Characteristics of the food isolates and the clinical specimens isolates of E. coli harboring virulence factor and their correlations were analyzed. The predominant serogroup were 08 and 027 in the food isolates and 06 and 018 in the clinical isolates, respectively, showing the different patterns in serogrouping between them. In the test of antibiotic susceptibility, the food isolates were resistant to cephalothin, streptomycin, tetracycline and minocycline, and the clinical isolates were resistant to ampicillin, carbenicillin, streptomycin, cephalothin, trimethoprim/sulfamethoxazole, tetracyclino and minocycline, respectively. It shows that E.coli isolated from food sources and clinical specimens might be correlated. Plasmid profile in the food and clinical isolates showed wide diversity. Especially, large sized plasmid DNA such as 60 MDa, 90 MDa and 120 MDa were observed. The plasmid DNA (60 MDa) containing a gene encoding hemolysin was found in 43% of the food isolates and 35% of the clinical isolates. To study chromosomal homology, PFGE analysis was performed, showing different restriction patterns by Xbal. This result indicates that there were no genetic correlations between the foods and the clinical isolates.
Eighty-five Enterococcus faecalis isolates collected from animals (40 isolates), meju (a Korean fermented soybean product; 27 isolates), humans (10 isolates), and various environmental samples (8 isolates) were subjected to multilocus sequence typing (MLST) to identify genetic differences between samples of different origins. MLST analysis resulted in 44 sequence types (STs), and the eBURST algorithm clustered the STs into 21 clonal complexes (CCs) and 17 singletons. The predominant STs, ST695 (21.1%, 18/85) and ST694 (9.4%, 8/85), were singletons, and only contained isolates originating from meju. None of the STs in the current study belonged to CC2 or CC9, which comprise clinical isolates with high levels of antibiotic resistance. The E. faecalis isolates showed the highest rates of resistance to tetracycline (32.9%), followed by erythromycin (9.4%) and vancomycin (2.4%). All isolates from meju were sensitive to these three antibiotics. Hence, MLST uncovered genetic diversity within E. faecalis, and clustering of the STs using eBURST revealed a correlation between the genotypes and origins of the isolates.
This study investigated the prevalence of Listeria monocytogenes in slaughterhouses, and determined serovars and genotypes, and antibiotic resistance of the isolates obtained from slaughterhouses and humans in Korea. Two hundred ninety samples were collected from feces (n=136), carcasses [n=140 (cattle: n=61, swine: n=79)], and washing water (n=14) in nine slaughterhouses. Eleven human isolates were obtained from hospitals and the Korea Center for Disease Control and Prevention. Listeria monocytogenes was enriched and identified, using polymerase chain reaction (PCR) and 16S rRNA sequencing. Serovars and presence of virulence genes were determined, and genetic correlations among the isolates were evaluated by the restriction digest patterns of AscI. Antibiotic resistance of L. monocytogenes isolates were examined against 12 different antibiotics. Of 290 slaughterhouse samples, 15 (5.17%) carcass samples were L. monocytogenes positive. Most L. monocytogenes isolates possessed all the virulence genes, while polymorphisms in the actA gene were found between carcass and human isolates. Serovars 1/2a (33.3%) and 1/2b (46.7%) were the most frequent in carcass isolates. Genetic correlations among the isolates from carcass and clinical isolates were grouped within serotypes, but there were low geographical correlations. Most L. monocytogenes isolates were antibiotic resistant, and some strains showed resistance to more than four antibiotics. These results indicate that L. monocytogenes are isolated from carcass and human in Korea, and they showed high risk serotypes and antibiotic resistance. Therefore, intensive attentions are necessary to be aware for the risk of L. monocytogenes in Korea.
