본 연구는 기존의 수정란 이식기술을 다각적으로 분석하고 개선하여 한우 체내수정란의 생산 및 이식기술 체계를 확립하기 위하여 수행하였다 수정란의 생산 및 이식은 농협중앙회 가축개량사업소 한우개량부에서 사육하고 있는 공란우 232두와 수란우 434두를 이용하여 실시하였다. 본 연구에서 얻어진 결과를 요약하면 다음과 같다. 1. 수란우의 황체 위치와 등급에 따라 수정란이식을 실시한 결과는 오른쪽 난소의 A등급 황체, 왼쪽 난소의 B등급 황체가 존재할 경우가 유의적(P<0.1)으로 높은 수태율을 나타냈다. 2. 동결수정란을 이식했을 때의 수태율을 35.0% 로서 신선수정란의 수태율 56.2%에 비하여 유의(P<0.01)하게 낮았다. 3. 수란우의 발정일차(6.0∼9.0일)에 따라 수정란을 이식한 격과는 신선수정란에서 45.4∼65.7%, 동결수정란에서 22.0∼50.0%의 임신율을 나타내서 처리간에 유의성이 인정되지 않았다. 4. 수란우의 황체등급과 수정란의 동결 여부에 따른 임신율을 신선 및 동결수정란 모두에서 A등급의 황체일 경우가 40.8∼67.9%로 B 및 C등급 황체의 25.0∼56.0%보다 양호할 성적을 나타냈다. 5. 수정란의 발육단계 및 등급에 따라서 이식한 결과는 상실배의 이식이 수정란의 등급에 관계없이 평균 46.3%의 임신율을 나타내 어서 배반포배 이식의 34.1%보다 높게 나타났다.
This study was carried out to test the effects of fluorescein diacetate(FDA 0${mu}ell$/ml, 0.5${mu}ell$/ml, 5${mu}ell$/ml, 10${mu}ell$/ml or 0${mu}ell$/ml, 5${mu}ell$/ml in PBS) treated before culture on the survival of vitrified mouse morulae in vitrification solution(20% glycerol+glycerol+10% ethylene glycol+30% ficoll+10% sucrose). The results were summarized as follows; 1. The survival rate of FDA-tested fresh mouse morulae after 24 hours culture was over 96%((P4.8) in the control or treatment groups with various levels of FDA. Because the rate of mouse morulae which developed to hatched blastocysts was higher with the various levels of FDA treatment(67%) than control(50%), it was considered that toxicity of FDA did not affect the survival of mouse morulae. 2. When mouse morulae were FDA-tested in FDA 0(control), 0.5, 5, and 10${mu}ell$/ml treatment after vitrification, the development rate to expanded blastocyst were 66, 82, 64 and 76%, and FDA scores were P4.2(84%), P4.7(94%), P4.2(84%) and P3.9(78%), respectively. There were no significant differences between control and FDA treatments, but there were significant difference between 0.5${mu}ell$/ml)94%) and 10${mu}ell$/ml(78%) treatment(P<0.01). 3. The survival rates of cultured mouse morulae according to FDA-scores(P0=non-fluorescence; P1~P5=according to their fluorescence) after vitrification were P5;92%, P4;67%, P3;42% and P2.P0;0%, respectively. 4. Implantation rates of morulae stage embryos cultured into early blastocysts and implanted into uterine hornes vitrification were 14 and 11% embryos treated control(0${mu}ell$/ml) and FDA 5${mu}ell$/ml and the normal fetus development was 2% embryos for both treatments. Results of this percent study indicated that toxicity of FDA does not affect not only the survival of fresh and vitrified mouse morulae but also the development rate and implantation of fetus after transfer as well. The development rates of mouse morulae with the FDA score of P5, P4 and P3 were 92, 67 and 42%, respectively, it was considered that FDA-test was fit for the judge of survival.
This study was performed to determine the developmental potentials of nuclear transfer (NT) embryos using life-span extended cells transfected with a foreign gene as donor cells. A life-span extended bovine embryonic fibroblast cell line was transfected with an expression vector in which the human type II collagen (BOMAR) and ear fibroblasts were used as a donor cell. Cytogenetic analysis was performed to analyze the chromosomal abnormality of donor cells. The fusion rate of 1.8 kV/cm for $15{\mu}sec$ given twice was significantly higher than that of other groups (p<0.05) and the embryos lysed were significantly higher after 1.8 kV/cm for $20{\mu}sec$ given once compared to other groups (p<0.01). The blastocyst development in the ear cell group was statistically significant compared to both BOMAR groups (p<0.01). Both BOMAR groups cultured more than 40 passages (>40 passages) had a lower number of chromosomes; however, fresh granulosa cell (GC) and BOMAR groups cultured less than 20 passages had normal chromosome numbers. Both >40 passages BOMAR groups had numerous obscure debris in metaphase spreads. The transfected foreign gene was expressed in all BOMAR groups, but not in the GC group. Based on these results, the lower developmental potential of NT embryos using life-span extended donor cells transfected with a foreign gene might be a cause of chromosomal abnormality in donor cells.
