In earlier studies, the genes encoding Escherichia coli thioredoxin and Corynebacterium nephridii thioredoxin C-3 were fused via a common restriction site in the nucleotide sequence coding for the active site of the proteins to generate two chimeric thioredoxins, designated E-C3 (N to C-terminal) and C3-E. The hybrid thioredoxins were overexpressed in E. coli from the cloned chimeric thioredoxin genes by a T7 promoter/polymerase system. To investigate the structure-function relationship of thioredoxin, we purified the E-C3 hybrid thioredoxin through ammonium sulfate fractionation, DEAE-cellulose chromatography, and Sephadex G-50 gel filtration. Its purity was examined on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and the molecular weight of the purified E-C3 hybrid thioredoxin was estimated to be 12,000. On native polyacrylamide gels, the purified E-C3 hybrid thioredoxin shows a much lower mobility than E. coli thioredoxin. E-C3 hybrid thioredoxin exhibits a 40-fold lower catalytic efficiency with E. coli thioredoxin reductase than E. coli thioredoxin. It was shown to catalyze the reduction of insulin disulfide by dithiothreitol. The purified E-C3 hybrid thioredoxin was also characterized in other aspects.
Lectin activities and chemical characteristics of Escherichia coli, Lactobacillus spp. and Bifidobacterium spp. originating from the porcine cecal mucosal layer were studied based on hemagglutination assay (HA) and hemagglutination inhibition assay (HIA). Although all the bacterial strains were able to agglutinate erythrocytes of porcine or rabbit origin, much higher HA titers were consistently observed for Lactobacillus spp. than for E. coli or for Bifidobacterium spp. A remarkable reduction in HA titers occurred by the treatment of E. coli and Lactobacillus spp. with protease or trypsin and of Bifidobacterium spp. with protease, trypsin or periodate. There were no significant effects on the HA titers of the three groups of bacteria after the treatment with lipase. Hemagglutination of E. coli was strongly inhibited by D (+)-mannose and D (+)-galactose; Lactobacillus spp. by $\alpha$-L-rhamnose and methyl-$\beta$-galactopyranoside; Bifidobacterium spp. by D (+)-alactose, $\alpha$-L-rhamnose, $\alpha$-L-fucose, L (+)-arabinose, D (+)-mannose, D (-)-fructose at a relatively low concentration (1.43 to 3.75 mg/ml). These results, combined with the enhanced HA activities of the three bacterial strains by modification of rabbit erythrocytes with neuraminidase and abolished HA activity of E. coli after treatment with $\beta$-galactosidase, indicate that it might be the glycoproteinous substances surrounding the surface of the bacterial cells that are responsible for the adhesions of these microorganisms by recognizing the specific receptors on the red blood cell.
The Escherichia coli K-12 and B strains are among the most frequently used bacterial hosts for scientific research and biotechnological applications. However, omics analyses have revealed that E. coli K-12 and B exhibit notably different genotypic and phenotypic attributes, even though they were derived from the same ancestor. In a previous study, we identified a limited number of proteins from the two strains using two-dimensional gel electrophoresis and tandem mass spectrometry (MS/MS). In this study, an in-depth analysis of the physiological behavior of the E. coli K-12 and B strains at the proteomic level was performed using six-plex isobaric tandem mass tag-based quantitative MS. Additionally, the best lysis buffer for increasing the efficiency of protein extraction was selected from three tested buffers prior to the quantitative proteomic analysis. This study identifies the largest number of proteins in the two E. coli strains reported to date and is the first to show the dynamics of these proteins. Notable differences in proteins associated with key cellular properties, including some metabolic pathways, the biosynthesis and degradation of amino acids, membrane integrity, cellular tolerance, and motility, were found between the two representative strains. Compared with previous studies, these proteomic results provide a more holistic view of the overall state of E. coli cells based on a single proteomic study and reveal significant insights into why the two strains show distinct phenotypes. Additionally, the resulting data provide in-depth information that will help fine-tune processes in the future.
Cheng, Jiansong;Liu, Bin;Bastin David A.;Han, Weiqing;Wang, Lei;Feng Lu
Journal of Microbiology
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v.45
no.1
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pp.69-74
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2007
Escherichia coli is a clonal species, and occurs as both commensal and pathogenic strains, which are normally classified on the basis of their O, H, and K antigens. The O-antigen (O-specific polysaccharide), which consists of a series of oligosaccharide (O-unit) repeats, contributes major antigenic variability to the cell surface. The O-antigen gene cluster of E. coli O66 was sequenced in this study. The genes putatively responsible for the biosynthesis of dTDP-6-deoxy-L-talose and GDP-mannose, as well as those responsible for the transfer of sugars and for O-unit processing were identified based on their homology. The function of the wzy gene was confirmed by the results of a mutation test. Genes specific for E. coli O66 were identified via PCR screening against representatives of 186 E. coli and Shigella O type strains. The comparison of intergenic sequences located between galF and the O-antigen gene cluster in a range of E. coli and Shigella showed that this region may perform an important function in the homologous recombination of the O-antigen gene clusters.
Inhibitory effect of Escherichia coli O157 adhered to Caco-2 cells by the cells of Lactobacillus plantarum K11 and the cell-free culture supernatant (CFCS) and bacteriocin prepared from this strain was investigated. As the cell counts of viable L. plantarum K11 previously adhered to Caco-2 were increased, the rate of adhesion and adherent cell counts of E. coli O157 was lower. However, because the heated L. plantarum K11 rarely have the adhesion ability to Caco-2, the adhesion rate and adherent cell counts of E. coli O157 were high. In addition, the inhibitory effects of E. coli O157 adhesion by the CFCS and bacteriocin of L. plantarum K11 were dose-dependent manner. Therefore, the inhibition of adhesion of E. coli O157 to Caco-2 may result from the antimicrobial substances such as lactic acid and bacteriocin. Moreover the inhibitory activity of adhesion by the heated bacteriocin for 30 min at 100oC was similar to activity of non-treated bacteriocin, but the activity was disappeared by treatment with protease.
