Banik, Samudra Prosad;Pal, Swagata;Chowdhury, Sudeshna;Ghorai, Shakuntala;Khowala, Suman
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.21
no.4
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pp.412-420
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2011
Secretion of cellobiase occurred in a brefeldin A (BFA) uninhibited manner in the filamentous fungus Termitomyces clypeatus. Fluorescence confocal microscopy revealed that application of the drug at a concentration of 50 ${\mu}g$/ml caused arrest of Spitzenkorper assembly at the hyphal tip. This resulted in greater than 30% inhibition of total protein secretion in the culture medium. However, the cellobiase titer increased by 17%, and an additional 13% was localized in the vacuolar fraction en route secretion. The secretory vacuoles formed in the presence of the drug were also found to be bigger (68 nm) than those in the control cultures (40 nm). The enzyme secreted in the presence and absence of BFA revealed a single activity band in both cases in native PAGE and had similar molecular masses (approx. 120 kDa) in SDS-PAGE. The BFA enzyme retained 72% of native glycosylation. It also exhibited a higher stability and retained 98% activity at $50^{\circ}C$, 93.3% activity at pH 9, 63.64% activity in the presence of 1M guanidium hydrochloride, and 50% activity at a glucose concentration of 10 mg/ml in comparison to 68% activity, 75% activity, 36% activity, and 19% activity for the control enzyme, respectively. The observations collectively aimed at the operation of an alternative secretory pathway, distinct from the target of brefeldin A, which bypassed the Golgi apparatus, but still was able to deliver the cargo to the vacuoles for secretion. This can be utilized in selectively enhancing the yield and stability of glycosidases for a successful industrial recipe.
Park, Mi-Hye;Kim, Hyoun-Young;Kim, Jong-Hwa;Han, Kap-Hoon
Korean Journal of Microbiology
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v.45
no.4
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pp.312-317
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2009
Genome analysis of a model filamentous fungus, Aspergillus nidulans, revealed that there are six putative forkhead genes. Among them, fkhF (AN8949.2) showed A. nidulans-specific. fkhF gene is located in chromosome VII and composed of 2,337 bp coding region for 778 amino acid. Since little is known about the involvement of the forkhead proteins in the developmental process of the filamentous fungi, including A. nidulans, we generated a deletion mutant of fkhF gene and analyzed. Deletion of fkhF resulted in less-dense conidiophore formation in a solid culture. However, the sexual developmental process or cleistothecia formation was normal. Furthermore, fkhF deletion mutant produced conidiophores and conidia under the submerged culture, suggesting that the fkhF gene is involved in repression of inappropriated induction and maturation of asexual developmental process but not in sexual development.
A filamentous fungus, strain FM04 producing amylase was isolated from rotten yam peels and potatoes. The favorable conditions of cultivation factors such as, temperature, pH, and agitation speed of strain FM04 were 28∼30$^{\circ}C$, 5.0∼6.0, and 100 rpm, respectively. Starch was the best carbon source in the amylase production. Therefore, food wastes containing lots of starch were employed as the carbon source of the cultivation for the economical amylase production. 5.2 U/ml of amylase was obtained In the cultivation using 1 % (w/v) of food wastes. The amylase showed the highest activity at enzyme reaction conditions of 60$^{\circ}C$ and pH 4.5 and showed 90% of residual activity after the reaction at 50$^{\circ}C$ for 2 days. In the enzymatic hydrolysis reaction using 20% (w/v) of food wastes and 2.5 U/ml of amylase, 72.6 g/l of reducing sugar was obtained at the reaction condition of 50$^{\circ}C$, pH 4.5 for 2 days.
Protein glycosylation is a common post-translational modification by non-template-based biosynthesis. In fungal biotechnology, which has great applications in pharmaceuticals and industries, the importance of research on fungal glycoproteins and glycans is accelerating. In particular, the importance of quantitative analysis of fungal glycans is emerging in research on the production of filamentous fungal proteins by genetic modification. Reliable mass spectrometry-based techniques for quantitative glycomics have evolved into chemical, enzymatic, and metabolic stable isotope labeling methods. In this study, we intend to expand quantitative glycomics by metabolic isotope labeling of glycans in Aspergillus niger, a filamentous fungus model, by the MILPIG method. We demonstrate that incubation of filamentous fungi in a culture medium with carbon-13 labeled glucose (1-13C1) efficiently incorporates carbon-13 into N-linked glycans. In addition, for quantitative validation of this method, light and heavy glycans are mixed 1:1 to show the performance of quantitative analysis of various N-linked glycans simultaneously. We have successfully quantified fungal glycans by MILPIG and expect it to be widely applicable to glycan expression levels under various biological conditions in fungi.