인간의 불임을 극복하기 위한 번식공학 기술의 효율성을 증가시키기 위해 성세포의 동결이 널리 수행되고 있으나 동결 기술의 효율성에 있어서 논란의 여지가 있다. 본 연구에서는 체외수정란을 생산하기 위한 난자세포질내 정자미세주입(ICSI) 시술에 사용되는 정자와 이들 기술을 이용 생산한 체외수정란의 동결이 배 발생 및 임신에 미치는 효과를 조사하였다. ICSI방법으로 체외수정란을 생산하는 경우 정자의 동결이 체외수정, 발생 및 임신에 영향을 미치지 않았으며, 특히 동결융해한 사출 및 정소정자에 의한 체외수정율과 발생율 및 임신율도 차이가 없었다. 한편 체외수정란을 동결하는 경우 완만동결과 초자화동결에 의한 체외수정란의 생존율과 임신율은 차이가 없었으나, 동결수정란은 신선수정란에 비하여 임신율이 유의하게 낮았다(p<0.05). 결론적으로 ICSI에 사용되는 정자와 달리 ICSI에 의해 생산된 수정란을 동결하는 경우 임신율을 저하시킬 수 있다.
Cryopreservation by vitrification of Hanwoo blastocysts derived from nuclear transfer with Hanwoo adult ear cell was compared with that of in vitro fertilized blastocysts. For vitrification, day 7 or day 8 blastocysts were serially exposed in glycerol (G) or/and ethylene glycol (EG) mixtures (10% G for 5 min, 10% G plus 20% EG for 5 min, and 25% G plus 25% EG for 30 sec) which was diluted in 10% FBS added D-PBS. Thawing of straw was carried out in air for 10 sec and then in water bath of $25^{\circ}C$ for 20 sec. The contents of the straw (0.2 ml) was expelled into a culture dish contained with 0.5M sucrose and 10% FBS(S-DPBS) by cutting the cotton plug and then the recovered embryos were put into fresh 0.25M and 0.125M S-DPBS for 30 sec, respectively, The embryos were transferred into D-PBS with 10% FBS for 5 min. and were cultured in a 10u1 droplet of co-culture environment (cumulus cell monolayer + 10% added CRl medium) for 24 h. In the result, survival rates were 88.9% and 85.4% for nuclear transfer embryos and in vitro fertilized embryos, respectively. After transfer of vitrified-thawed blastocysts produced from nuclear transfer, 4 of 5 total recipients did not return to the subsequent estrus cycle at 30 days. It is concluded that the Hanwoo blastocysts derived from nuclear transfer can be successfully cryopreserved using simple and efficient vitrification method.
An efficient plant regeneration system was developed for Hordeum vulgare L. cv Baegdong - an important Korean cultivar. The protocol was based on a series of experiments involving the sizes of mature embryos and the culture media. The embryo size is found to be critical for the establishment of embryogenic callus. Embryos of 1.1-1.5 mm size showed a much higher ability to produce embryogenic callus capable of regenerating green plants. The auxins picloram and dicamba proved effective in inducing callus from mature embryos. 2.5 mg $I^{-1}$ dicamba and 4.0 mg $I^{-1}$ picloram in Murashige and Skoog's (MS) medium was optimum for the induction of primary callus. The induced primary callus was loose and friable which ultimately developed into creamy white and compact callus after transferring into the fresh medium. Multiple shoots were induced in the MS medium supplemented with 6.0 g $I^{-1}$ maltose, 20 mg $I^{-1}$ sorbitol, 0.5 mg $I^{-1}$ 2,4-D and 1.0 mg $I^{-1}$ kinetin and the rate was 6.5 shoots per embryo. Regenerated plants were hardy and developed roots rapidly in the medium containing 0.2 $I^{-1}$ IBA. This efficient plant regeneration system provides a foundation for generating transgenic plants of this important barley cultivar.
