decreased drastically a as the fermentation temperature was increased over $22^{\circ}C$, whereas they were comparable in the pH range between 5.0 and 7 7.0. Inoculum size did not affect the final cell density nor the carotenoids biosynthesis, and 3%(v/v) was selected as optimal. H Higher dissolved oxygen concentration facilitated astaxanthin biosynthesis, and aeration rate of 1.0 v/0/m and agitation speed of 400 rpm were selected as optimum. The final cell dens때 of 43.3 g/L and the volumetric astaxanthin and carotenoids concentrations of 110.6 mg/L and 149.4 mg/L, respectively, were obtained. The specific carotenoids concentration was 3.45 m mg{g-yeast(dry). Yx/s and Yp/s values of 0.37 and 1.08 were obtained. The result of this study will provide basic information u useful for mass production of astaxanthin from P. rhodozyma fermentation.
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