CD1d expressing dendritic cells (DCs) are good glyco-lipid antigen presenting cells for NKT cells. However, resting B cells are very weak stimulators for NKT cells. Although ${\alpha}$-galactosylceramide (${\alpha}$-GalCer) loaded B cells can activate NKT cells, it is not well defined whether B cells interfere NKT cell stimulating activity of DCs. Unexpectedly, we found in this study that B cells can promote Th1-skewed NKT cell response, which means a increased level of IFN-${\gamma}$ by NKT cells, concomitant with a decreased level of IL-4, in the circumstance of co-culture of DCs and B Cells. Remarkably, the response promoted by B cells was dependent on CD1d expression of B cells.
Butyrate는 탄소사슬이 짧은 지방산 중 하나로 소화되지 않은 식이성 섬유의 혐기적 발효결과 포유동물의 위장관내에 millimolar 농도로 유지되며 대장의 상피세포에서 흡수되어 energy원으로 사용된다. 70%정도 confluent하게 자란 사람의 대장암세포주인 HT29 cell에 5mM sodium butyrate를 시간별로 처리하고 세포의 생존율, 암세포의 분화정도의 biomarker로 알려진 alkaline phosphatase 및 PLC-rl의 발현정도를 측정하였으며 sphingolipid의 생합성 및 ceramidase 활성도 측정하였다. Sodium butyrate 처리는 성장중인 HT29 cell의 부착을 저해하여 처리 1일째부터 세포수가 감소하였고 형질막 효소인 alkaline phosphatase의 발현을 증가시켰으며 PLC-${\gamma}$의 발현을 감소시켰다. 또한, 복합 sphingolipid들의 생합성을 측정한 결과, 세포성장의 저해와 함께 sphingomyelin은 2일째부터 감소하였으며, galactosyl ceramide는 1일째부터 급속히 감소하였다. 그러나 ceramide의 경우, 1일째는 처리하기 전보다 680dpm/mg protein정도 증가하였으며 2일째에는 다시 급속히 감소하였다. 또한 butyrate처리에 의하여 HT29 cell의 acid ceramidase와 neutral ceramidase활성이 저해됨을 관찰하였는데 그 결과 ceramide함량이 초기에 증가된 것으로 생각된다. 본 실험결과들로부터 HT29 cell의 sodium butyrate처리는 세포분화 또는 세포성장저해를 가져오는데 이와 함께 초기의 ceramide함량 및 alkaline phosphatase활성의 증가와 galactosylceramide함량 및 LC-rl 발현의 감소현상이 동반됨을 알 수 있다.
Kim, Min Ki;Lee, Ara;Hwang, Yu Kyeong;Kang, Chang-Yuil;Ha, Sang-Jun
IMMUNE NETWORK
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제14권4호
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pp.207-218
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2014
Chronic virus infection leads to the functional impairment of dendritic cells (DCs) as well as T cells, limiting the clinical usefulness of DC-based therapeutic vaccine against chronic virus infection. Meanwhile, B cells have been known to maintain the ability to differentiate plasma cells producing antibodies even during chronic virus infection. Previously, ${\alpha}$-galactosylceramide (${\alpha}GC$) and cognate peptide-loaded B cells were comparable to DCs in priming peptide-specific $CD8^+$ T cells as antigen presenting cells (APCs). Here, we investigated whether B cells activated by ${\alpha}GC$ can improve virus-specific T cell immune responses instead of DCs during chronic virus infection. We found that comparable to B cells isolated from naïve mice, chronic B cells isolated from chronically infected mice with lymphocytic choriomeningitis virus (LCMV) clone 13 (CL13) after ${\alpha}GC$-loading could activate CD1d-restricted invariant natural killer T (iNKT) cells to produce effector cytokines and upregulate co-stimulatory molecules in both naïve and chronically infected mice. Similar to naïve B cells, chronic B cells efficiently primed LCMV glycoprotein (GP) 33-41-specific P14 $CD8^+$ T cells in vivo, thereby allowing the proliferation of functional $CD8^+$ T cells. Importantly, when ${\alpha}GC$ and cognate epitope-loaded chronic B cells were transferred into chronically infected mice, the mice showed a significant increase in the population of epitope-specific $CD8^+$ T cells and the accelerated control of viremia. Therefore, our studies demonstrate that reciprocal activation between ${\alpha}GC$-loaded chronic B cells and iNKT cells can strengthen virus-specific T cell immune responses, providing an effective regimen of autologous B cell-based therapeutic vaccine to treat chronic virus infection.