The fungus Phellinus is a mushroom that is widely used medicinally. The optimal conditions for mycelial growth of 13 strains of the fungus were investigated. Mycelial growth was optimal at 25$^{\circ}C$ and was uniformly minimal at 15$^{\circ}C$ and 35$^{\circ}C$. Growth was optimal at pH 6$\sim$7. The mycelial phenotype was best promoted by growth using Potato Dextrose agar, Hamada, Glucose peptone, and Yeast-Malt media, whereas Czapek Dox, Hennerberg, and Lilly media were the most unfavorable for the mycelial growth of Phellinus spp. Glucose, sucrose, fructose, and dextrin were the most suitable carbon sources for mycelial growth, while lactose, maltose, and galactose were unsuitable. Among tested nitrogen sources, ammonium phosphate, potassium nitrate, and arginine best promoted mycelial growth, while alanine, urea, and histidine least promoted mycelial growth.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.21-22
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2003
Fungicide treatment is the most important method for the control of plant diseases caused by phytopathogenic fungi. But fungicide resistant strains have appeared in many phytopathogenic fungi. Until now, molecular mechanisms of fungicide resistance such as mutation of target protein, overproduction of target enzyme and detoxification of fungicide have been designated. Recently, it was demonstrated that active efflux of fungicides mediated by ATP-binding cassette (ABC) transporters also contributes to fungicide resistance in several filamentous fungi, such as Aspergillus nidulans, Penicillium digitatum and Botrytis cinerea.(중략)
Protoplast production from Trichoderma koningii ATCC 26113 was investigated for the purpose of doing basic and applied researches by protoplast fusion of the cellulolytic filamentous fungus. High yields of protoplast were obtained by using the 18hr. old mycelia treated with the lytic enzyme Driselase of Kyowa Fermentation Co., Japan, in 0.6M $MgSO_4\;or\;(NH_4)_2SO_4$ as osmotic stabilizers. The optimum temeprature of mycelial digestion was about $28^{\circ}C$ and the number of protoplast increased rapidly after 3hr. digestion. Protoplasts produced at different periods showed distinct morphological heterogeneities in the whole size and the size of vacuole.
Microscopical studies of Leucothrix sp. and its histological effect on the gill tissue of Penaeus japanicus have been made. Infection of Leucothrix sp. results in color change of the gills of the shrimp which is mainly due to the brown or black pigments of the filamentous bacteria. Higher degree of the infections makes necrosis and serious histological changes of the gill tissue and this infection affects the respiratory activity of the shrimp.
Fungal secondary metabolites constitute a wide variety of compounds which either playa vital role in agricultural, pharmaceutical and industrial contexts, or have devastating effects on agriculture, animal and human affairs by virtue of their toxigenicity. Owing to their beneficial and deleterious characteristics, these complex compounds and the genes responsible for their synthesis have been the subjects of extensive investigation by microbiologists and pharmacologists. A majority of the fungal secondary metabolic genes are classified as type I polyketide synthases (PKS) which are often clustered with other secondary metabolism related genes. In this review we discuss on the significance of our recent discovery of chalcone synthase (CHS) genes belonging to the type III PKS superfamily in an industrially important fungus, Aspergillus oryzae. CHS genes are known to playa vital role in the biosynthesis of flavonoids in plants. A comparative genome analyses revealed the unique character of A. oryzae with four CHS-like genes (csyA, csyB, csyC and csyD) amongst other Aspergilli (Aspergillus nidulans and Aspergillus fumigatus) which contained none of the CHS-like genes. Some other fungi such as Neurospora crassa, Fusarium graminearum, Magnaporthe grisea, Podospora anserina and Phanerochaete chrysosporium also contained putative type III PKSs, with a phylogenic distinction from bacteria and plants. The enzymatically active nature of these newly discovered homologues is expected owing to the conservation in the catalytic residues across the different species of plants and fungi, and also by the fact that a majority of these genes (csyA, csyB and csyD) were expressed in A. oryzae. While this finding brings filamentous fungi closer to plants and bacteria which until recently were the only ones considered to possess the type III PKSs, the presence of putative genes encoding other principal enzymes involved in the phenylpropanoid and flavonoid biosynthesis (viz., phenylalanine ammonia-lyase, cinnamic acid hydroxylase and p-coumarate CoA ligase) in the A. oryzae genome undoubtedly prove the extent of its metabolic diversity. Since many of these genes have not been identified earlier, knowledge on their corresponding products or activities remain undeciphered. In future, it is anticipated that these enzymes may be reasonable targets for metabolic engineering in fungi to produce agriculturally and nutritionally important metabolites.
Appressorium is a specialized infection structure of filamentous pathogenic fungi and plays an important role in establishing a pathogenic relationship with the host. The Egh16/Egh16H family members are involved in appressorium formation and pathogenesis in pathogenic filamentous fungi. In this study, a homolog of Egh16H, Magas1, was identified from an entomopathogenic fungus, Metarhizium acridum. The Magas1 protein shared a number of conserved motifs with other Egh16/Egh16H family members and specifically expressed during the appressorium development period. Magas1-EGFP fusion expression showed that Magas1 protein was not localized inside the cell. Deletion of the Magas1 gene had no impact on vegetative growth, conidiation and appressorium formation, but resulted in a decreased mortality of host insect when topically inoculated. However, the mortality was not significant between the Magas1 deletion mutant and wild-type treatment when the cuticle was bypassed by injecting conidia directly into the hemocoel. Our results suggested that Magas1 may influence virulence by affecting the penetration of the insects' cuticle.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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