Han, Ae Ra;Park, Chan Woo;Lee, Hyoung-Song;Yang, Kwang Moon;Song, In Ok;Koong, Mi Kyoung
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제39권3호
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pp.114-117
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2012
Objective: It is well known that fresh blastocyst transfer results in better pregnancy outcomes with a smaller number of transferred embryos compared with cleavage stage embryo transfer. However, in terms of frozen-thawed blastocyst transfer, only a few studies are available. We aimed to evaluate clinical outcomes of frozen-thawed embryo transfer (FET) with blastocysts. Methods: Retrospective analysis of FET cycles with blastocysts (B-FET) between Jan 2007 and June 2009 was performed. Age-matched FET cycles with cleavage stage embryos (C-FET) during the same period were collected as controls. A total of 58 B-FET cycles were compared with 172 C-FET cycles and also compared with those of post-thaw extended culture blastocysts from frozen pronuclear stage embryos (22 cycles). Results: There was no difference in the patient characteristics of each group. The embryos' survival rates after thawing were comparable (>90%) and there was no difference in the implantation rate or clinical and ongoing pregnancy rate among the three groups. Conclusion: In FET, blastocyst transfers may not present better pregnancy outcomes than cleavage stage embryo transfers. A further large-scale prospective study is needed.
Dong, Y.J.;Bai, X.J.;Varisanga, M.D.;Mtango, N.R.;Otoi, T.;Rajamahendran, R.;Suzuki, T.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제17권2호
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pp.168-173
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2004
The ability of frozen-thawed fetal skin was examined to generate viable cell lines for nuclear transfer. Fetal skin frozen at -20$-20^{\circ}C$, $-30^{\circ}C$ or $-80^{\circ}C$ in the presence of 5% DMSO used as tissue explants to generate somatic cells. The resultant confluent cells were then used as donors for nuclear transfer (NT). Of the bovine NT embryos reconstracted from the somatic cells, 62.3%, 76.6% to 65% showed cleavage 70.5%, 81.9% to 78.5% reached the stage of morula formation and 39.7%, 43.2% or 47.6% reached the blastocyst stage. There was no significant difference in development when the NT embryos were compared with those reconstracted from fresh somatic cell derieved skin tissues (72%, 75.3%, and 45.2%, for cleavage, and development to morula and blastocyst stage, respectively). NT embryos were then placed in a portable $CO_2$ incubator and carried to China from Japan by air. After reaching to farm, two NT embryos were transferred to each of 5 recipients. We obtained 2 NT calves which birth weights is 30kg and 36kg female, and gestation periods is 281 and 284 days, respectively. There were no observation any abnormality from those calves. The results indicated that cell lines derieved from bovine fetal skin cryopreserved by a simple method could be used as donors in nuclear transfer using the portable $CO_2$ incubator.
The objective of this study was to produce calves by transfer of embryos derived from slaughter house(SHD) and ultrasound-guided ovum pick-up (OPU). At 60 hrs after injection of 400 mg FSH dissolved in 25% polyvinylpyrrolidone(PVP) by single dose, ultrasound-guided follicular oocyte aspiration was ferformed. Day-7 and day-8 blastocysts produced by in vitro maturation (IVM), fertilization (IVF) and culture(IVC) of the oocytes derived from SHD and OPU were nonsurgically transferred into recipients. The results obtained were as follows. The cleavage rate and the development rate to blastocysts were not significantly (P<0.05) different between the oocytes obtained by SHD (72.9% vs. 34.1%) and OPU (75.9% vs. 38.4%). The oocyte recovery rate from the number of follicles by ultrasound-guided aspiration were not significantly (P<0.05) different between Holstein (61.7%) and Hanwoo (60.1%), but the rate of oocytes useful for IVF was significantly (P<0.05) higher in Hanwoo (69.3%) than Holstein (59.6%). The cleavage rate and the development rate to blastocysts was not significantly (P<0.05) different between Holstein (74.9% vs. 39.2%) and recipients on day 8 of estrus cycle resulted in 13 pregnancies (34.2%). One of them was sacrificed during gestation period due to mastitis and another was aborted spontaneous. The resulting 14 calves were morphologically normal at birth. Seventy eight fresh OPU-IVF embryos were transferred into 21 recipients on day 8 of estrus cycles, resulting in pregnancy of 12 recipients (41.4%). Two of them were sacrificed during gestation period due to mastitis and the other two were aborted. Nevertheless, the 11 OPU-calves have been born normally.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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