Cycloinulooligosaccharide fructanotransferase (CFTase) which produces cyclofructan from inulin was purified 332-fold from a culture broth of Bacillus macerans CFCl. The molecular mass of the CFTase was estimated to be 110 kDa by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and gel filtration, indicating that the enzyme has a monomer structure. The maximal level of enzyme activity was observed at pH 7.5 and $45^{\circ}C$. The enzyme was stable in the pH range 6.0 to 9.5, and at temperatures up to $45^{\circ}C$ for 1 h. The enzyme activity was completely inhibited in the presence of 0.5 mM $Ag^+\;or\;Cu^2+$ ion. None of sucrose (GF), l-kestose (GF2), or nystose (GF3) were found to be substrates for the CFTase, but inulooligosaccharides larger than nystose were attacked by the enzyme. The CFTase catalyzes not only the cyclization as the major reaction, but also disproportionation and coupling reactions involving intermolecular transfructosylation in the same manner as cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) (EC 2.4.1.19).
The thermal properties of ramie leaf ${\beta}$-amylase (RBA) were examined to develop a novel process for enzyme purification. The thermostability of RBA extract prepared from ramie leaf powder was examined at various temperatures. RBA activity decreased slightly, whereas other carbohydrate-active enzymes, such as $\small{D}$-enzyme, were rapidly inactivated during 30 min incubation at $60^{\circ}C$. When the heat-treated extract was incubated with various substrates, maltose was produced exclusively as the major product, whereas the untreated crude extract produced maltose and other maltooligosaccharides. In sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis analysis, fewer protein bands were observed for the heat-treated extract than the untreated extract, indicating that the thermostable RBA was partially purified and other thermolabile enzymes were eliminated. Thus, the treatment of the RBA extract at $60^{\circ}C$ for 30 min resulted in 5.4-fold purification with a recovery yield of 90%.
Lee Jin Ha;Park Jun Seong;Park Hyen Joung;Cho Jae Young;Choi Jeong Sik;Kim Do Man
KSBB Journal
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v.19
no.5
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pp.363-367
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2004
Leuconostoc mesenteroides NRRL B-1149 produces various glucoseyltransferases for the synthesis of dextran, levan and glucose-1-phosphate using sucrose as a substrate. A sucrose phosphorylase (1149SPase) was purified from L. mesenteroides NRRL B-1149 culture by using hollow fiber filtration (30 kDa cut off), Toyopearl DEAE 650 M column chromatography and following two times of DEAE-Sepharose column chromatographies. The specific activity of the purified 1149SPase was 25.7 (U/mg) with $16\%$ yield. The 1149SPase showed a molecular size of 56 kDa on denatured $10\%$ SDS-PAGE. The N-terminal amino acid sequence of the enzyme was MEIQNKAM. The optimum pH and temperature of this enzyme were 6.2~6.5 and 37^{circ}C, respectively. It had an apparent K_{m} of 6.0 mM and K_{cat} of 1.62/s for sucrose. 1149SPase crystal was formed by hanging drop diffusion technique using 20 mM calcium chloride dihydrate, 100 mM sodium acetate trihydrate pH 4.6 and $30\%$ 2-methyl-2,4-pentanediol as vaporizing and reservation solution. The 1149SPase catalyzes transferring of glucose from isomaltose or sucrose to salicin and salicyl alcohol by disproportionation reaction or acceptor reaction and synthesized two acceptor products, respectively.
The enzymatic properties of purified CGTase from alkalophilic Bacillus sp. YC-335 have been examined. Apparent Vmax values of the enzyme in transferring glycosyl residues ${\alpha}-,\;{\beta}-and\;{\gamma}-cyclodextrin(CD)$ to sucrose were $16.13,\;21.8\;and\;9.8{\mu}moles/min/mg\;protein$, respectively and Km values of the corresponding CD were 1.68, 0.33 and 0.37 mM, respectively. A number of saccharides, specially starch hydrolyzates such as glucose and maltose, could activate the dextrinizing activity of the enzym. However, the dextrinizing activity was inhibited by ${\beta}-CD$. It was found from Lineweaver-Burk plot that the inhibition of CGTase by ${\beta}-CD$ was noncompetitive. High performance liquid chromatographic analysis showed that the enzyme has three kinds of activity ; transglycosylation and disproportionation as well as cyclization.