The objective of this study was to investigate the pathogenicity and antimicrobial resistance of foodborne pathogens isolated from farmstead cheeses. Twenty-seven isolates, including 18 Bacillus cereus, two Escherichia coli, and seven Staphylococcus aureus, were subjected to polymerase chain reaction (PCR) to detect virulence genes and toxin genes, and the antibiotic resistances of the isolates were determined. All E. coli isolates were determined by PCR to be non-pathogenic. Among the 18 B. cereus isolates, 17 isolates (94.4%) were diarrheal type, as indicated by the presence of nheA, entFM, hbIC, cytK and bceT genes, and one isolate (5.6%) was emetic type, based on the presence of the CER gene. Among the seven S. aureus isolates, three (42.9%) had the mecA gene, which is related to methicillin-resistance. Most B. cereus isolates (94.7%) showed antibiotic resistance to oxacillin and penicillin G, and some strains also showed resistance to ampicillin (26.3%), erythromycin (5.3%), tetracycline (10.5%), and vancomycin (5.3%). These results indicate that microbial food safety measures for farmstead cheese must be implemented in Korea because antibiotic resistant foodborne pathogens, with resistance even to vancomycin, harboring virulence genes were found to be present in the final products of farmstead cheese.
집단식중독 환자에서 분리한 Staphylococcus aureus에 대한 항생제 감수성, enterotoxin 형별을 PCR로 조사한 결과는 다음과 같았다. 1. 의심환자분변 413건중 105건(25.4%)에서 Staphylococcus aureus coagulase 양성 균주가 분리되었다. 2. enterotoxin 생산성을 PCR로 조사한 결과 총 45주(42.9%)에서 enterotoxin gene이 확인되었으며, 이 중 H형 단독생산주가 29주(64.4%)로 가장 많았으며. A형 단독생산주 5주(11.1%), A형 및 H형 혼합생산주 4주(8.9%), G형 생산주 2주(4.4%)및 I형 생산주 1주(2.2%)이었다. 3. 시험한 105주 중 48주(45.7%)에서 항생제 내성이 확인되었으며, 이 중 penicillin에 대한 내성이 38.1%로 가장 높았으며, ampicillin과 penicillin은 중등도 내성이 각각 42.9%, 61.0%이었다. chloramphenicol, clindamycin, methicillin. trimethoprim, vancomycin은 모두 감수성이었다. 또한 단제 내성이 85.4%를 차지하였으며, 2제 내성이 12.5%, 3제내성이 2.1%이었다.
El_Komy, Mahmoud H.;Saleh, Amgad A.;Eranthodi, Anas;Molan, Younes Y.
The Plant Pathology Journal
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제31권1호
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pp.50-60
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2015
The use of novel isolates of Trichoderma with efficient antagonistic capacity against Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici (FOL) is a promising alternative strategy to pesticides for tomato wilt management. We evaluated the antagonistic activity of 30 isolates of T. asperellum against 4 different isolates of FOL. The production of extracellular cell wall degrading enzymes of the antagonistic isolates was also measured. The random amplified polymorphic DNA (RAPD) method was applied to assess the genetic variability among the T. asperellum isolates. All of the T. asperellum isolates significantly reduced the mycelial growth of FOL isolates but the amount of growth reduction varied significantly as well. There was a correlation between the antagonistic capacity of T. asperellum isolates towards FOL and their lytic enzyme production. Isolates showing high levels of chitinase and ${\beta}$-1,3-glucanase activities strongly inhibited the growth of FOL isolates. RAPD analysis showed a high level of genetic variation among T. asperellum isolates. The UPGMA dendrogram revealed that T. asperellum isolates could not be grouped by their antagonistic behavior or lytic enzymes production. Six isolates of T. asperellum were highly antagonistic towards FOL and potentially could be used in commercial agriculture to control tomato wilt. Our results are consistent with the conclusion that understanding the genetic variation within Trichoderma isolates and their biochemical capabilities are required for the selection of effective indigenous fungal strains for the use as biocontrol agents.
