The native connective tissue attachment of the periodontium is known to be a complex consisting of gingival fibroblasts, periodontal ligament cells, gingival epithelial cells, cementum, alveolar bone and extensive extracellular matrix (collagen, glycoprotein and proteoglycans). The purpose of this study was to evaluate the effects of natural extracts on DNA, collagen and protein synthesis and inhibition of cytokine production in the gingival and periodontal ligament fibroblasts and gingival epithelial cells. Healthy gingival tissue was obtained from orthodontic treatment patients, and gingival epithelial cells, gingival fibroblasts and periodontal ligament cells were isolated and cultured from the samples. After treated with Ginseng protein, Pluronic F-68, Scutellariae Radix, centella asiatica, PDGF, IGF, DNA synthesis, total protein and collagen synthesis, and cytokine production of gingival epithelial cell, gingival fibroblast and periodontal ligamentcells were measured. MTT method for DNA synthesis, Peterkofsky and Dingerman method for total protein and collagen synthesis, and IL-1 ELISA kit for cytokine production were used. The proliferation of epithelial cells was enhanced in Centella asiatica, Ginseng protein, Pluronic F-68 and Scutellariae Radix. The activities of PDL cells were increased in PDGF, IGF, and Pluronic F-68. Higher collagen synthesis was observed in Scutellariae Radix and total protein synthesis was increased in Scutellariae Radix and PDGF. The inhibitory effects on IL-1, IL-6, $TNF-{\alpha}$ were observed in all exrracts.
The gingival epithelium of the oral cavity is constantly exposed to exogenous stimuli such as bacterial toxins, allergens, and thermal changes. These exogenous stimuli are resisted by innate host defense in gingival epithelial cells. However, it is unclear exactly how the exogenous stimuli affect detrimentally on the human gingival epithelial cells. Here, we investigated whether the allergen, such as house dust mite (HDM) extract, is linked to $Ca^{2+}$ signaling and proinflammatory cytokine expression in primary cultured human gingival epithelial cells. HDM extract induced an increase in intracellular $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) in a dose-dependent manner. Extracellular $Ca^{2+}$ depletion did not affected on the HDM extract-induced increase in $[Ca^{2+}]_i$. The HDM extract-induced increase in $[Ca^{2+}]_i$ was abolished by the treatment with U73122 and 2-APB, which are inhibitors of phospholipase C (PLC) and inositol 1,4,5-trisphosphate ($IP_3$) receptor. Moreover, HDM extract induced the mRNA expression of pro-inflammatory cytokine, interleukin (IL)-8. These results suggest that HDM extract triggers $PLC/IP_3$-dependent $Ca^{2+}$ signaling and IL-8 mRNA expression in primary cultured human gingival epithelial cells.
Innate immune response is initiated by the recognition of unique microbial molecular patterns through pattern recognition receptors (PRRs). The purpose of this study is to dissect the expression of various PRRs in gingival epithelial cells of differentiated versus undifferentiated states. Differentiation of immortalized human gingival epithelial HOK-16B cells was induced by culture in the presence of high $Ca^{2+}$ at increased cell density. The expression levels of various PRRs in HOK-16B cells were examined by realtime reverse transcription polymerase chain reaction (RTPCR) and flow cytometry. In addition, the expression of human beta defensins (HBDs) was examined by real time RT-PCR and the amounts of secreted cytokines were measured by enzyme linked immunosorbent assay. In undifferentiated HOK-16B cells, NACHT-LRR-PYDcontaining protein (NALP) 2 was expressed most abundantly, and toll like receptor (TLR) 2, TLR4, nucleotide-binding oligomerization domain (NOD) 1, and NOD2 were expressed in substantial levels. However, TLR3, TLR7, TLR8, TLR9, ICE protease-activating factor (IPAF), and NALP6 were hardly expressed. In differentiated cells, the levels of NOD2, NALP2, and TLR4 were different from those in undifferentiated cells at RNA but not at protein levels. Interestingly, differentiated cells expressed the increased levels of HBD-1 and -3 but secreted reduced amount of IL-8. In conclusion, the repertoire of PRRs expressed by gingival epithelial cells is limited, and undifferentiated and differentiated cells express similar levels of PRRs.
Purpose: Periodontal pathogens can invade the host tissue. Morphologic studies have revealed bacteria within the pocket epithelium, gingival connective tissues, alveolar bone, and oral epithelium. The objective of this study was to visualize and evaluate presence of Porphyromonas gingivalis and Tannerella forsythia in crevicular epithelial cells of periodontally healthy subjects and chronic periodontitis patients. Materials and Methods: A total of 666 crevicular epithelial cells in the samples obtained from 27 chronic periodontitis patients and 9 healthy volunteers were examined. Specific probes for P. gingivalis and T. forsythia and a universal probe for detection of all eubacteria targeting 168 rRNA for fluorescence in situ hybridization was used in conjunction with confocal laser scanning microscopy. Results: 98.99% of sulcular epithelial cells from healthy volunteers and 84.40% of pocket epithelial cells from periodontitis patients were found to harbor bacteria. P. gingivalis and T. forsythia were discovered more often in crevicular epithelial cells from periodontitis patients. Conclusion: P. gingivalis and T. forsythia can invade crevicular epithelial cells and intracellular bacteria may act as a source of bacteria for persistent infection.
