Propentofylline (PPF, 3-methyl-1-(5-oxohexyl)-7-propylxanthine) has been reported to be a compound for treatment of both vascular dementia and dementia of the Alzheimer type. The short half-life (about 15 min) of PPF at the terminal elimination phase and poor bioavailability after oral administration of PPF to rabbits (Kim et al., 1992) suggest in part that this drug takes the extensive first-pass metabolism in the liver. In addition, the metabolic pathway for PPF remains unclear. The objective of this experiment is to identify urinary metabolites of PPF in rats. For the identification of the metabolites, rat urine was collected after oral administration of 100${m}g/kg$ PPF. PPF metabolite, 3-methyl-1-(5-hydroxyhexyl)-7-propylxanthine, was synthesized and confirmed by gas chromatography/mass spectroscopy (GC/MS) and $^1H$ nuclear magnetic resonance spectroscopy. The urinary metabolites of PPF were extracted with diethyl ether and identified by electron impact and chemical ionization GC/MS. One urinary metabolite was confirmed to be 3-methyl-1-(5-hydroxyhexyl)-7-propylxanthine by synthesized authentic compound. Several metabolites of monohydroxy- and dihydroxy-PPF were identified based on mass fragmentation of both intact and trimethylsilylated derivatives of PPF metabolites and the novel structure of these metabolites is suggested based on mass spectra.
This study was proceeded the analytical methods using various analytical instruments for polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) in food products. Various analytical methods were developed to determine levels of PAHs including benzo[a]pyrene, benzo[a]anthracene, benzo[b]fluoranthene, and chrysene formed in various food products using gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS), enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and raman spectroscopy. Recently, the rapid on-site response for the detection of hazardous substances in food aims to develop an onsite rapid detection of a simplified technical analysis method to reduce the time and cost required for analysis of PAHs. Current PAHs detection methods have been reviewed along with new raman spectroscopy analytical method.
Phenol is frequently present as the hazardous pollutant in petrochemical and pesticide industry wastewater. Because of its high toxicity and carcinogenic potential, a proper treatment is needed to reduce the hazards of phenol carrying effluent before being discharged into the environment. Phenol biodegradation with microbial consortium offers a very promising approach now a day's. This study focused on the formulation of phenol degrading bacterial consortium with three bacterial isolates. The bacterial strains Bacillus cereus strain VCRC B540, Bacillus cereus strain BRL02-43 and Oxalobacteraceae strain CC11D were isolated from detergent contaminated soil by soil enrichment technique and was identified by 16s rDNA sequence analysis. Individual cultures were degrade 100 μl phenol in 72 hrs. The formulated bacterial consortium was very effective in degrading 250 μl of phenol at a pH 7 with in 48 hrs. The study further focused on the analysis of the products of biodegradation with Fourier Transform Infrared Spectroscopy (FT/IR) and Gas Chromatography-Mass Spectroscopy (GC-MS). The analysis showed the complete degradation of phenol and the production of Benzene di-carboxylic acid mono (2-ethylhexyl) ester and Ethane 1,2- Diethoxy- as metabolic intermediates. Biodegradation with the aid of microorganisms is a potential approach in terms of cost-effectiveness and elimination of secondary pollutions. The present study established the efficiency of bacterial consortium to degrade phenol. Optimization of biodegradation conditions and construction of a bioreactor can be further exploited for large scale industrial applications.
Volatile components of Korean horseradish roots harvested at different dates were prepared by steam distillation. Samples were examined by gas chromatography (GC) and combined gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS). The major pungent constituent, allyl isothiocyanate was confirmed add tended to increase with delayed harvest time. Pungent principles also included allyl thiocyanate, 2-phenethyl, 2-butyl, 4- pentenyl, benzyl and 3-methylthiopropyl isothiocyanates. Infrared (IR) spectroscopy study showed that allyl isothiocyanate - thiocyanate interconversion did not occur under the condition of this study.
Plants are a traditional source of many chemicals used as biochemical, flavors, food, color, and pharmaceuticals in various countries, especially India. Most herbal medicines and their derivatives are often made from crude extracts containing a complex mixture of various phytochemical chemical components (secondary metabolites of the plants). This study aimed to identify bioactive compounds from the different parts of the plant from the ethanolic extract of Gymnema sylvestre, Senna auriculata, and Cissus quadrangularis (leaves, flower, stem) by gas chromatography-mass spectroscopy (GC-MS). The gas chromatography - mass spectrometry analysis revealed the presence of various compounds like 3,4-dimethylcyclohexanol, hexanoic acid, D-mannose, and N-decanoic acid. Hence, the Gymnema sylvestre, Senna auriculata, and Cissus quadrangularis may have chemopreventive, anti-cancer, anti-microbial activity, antioxidant, anti-diabetic activity, anti-inflammatory, and antifungal due to the presence of secondary metabolites in the ethanolic extract. These phytochemicals are supported for traditional use in a variety of diseases.
The whole volatile flavor concentrate obtained from Jindalrae flower was separated into hydrocarbon and oxygen-containing compound(OCC) fractions, and the OCC-fraction was further separated by column chromatography into nine sub-fractions, respectively. These fractions were analyzed by gas chromatography and combined gas chromatography/mass spectroscopy. One hundred and sixty-two components, including 61 hydrocarbons, 18 aldehydes, 18 esters, 41 alcohols, 3 ketones, 4 oxides, 8 acids, 6 phenols and 3 miscellaneous components, were identified.
Benzophenone (BZP) and 4-nitrotoluene (4-NT) listed as endocrine disrupting chemicals are suspected to contaminate ground water sites and soil. Analytical method for simultaneous determination of the two chemicals in soil and ground water was developed by gas chromatography-mass spectrometry. Water (100 ml) was extracted with hexane, and soil (10 g) was extracted with methanol and hexane. Recovery in water was >72% for BZP and 90-118% for 4-NT. Recovery for 4-NT and BZP in soil was 51-59% with coefficient variation of less than 19.5%. Calibration curves showed a good linearity with $r^2=0.997$. In water and soil collected at nation-wide sites, BZP was found at 5 sites among 43 water sites at the concentration of $14.87{\pm}3.83ng/100 ml$. No 4-NT was found. It is suggested that this method is appropriate to the simultaneous quantitation of 4-NT and BZP in ground water and soil samples.
Byakangelicin, 9-(2,3-dihydroxy-2-methylbutoxy)-4-methoxy-7H- furo[3,2-g][l]benzopyran-7-one (BKG), a component of Angelicae dahuricae Radix, is considered to be an inhibitor of aldose reductase for the treatment of diabetic cataract. An analytical method for the isolation of BKG developed by high-performance liquid chromatography has been reported. No literature on the metabolism of BKG, however, has been found. With the purpose of identifying new metabolites of BKG, BKG (100 mg/kg) was orally administered to Sprague-Dawley rats via a gavage. Using a metabolic cage, urine was collected for 24 h, and the urine samples were extracted by liquid-liquid extraction. For structural identification of new urinary metabolites of BKG, various instrumental analyses were conducted by gas-chromatography/mass spectrometry, high-performance liquid chromatography/diode array detector, liquid chromatography/mass spectroscopy with thermospray interface and $^1H$ nuclear magnetic resonance spectroscopy. Two metabolites produced from the Ο-demethylation or Ο-dealkylation of BKG were newly identified, and another new but unknown metabolite was assumed to be the hydroxylated form of BKG. These results indicate that the major metabolic products of BKG are formed by Ο-demethylation or Ο-dealkylation of BKG side chains.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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