Microbial oxidation of D-sorbitol to L-sorbose by Acetobacter suboxydans is of commercial importance since it is the only biochemical process in vitamin C synthesis. The main bottleneck in the batch oxidation of sorbitol to sorbose is that the process is severely inhibited by sorbitol. Suitable fed-batch fermentation designs can eliminate the inherent substrate inhibition and improve sorbose productivity. Fed-batch sorbose fermentations were conducted by using two nutrient feeding strategies. For fed-batch fermentation with pulse feeding, highly concentrated sorbitor (600g/L) along with other nutrients were fed intermittently in four pulses of 0.5 liter in response to the increased DO signal. The fed-batch fermentation was over in 24h with a sorbose productivity of 13.40g/L/h and a final sorbose concentration of 320.48g/L. On the other hand, in fed-batch fermentation with multiple feeds, two pulse feeds of 0.5 liter nutrient medium containing 600g/L sorbitol was followed by the addition of 1.5 liter nutrient medium containing 600g/L sorbitol at a constant feed rate of 0.36L/h till the full working capacity of the reactor. The fermentation was completed in 24h with an enhanced sorbose productivity of 15.09g/L/h and a sorbose concentration of 332.60g/L. The sorbose concentration and productivity obtained by multiple feeding of nutrients was found to be higher than that obtained by pulse feeding and was therefore a better strategy for fed-batch sorbose fermentation.
An animal-component-free and chemically defined fed-batch process for GS-engineered cell lines producing recombinant antibodies has been developed. The fed-batch process relied on supplying sufficient nutrients to match their consumption, simultaneously minimizing the accumulation of by-products (lactate and osmolality). The proportionalities of nutritional consumption were determined by direct analysis. The robust, metabolically responsive feeding strategy was based on the offline measurement of glucose. The fed-batch process was shown to perform equivalently in GS-CHO and GS-NS0 cultures. Compared with batch cultures, the fed-batch technology generated the greater increase in cell yields (5-fold) and final antibody concentrations (4-8-fold). The majority of the increase in final antibody concentration was a function of the increased cell density and the prolonged culture time. This generic and high-yielding fed-batch process would shorten development time, and ensure process stability, thereby facilitating the manufacture of therapeutic antibodies by GS-engineered cell lines.
본 연구는 다양한 조건에서의 실험을 위한 C. minutissima의 500 mL flask의 종 배양을 통해 고농도의 균주 획득 후, 가장 효율적인 배양 방식을 보인 fed-batch를 통한 autotrophic, heterotrophic, mixotrophic 조건하에서 바이오디젤용 지질 생산의 최적 배양 조건을 찾아야했다. 먼저, fed-batch의 Heterotrophic 배양 시 유기 탄소 원으로 glucose의 가장 효율적인 안정한 초기농도가 10 g/L임을 확인했다. 이 후, 20 L 배양기를 이용한 batch, fed-batch의 heterotrophic 배양에서 fed-batch배양의 경우 지질 생성양이 1.62배 정도 더 높았으며, 최대 균체량 역시 4 (g-dry wt./L)정도 높으며, 또한 디젤용 지질로 적합한 $C_{18}$의 조성 역시 49%이상 차지하여, 옥외 대량 배양 시 유기탄소 원으로 적절한 glucose의 이용을 통한 효율적인 배양방법임을 알 수 있다. 이 결과를 바탕으로, glucose를 포함한 배지를 0.5 L/day로 공급하여 유가 식 배양을 각 배양 조건에 따라 비교 실시했다. 그 결과 mixotrophic의 경우 다른 배양 조건에 비해 각각 24 (g-dry wt./L)의 최대 군체 농도와 함께 43 (%, w/w)의 높은 지질 생성량을 보였다. 또한 생성되는 지질의 조성이 균체 당 바이오 디젤용 양질의 지질 생성이 가능하였다. 또한 fed-batch 배양 이후 0.047 (% lipid/g-dry wt./day)의 비 생산 속도를 유지하며, 일정 균체 농도를 유지하는 경우 지속적인 지질 생성이 가능함을 보여주었다. 이러한 세 가지 배양 조건하에서 지질 추출을 통한 지방산 조성을 살펴본 결과 mixotrophic 배양 하에 디젤용으로 잘 알려진 $C_{17}$, $C_{18}$의 지방산 조성은 각각 18%와 49%의 생성을 보여주었다. 이 결과들을 바탕으로 이 균주를 이용해 옥외 배양이나 배양 조에서 대량 배양이 가능함을 확인했으며, 특히, 옥외배양을 위한 혼합영양 배양조건하에 배양 공정의 scale-up에 대한 추가적인 연구를 통해 C. minutissima 미세조류로부터 바이오 디젤의 보다 경제적 생산이 가능하도록 하고자 한다.
The gene encoding yeast pro-carboxypeptidase Y (pro-CPY) has been cloned and expressed in Escherichia coli. Most of the expressed pro-CPY was accumulated as cytoplasmic insoluble aggregates. In our previous study, active CPY was obtained by renaturation of entirely denatured pro-CPY followed by in vitro proteolytic processing with proteinase K along with the activation process. The same refolding process was performed to produce an active CPY from pro-CPY inclusion bodies with renaturation buffers containing proteinase K at different concentrations. The refolding efficiency decreased from $25\%\;to\;2\%$ in the renaturation buffers containing proteinase K at concentrations of $60{\mu}g/ml\;and\;0.6{\mu}g/mi$, respectively. In an attempt to increase the refolding efficiency with a lesser amount of proteinase K, a novel fed-batch refolding process was developed. In a fed-batch refolding, 99 ml of the renaturation buffer containing pro-CPY was gradually added into 1 ml of the renaturation buffer containing $60{\mu}g/ml$ of proteinase K to give a final proteinase K concentration of $0.6{\mu}g/ml$. The fed-batch refolding process resulted in a refolding efficiency of $18\%$, which corresponded to a 9-fold increase over that ($2\%$) in the batch process.