Youngho Koh;Yunyoung Bae;Min-Jung Lee;Yu-Si Lee;Dong-Hyun Kang;Soon Han Kim
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제32권12호
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pp.1605-1614
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2022
The strains associated with foodborne Salmonella enterica Thompson outbreaks in Korea have not been identified. Therefore, we characterized S. Thompson strains isolated from chocolate cakes linked to foodborne outbreaks in Korea. A total of 56 strains were isolated from preserved cake products, products in the supply chain distribution, the manufacturer's apparatus, and egg white liquid products used for cream preparation. Subsequently, serological typing, pathogenic gene-targeted polymerase chain reaction (PCR), pulsed-field gel electrophoresis (PFGE), and whole-genome multi-locus sequence typing (wgMLST) were performed to characterize these isolates. The antigen formula of all isolates was 7:k:1,5, namely Salmonella enterica subsp. enterica Serovar Thompson. All 56 isolates harbored invA, his, hin, and stn, and were negative for sefA and spvC based on gene-targeted PCR analyses. Based on PFGE results, these isolates were classified into one group based on the same SP6X01.011 pattern with 100% similarity. We selected 19 strains based on the region and sample type, which were subjected to wgMLST. Although the examined strains showed 100% similarity, they were classified into seven clusters based on allelic differences. According to our findings, the cause of these outbreaks was chocolate cake manufactured with egg white liquid contaminated with the same Salmonella Thompson. Additionally, comparative analysis of wgMLST on domestic isolates of S. Thompson from the three outbreaks showed genetic similarities of over 99.6%. Based on the results, the PFGE and wgMLST combination can provide highly resolved phylogeny and reliable evidence during Salmonella outbreak investigations.
Forty Clostridium perfringens isolates were obtained from twelve animal products, following the examination of eighty six beef, pork, broiler chicken and salami meat products, and eleven milk powder products. There were 21 isolates from salami stored at $25^{\circ}C$, 3 isolates from pork, 4 isolates from beef, 9 isolates from broiler chicken, and 3 isolates from milk powder. Only the cpa gene encoding a toxin among the 5 toxin genes tested (cpa, cpb, etx, iap, and cpe) was detected in all forty isolates, suggesting contamination with C. perfringens type A. DNA fingerprinting analysis using PCR of the tRNA intergenic spacer (tDNA-PCR) and the 16S-23S internal transcribed spacer (ITS-PCR), and randomly amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis were attempted to differentiate the isolates. RAPD analysis was the most discriminating method among the three PCR analyses. Isolates from the same products tended to show similar RAPD patterns. Antimicrobial susceptibility tests showed that some isolates from broiler chickens had the same antibiogram with multiple resistance to streptomycin, colistin, and ciprofloxacin. Antibiograms were similar between isolates from the same livestock products, but differed considerably between the products.
To evaluate the vancomycin resistance of Enterococcus spp. (VRE) from Saengsik and Sunsik, Enterococcus were isolated and identified from 25 Saengsik and 35 Sunsik samples, and resistance of Enterococcus to other antibiotics was also assessed. Thirty nine Enterococcus, 16 strains from Saengsik, and 23 strains from Sunsik, were ultimately isolated. The most frequently collected Enterococcus isolates in Saengsik were E. casseliflavus and E. hirae, and were E. casseliflavus and E. faecium in Sunsik. However, E. faecalis was not detected in those foods. Minimum inhibitory concentrations of vancomycin against the isolates were below $4\;{\mu}g/mL$ and no strains evidenced profound levels of resistance. The isolates were found to be susceptible to vancomycin with the exception of eight E. casseliflavus and three E. gallinarum. All Enterococcus isolates proved resistant to streptomycin and chloramphenicol. 23% of the isolates were resistant to penicillin; however, all of the isolates were sensitive to tetracycline. Six and 48%, respectively, of the strains from the Saengsik and Sunsik proved resistant to erythromycin. All of E. mundtii and E. hirae isolates from Saengsik, and 20% of E. gallinarum and E. casseliflavus isolates from Sunsik were found to be ampicillin-resistant. All of E. gallinarum, E. casseliflavus, and E. faecium were rifampin-resistant. The antibiotic resistances of Enterococcus were relatively low, and this low vancomycin resistance was similar to that evidenced by Enterococcus isolates obtained from the other foods. However, there may be a need for some review of the accepted antibiotics criteria for Enterococcus and VRE in ready-to-eat foods.
A two-step triplex PCR assay targeting the mecA, femA, and nuc genes was developed for the detection of methicillin resistance genes harbored by some Staphylococcus aureus isolates and for the simultaneous identification of such isolates at the species level. The triplex PCR revealed the presence of the femA and nuc genes in all the S. aureus isolates examined (n=105). Forty-four clinical isolates were mecA positive and no foodborne isolates were mecA positive. The PCR results had a 98 or 99% correlation with the results of PBP2a latex agglutination tests or oxacillin susceptibility tests, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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