Glycosphingolipids are structural components of mammalian cell membranes and are involved in essential cellular physiology such as cell-cell interaction, recognition, transmembrane signaling, proliferation and cell death. In this study, the simple quantitative method of monoglycoceramides-containing glucosylceramide and galactosylceramide was developed. The glycosylceramides extracted from culture cells and rat plasma were resolved by TLC, deacylated by SCDase and analyzed by HPLC-fluorescence detector at an excitation wavelength of 340 nm and an emission wavelength of 455 nm. Limit of detection was approximately 0.1 pmol and limit of quantification was about 1 pmol for both monoglycoceramide standards. The recoveries of standard glucosylceramides from intra- and inter-day assays were 113.8 and 88.8% and those of galactosylceramides were 110.7 and 123.9%, respectively. The monoglycoceramide contents of SW-620 cells and rat plasma were $141.5{\pm}5$ pmol/$1{\times}10^6$ cells and $3.9{\pm}0.3{\mu}M$, respectively. The present analytical method provides a reproducible quantification and total content of monoglycoceramide which may be as a potential biomarker for lipid imbalance-related human diseases.
목 적 : ${\alpha}$-Galactosylceramide (GalCer)로 자극한 자연살상 T 세포(NKT)는 CD1d 및 T 세포 수용체(T cell receptor) 의존적으로 일부 백혈병에서 항암효과를 발현하나, CD1d음성인 신경모세포종에서는 세포독성을 유도할 수 없다. 이들 NKT세포의 활성화 시 분비되는 많은 양의 사이토카인의 직접적인 항암효과에 대해서는 소수의 보고가 있다. 본 연구에서는 hCD1d/${\alpha}$-GalCer tetramer로 NKT세포를 자극하여 얻은 상청액(supernatant)을 이용하여 NKT세포에 의한 신경모세포종의 치료적 접근의 가능성을 알아보았다. 방 법 : 신경모세포종 세포 주를 IMDM 배지에 배양하였고, NKT세포에서 분비되는 사이토카인 양은 cytometric bead array (CBA)분석으로 측정하였다. 세포 생존율은 calcein-AM 형광물질을 이용하여 digital image microscopy scanning (DIMSCAN)으로 측정하였고 특이 세포고사(specific apoptosis)는 annexin V and 7-AAD 염색 후 유식세포분석기를 통하여 산출하였다. 결 과 : 활성화된 NKT세포는 많은 양의 IL-2, IL-4, INF-${\gamma}$와 TNF-${\alpha}$을 분비하였다. NKT 자극 후 얻어진 상청액은 8개의 신경모세포종 세포 주 중 4개에서 의미있는 세포독성을 나타냈으며, 그 기전은 annexin-V 염색이나 pancaspase 억제제의 전 처치 실험으로 세포고사을 통하여 유도됨을 알 수 있었다. 그리고 이들 세포고사 유도는 anti-TNF-${\alpha}$, anti-IFN-${\gamma}$ 중화항체의 단독투여 시 현저히 감소하였고 동시투여 시에는 완전하게 억제되었다. 결 론 : NKT 세포의 활성화에 의해 분비된 IFN-${\gamma}$와 TNF${\alpha}$가 일부 신경모세포종 세포 주에서 협동적 세포 독성을 유도하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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