Kim, Young-Sook;Ji, Suk;Jung, Hong-Moon;Woo, Kyung-Mi;Choi, Young-Nim
International Journal of Oral Biology
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v.32
no.3
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pp.103-107
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2007
We hypothesized that plaque-associated bacteria may have a role in maintenance of alveolar bone. To test it, immortalized gingival epithelial HOK-16B cells were co-cultured with live or lysed eight plaque bacterial species and the expression levels of bone morphogenetic protein (BMP)-2 and -4 were examined by real time reverse transcription-polymerase chain reaction. Un-stimulated HOK-16B cells expressed both BMP-2 and -4. Co-culture with plaque bacterial lysates had significant effects on the level of BMP-2 but not on that of BMP-4. Five species including Streptococcus sanguinis, S. gordonii, Veillonella atypica, Porphyromonas gingivalis, and Treponema denticola substantially up-regulated the level of BMP-2. In contrary to the upregulatory effect of lysate, live T. denticola suppressed the expression of BMP-2. In addition, in vitro osteoblastic differentiation assay using C2C12 cells and the conditioned medium of HOK-16B cells confirmed the production of BMPs by gingival epithelial cells and the modulation of BMP expression by the lysates of S. sanguinis and T. denticola. In conclusion, we have shown that plaque bacteria can regulate the expression of BMP-2 by gingival epithelial cells, the physiologic meaning of which needs further investigation.
Periodontitis is a chronic inflammation of periodontal tissue caused by subgingival plaque-associated bacteria. Periodontitis has long been understood to be the result of an excessive host response to plaque bacteria. In addition, periodontal pathogens have been regarded as the causative agents that induce a hyperinflammatory response from the host. In this brief review, host-microbe interaction of nonperiodontopathic versus periodontopathic bacteria with innate immune components encountered in the gingival sulcus will be described. In particular, we will describe the susceptibility of these microbes to antimicrobial peptides (AMPs) and phagocytosis by neutrophils, the induction of tissue-destructive mediators from neutrophils, the induction of AMPs and interleukin (IL)-8 from gingival epithelial cells, and the pattern recognition receptors that mediate the regulation of AMPs and IL-8 in gingival epithelial cells. This review indicates that true periodontal pathogens are poor activators/suppressors of a host immune response, and they evade host defense mechanisms.
Epithelial-mesenchymal interaction plays a important role in cell growth and differentiation. This interaction is already well known to have an importance during the organ development as well as cell growth and differentiation. However, in vitro experimental model is not well developed to reproduce in vivo cellular microenvironment which provide a epithelial-mesenchymal interaction. Because conventional monolayer culture lacks epithelial-mensenchymal interaction, cultivated cells have an morphologic, biochemical, and functional characteristics differ from in vivo tissue. Moreover, it's condition is not able to induce cellular differention due to submerged culture condition. Therefore, the aims of this study were to develop and evaualte the in vitro experimental model that maintains epithelial-mesenchymal interaction by organotypic raft culture, and to characterize biologic properties of three-dimensionally reconstituted oral keratinocytes by histological and immunohistochemical analysis. The results were as follow; 1. Gingival keratinocytes reconstituted by three-dimensional organotypic culture revealed similar morphologic characteristics to biopsied patient specimen showing stratification, hyperkeratinosis, matutation of epithelial architecture. 2. Connective tissue structure was matured, and there is no difference during stratification period of epithelial 3-dimensional culture. 3. The longer of air-exposure culture on three-dimensionally reconstituted cells, the more epithelial maturation, increased epithelial thickness and surface keratinization 4. In reconstitued mucosa, the whole epidermis was positively stained by anti-involucrin antibody, and there is no difference according to air-exposured culture period. 5. The Hsp was expressed in the epithelial layer of three-dimensionally cultured cells, especially basal layer of epidermis. The change of Hsp expression was not significant by culture stratification. 6. Connexin 43, marker of cell-cell communication was revealed mild immunodeposition in reconstitued epithelium, and there is no significant expression change during stratification. These results suggest that three-dimensional oragnotypic co-culture of normal gingival keratinocytes with dermal equivalent consisting type I collagen and gingival fibroblasts results in similar morphologic and immunohistochemical characteristics to in vivo patient specimens. And this culture system seems to provide adequate micro-environment for in vitro tissue reconstitution. Therefore, further study will be focused to study of in vitro gingivitis model, development of novel perioodntal disease therapeutics and epithelial-mensenchymal interaction.