As a process for commercial application, production of reducing sugar, antioxidant, and DNA protective compounds from shrimp-shell powder was investigated in a fed-batch biodegradation using Bacillus cereus EW5. The fed-batch biodegradation was operated in a 5-L bioreactor for 96 h according to three times pulse-feeding strategy. On the basis of the equal working volume (3 L), the fed-batch biodegradation showed a better production of the target compounds than the batch biodegradation, with higher cell density and shortened biodegradation period. The maximum values of the target compounds were 0.297 mg/mL of reducing sugar, 92.35% DPPH radical scavenging activity, 98.16% ABTS radical scavenging activity, and 1.55 reducing power at $A_{700}$, which were approximately 12.1, 3.4, 5.2, and 8.4% enhanced, respectively, compared with those obtained from the batch biodegradation. The fed-batch culture supernatant also showed the enhanced DNA damage inhibition activity than the batch culture supernatant. As a result, the fed-batch biodegradation accompanied by high cell density could produce more useful compounds, enabling an increase in the reutilization value of shrimp-shell waste.
The green alga, Dunaliella salina under fed-batch cultivation produced 51.12 mg of hydrocarbon per liter with maintaining 0.313 (g dry wt/l). About 20% of hydrocarbon production yield based on dry biomass was obtained from both batch and fed-batch processes. Optimum culture conditions of light intensity, pH and salt concentration were obtained as 0.0080 (kJ/$cm^2$/h), 8.0 and 1.4 (g of NaCl/l), respectively by response surface analysis. The production of hydrocarbons in D. salina was closely correlated to cell growth. Fed-batch cultivation produced more hydrocarbons and maintained better cell growth than a batch process.
A process for efficient recycle fed-batch culture was carried out to increase cell mass and spore production by Lactic acid bacteria isolated from Kimchi. A large quantity of cell mass obtained by feeding concentration of sugar in recycle fed-batch culture. When the high density of salt was created that the cell mass was come-down. In this study, cultured in different feeding concentration of sugar conditions. Lactic acid bacteria by recycle fed-batch culture was investigated in 2L working volume of fermenter, obtained the maximum cell mass was 15.17g/L.
In this paper, a fed-batch cultivation process in recombinant Escherichia coli BL21(DE3) bacteria, for the production of human soluble catechol-O-methyltransferase (hSCOMT), is presented. For the first time, a straightforward model is applied in a recombinant hSCOMT expression system and distinguishes an initial cell growth phase from a protein production phase upon induction. Specifically, the kinetic model predicts biomass, substrate, and product concentrations in the culture over time and was identified from a series of fed-batch experiments designed by testing several feed profiles. The main advantage of this model is that its parameters can be identified more reliably from distinct fed-batch strategies, such as glycerol pulses and exponential followed by constant substrate additions. Interestingly, with the limited amount of data available, the proposed model accomplishes satisfactorily the experimental results obtained for the three state variables, and no exhaustive process knowledge is required. The comparison of the measurement data obtained in a validation experiment with the model predictions showed the great extrapolation capability of the model presented, which could provide new complementary information for the COMT production system.
The production of poly-$\beta$-hydroxybutyrate(PHB) from methanol by batch and fed-batch cultivations of Methylobacterium sp. GL-10 was studied. PHB accumulation was stimulated by the nutrients deficiency including, NH4+, SO42-, and K+. The nitrogen deficiency was the most critical factor for PHB accumulation. In batch cultivation, the maximum cell concentration and PHB content were 1.86g/l and 0.62g/l, respectively, with 1.0%(v/v) of methanol and 0.5g/1 of ammonium sulfate. The mass doubling time of Methylobacterum sp. GL-10 was in the range of 4-5 hrs. The cell growth and PHB accumulation were severely inhibited at the methanol concentration over than 2% (v/v). To overcome methanol Inhibition, constant feeding and intermittent feedillg fed-batch cultivations were adopted, using C/N molar ratio as a control factor. In constant feeding fed-batch process, cell concentration was increased up to 2.67g/1, and PHB yield was enhanced from 0.33 of batch culture to 0.53. The relatively low cell concentration was caused by methanol accumulated in culture broth at late growth phase. To prevent methanol accumulation and to maximize PHB production, DO-state intermittent fed-batch cultivation was attempted. The cell and PHB concentration was reached up to 4.55g/1 and 1.80g/1, respectively. It was possible to maintain methanol concentration low and also to feed nutrient of desired C/N molar ratio.
본 연구에서는 fed-batch를 통하여 Agaricus blazei의 균체증식과 다당체 생산을 증가시키고자 공급배지와 배지공급속도에 변화를 주어 균체증식과 다당체 생성에 미치는 영향을 비교 ${\cdot}$ 검토하였다. 유가식 배양에서의 최종균체량 및 다당체 생성량은 회분식 배양에 비해 훨씬 높았으며, 초기에 균체증식을 위해 공급배지로 yeast extract를 먼저 공급하고 4일째부터 다당체 생성을 위해서 glucose를 공급할 경우 균체량은 18.2 g/L, 다당체 생성량은 10.4 g/L를 생산하여 배양결과 최대 생산량을 나타내었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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