A sensitive reverse transcriptase-PCR (RT-PCR) method to detect viable Escherichia coli O157:H7 in milk was established. The primer sets were designed based on the nucleotide sequences of the rfbE (per) and wbdN genes in the O157 antigen gene cluster of E. coli O157:H7. RT-PCR using five different primer sets yielded DNA with sizes of 655, 518, 450, and 149-bp, respectively. All five of the E. coli O157:H7 strains were detected by RT-PCR, but 11 other bacterial species were not. The sensitivity of RT-PCR was improved by adding yeast tRNA as a carrier to the crude RNA extract. The RT-PCR amplifying the 149-bp DNA fragment was the most sensitive for detecting E. coli O157:H7 and the most refractory to the bactericidal treatments. Heat treatment at $65^{\circ}C$ for 30 min was the least inhibitory of all bactericidal treatments. Treatment with RNase A strongly inhibited the RT-PCR of heated milk but not unheated milk. This study described RT-PCR methods that are specific and sensitive with a detection limit of 10 E. coli O157:H7 cells, and showed that pre-treating milk samples with RNase A improved the specificity to detect viable bacteria by RT-PCR.
An ABC transporter apparatus of the Gram-negative bacterial type I secretion pathway can be used as a secretory protein expression system in Escherichia coli. Four types of coexpression systems for the Pseudomonas fluorescens lipase gene, tliA, and its cognate ABC transporter gene cluster, tliDEF, were constructed. When the relative expression levels were changed by adding different concentrations of IPTG, the secretion (16.9 U/ml of culture) of TliA in E. coli [pTliDEFA-223+pACYC184] was significantly higher than E. coli [pKK223-3+pTliDEFA-184] secreting the lowest level of TliA (5.2 U/ml of culture). Maximal accumulation of the lipase secreted occurred in the mid-exponential phase, implying that the efficient protein secretion via an ABC transporter was restricted only to actively growing cells. Finally, the secretion level of TliA in E. coli [pTliDEFA-223+pACYC184] was increased to 26.4 U/ml by inducing gene expression at the culture initiation time. These results indicate that a significant increase in the ABC transporter-dependent protein secretion can be achieved by simply controlling the relative expression levels between the ABC transporter and its passenger protein, even in the recombinant E. coli cells.
Kim, Hwan-Deuk;Park, Dae-Hyun;Lee, Mi-Ree;Kim, Eun-Jeong;Cho, Jae-Keun
Korean Journal of Veterinary Service
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v.37
no.4
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pp.225-231
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2014
In this study, 185 cefotaxime-resistant Escherichia coli were isolated from different stages of a wastewater treatment plant (WWTP) in Daegu in Korea. Among them, 99.5% (184 isolates) originated from raw sewage and 0.5% (1 isolates) from the final effluent. Cefotaxime-resistant E. coli were high resistant to ampicillin, piperacillin, cefazolin, cephalothin, cefachlor and cefamandole (99.5~100%). About 93% of the cefotaxime-resistant E. coli were extended-spectrum ${\beta}$-lactamases (ESBL)-producing E. coli. The $bla_{TEM+CTX}$ gene was the most predominant of the ESBL genes (72.5%), followed by $bla_{CTX-M}$ (16.2%), $bla_{TEM}$ (8.7%), $bla_{TEM+CTX+SHV}$ (1.1%), $bla_{TEM+SHV}$, $bla_{TEM+OXA}$, and $bla_{TEM+CTX+SHV}$ (respectvely 0.5%). Class 1 and 2 integron were found in 49.7% and class 3 integron was not found. All of integron positive isolates were multiresistant (i.e. resistant to four or more antibiotics). Our findings showed WWTP is contaminated with antibiotic resistant bacteria with resistance genes.
The present study evaluated the potential use of immunoglobulin prepared from egg yolk of chickens immunized with Escherichia coli K88 (IgY-Ec) in the control of E. coli K88 infection in RAW 264.7 murine macrophage. The binding activity of IgY-Ec against E. coli K88 surface protein was more specific and increased than control IgY. In infection assay of E. coli in macrophage, the specific IgY-Ec to E. coli K88 remarkably inhibited the phagocytic activity comparing to nonspecific IgY (p<0.001). In adherence assay, bacterial adhesion on macrophage cells was definitely reduced by preincubation of IgY-Ec compared with nonspecific IgY (p<0.05). These findings suggested that IgY-Ec have the protective effects against pathogens and IgY-based diets may have potential benefits for preventing or treating various infections in domestic animals.
Phytase from Escherichia coli WC7 was purified from cell extracts and its molecular mass was estimated to be 45 kDa by SDS-PAGE. Its optimum temperature and pH for phytate hydrolysis was 6$0^{\circ}C$ and pH 5.0, respectively. The enzyme was stable up to 6$0^{\circ}C$ and over broad pH range (pH 2-12). The enzyme had higher affinity for sodium phytate than p-nitrophenylphosphate (pNPP). That is, the apparent Km value for sodium phytate and pNPP were $0.15\pm$0.02 mM and 2.82$\pm$0.05 mM, respectively. The gene encoding the phytase was cloned in E. coli XL1-Blue. Sequence analysis showed an open reading frame of 1241 Up encoding a signal peptide (22 aa) and a mature enzyme (410 aa). WC7 phytase was expressed up to 17.5 U/ml in the transformed E. coli XL1-Blue/pUEP, which was 23-fold higher than the activity from wild strain.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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