The etiology of periodontal disease is multifactorial. Exogenous stimuli such as bacterial pathogens can interact with toll-like receptors to activate intracellular calcium signaling in gingival epithelium and other tissues. The triggering of calcium signaling induces the secretion of pro-inflammatory cytokines such as interleukin-8 as part of the inflammatory response; however, the exact mechanism of calcium signaling induced by bacterial toxins when gingival epithelial cells are exposed to pathogens is unclear. Here, we investigate calcium signaling induced by bacteria and expression of inflammatory cytokines in human gingival epithelial cells. We found that peptidoglycan, a constituent of grampositive bacteria and an agonist of toll-like receptor 2, increases intracellular calcium in a concentration-dependent manner. Peptidoglycan-induced calcium signaling was abolished by treatment with blockers of phospholipase C (U73122), inositol 1,4,5-trisphosphate receptors, indicating the release of calcium from intracellular calcium stores. Peptidoglycan-mediated interleukin-8 expression was blocked by U73122 and 1,2-bis(2-aminophenoxy)ethane-N,N,N',N'-tetraacetic acid tetrakis (acetoxymethyl ester). Moreover, interleukin-8 expression was induced by thapsigargin, a selective inhibitor of the sarco/endoplasmic reticulum calcium ATPase, when thapsigargin was treated alone or co-treated with peptidoglycan. These results suggest that the gram-positive bacterial toxin peptidoglycan induces calcium signaling via the phospholipase C/inositol 1,4,5-trisphosphate pathway, and that increased interleukin-8 expression is mediated by intracellular calcium levels in human gingival epithelial cells.
Since laser therapy has been applied to dentistry, many dental practitioners are very interested in laser therapy on various intraoral soft tissue lesions including gingival hyperplasia and aphthous ulcer. The purpose of the present study was to determine the therapeutic effect and the harmful effect of a pulsed-Nd:YAG laser irradiation on human gingival tissue. In twenty periodontal patients with gingival enlargement, the facial gingival surface of maxillary anterior teeth was randomly irradiated at various power of 1.0W(100mJ, 10Hz), 3.0W(100mJ, 30Hz) and 6.0W(l50mJ, 40Hz) for 60 seconds by contact delivery of a pulsed-Nd:YAG laser(EN.EL.EN060, Italy). Immediately after laser irradiation, the gingival tissues were surgically excised and prepared in size of 1mm3. Subsequently the specimens were processed for prefixation and postfixation, embedded with epon mixture, sectioned in $1{\mu}$ thickness, stained with uranyl acetate and lead citrate, and observed under transmission electron microscope(JEM 100 CXII). Following findings were observed; l. In the gingival specimens irradiated with l.OW power, widening of intercelluar space and minute vesicle formation along the widened intercellular space were noted at the epithelial cells adjacent to irradiated area. 2. In the gingival specimens irradiated with 3.0W power, the disruption of cellular membrane, aggregation of cytoplasm, and loss of intercellular space were observed at the epithelial cells adjacent to irradiated area. 3. In the gingival specimens irradiated with 6.0W power, the disruption of nuclear and cellular membrane was observed at the epithelial cells adjacent to irradiated area. The ultrastructural findings of this study suggest that surgical application of a pulsed-Nd:YAG laser on human gingival tissue may lead somewhat delayed wound healing due to damage of epithelial cells adjacent to irradiated area.
Purpose: We previously reported that human serum significantly reduces the invasion of various oral bacterial species into gingival epithelial cells in vitro. The aims of the present study were to characterize the serum component(s) responsible for the inhibition of bacterial invasion of epithelial cells and to examine their effect on periodontitis induced in mice. Methods: Immortalized human gingival epithelial (HOK-16B) cells were infected with various 5- (and 6-) carboxy-fluorescein diacetate succinimidyl ester-labeled oral bacteria, including Fusobacterium nucleatum, Provetella intermedia, Porphyromonas gingivalis, and Treponiema denticola, in the absence or presence of three major serum components (human serum albumin [HSA], pooled human IgG [phIgG] and ${\alpha}1$-antitrypsin). Bacterial adhesion and invasion were determined by flow cytometry. The levels of intracellular reactive oxygen species (ROS) and activation of small GTPases were examined. Experimental periodontitis was induced by oral inoculation of P. gingivalis and T. denticola in Balb/c mice. Results: HSA and phIgG, but not ${\alpha}1$-antitrypsin, efficiently inhibited the invasion of various oral bacterial species into HOK-16B cells. HSA but not phIgG decreased the adhesion of F. nucleatum onto host cells and the levels of intracellular ROS in HOK-16B cells. N-acetyl-cysteine (NAC), a ROS scavenger, decreased both the levels of intracellular ROS and invasion of F. nucleatum into HOK-16B cells, confirming the role of ROS in bacterial invasion. Infection with F. nucleatum activated Rac1, a regulator of actin cytoskeleton dynamics. Not only HSA and NAC but also phIgG decreased the F. nucleatum-induced activation of Rac1. Furthermore, both HSA plus phIgG and NAC significantly reduced the alveolar bone loss in the experimental periodontitis induced by P. gingivalis and T. denticola in mice. Conclusions: NAC and the serum components HSA and phIgG, which inhibit bacterial invasion of oral epithelial cells in vitro, can successfully prevent experimental periodontitis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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