A gene corresponding to 4-${\alpha}$-glucanotransferase (${\alpha}GTase$) was cloned from the thermophilic bacterium Thermus brockianus. The nucleotide sequence analysis showed that the ${\alpha}GTase$ gene is composed of 1,503 nucleotides and encodes a polypeptide that is 500 amino acids long with a calculated molecular mass of 57,221 Da. The deduced amino acid sequences of Thermus brockianus ${\alpha}GTase$ (TBGT) exhibited a high level of similarity to the amino acid sequence of ${\alpha}GTase$ of Thermus thermophilus (86%), but low level of homology to that of E. coli (26%). The TBGT gene was overexpressed in E. coli BL21, and the corresponding recombinant enzyme was efficiently purified by Ni-NTA affinity chromatography. The enzymatic characteristics revealed that optimal pH and temperature were pH 6 and $70^{\circ}C$, respectively. Most interestingly, TBGT reacted with small oligosaccharides, especially maltotriose, to form various maltooligosaccharides by using its disproportionation activity.
Park, Nam-Sook;Lee, Sang-Mong;Sohn, Hung-Dae;Jin, Byung-Rae
Proceedings of the Korean Society of Sericultural Science Conference
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2003.10a
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pp.66-70
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2003
The first line of antioxidant defense against reactive oxygen species includes the enzymatic activity of the superoxide dismutase (SOD) that catalyzes the disproportionation of superoxide to hydrogen peroxide and water. The SOD mainly removes highly toxic $O_2$$^{[-10]}$ and also prevents $O_2$$^{[-10]}$ mediated reduction of iron and subsequent OH$^{[-10]}$ generation. Along with an interest in SOD as a first line of defense against damage mediated by the superoxide anion, the SOD1 enzyme has been subjected to investigation in the molecular and cellular level. (omitted)
Journal of The Korean Association For Science Education
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v.29
no.8
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pp.923-933
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2009
In this study, analysis was carried out on science experiment in high school textbooks, illustrating 'the effect of pH on enzyme activity.' Five of the total 16 science textbooks introduced in this experiment, and the experimental conditions therein were analyzed. Textbook analysis revealed that pH of below 3 was used for 'acidic condition' and that of over 11 was used for 'basic' condition. Using the experimental conditions described in the textbooks, review experiments were performed. Buffering effect with the addition of saliva was found in the pH region around 7 when buffer solution was not used to control pH as was in the textbooks. The enzyme activity experiments were performed controlling pH from pH 2 to 13 with buffer. The color of the sample was blue from pH 2 to 4, and then disappeared from pH 5 to 8, reflecting that starch was digested owing to enzyme activity. In pH 9 light blue color appeared, indicating de-activation of enzyme under this basic condition. However, the blue color of the sample became lighter at pH 10 and disappeared from pH 11, which was different from the expected behavior anticipating dark blue color due to de-activation of enzyme under strong basic condition. These results can wrongly influence students to interpret that enzyme can be activated in this pH condition. So, we analyzed the reason for the color of the sample turning light blue in pH 10 and disappeared from pH 11. The analysis resulted that ${I_3}^-$ and/or ${I_5}^-$ subunits of polyiodides within the starch helix in starch-iodine complex, showing blue, decreases above pH 10 due to disproportionation to HOI, ${IO_3}^-$, and $I^-$ by the reaction with $OH^-$.
Microorganism producing extracellular CFTase was isolated from soil and designated as Bacillus polymyxa MGL21. The gene encoding the CFTase (cft) from B. polymyxa MGL21 was cloned and sequenced. The ORF of the cf gene was composed of 3,999 nucleotides, encoding a protein (1,333 amino acids) with a predicted molecular mass of 149,375 Da. Sequence analysis indicated that CFTase was divided into five distinct regions. CFTase contained three regions of repeat sequences at the N-terminus and C-terminus. The endo-inulinase region of homology (ERH) of CFTase was similar to that of Pseudomonas mucidolens endo-inulinase ($50\%$ identity, 259 amino acids). Furthermore, CFTase possessed a highly conserved core region, which is considered to be functional for the hydrolysis reaction of inulin. The cft gene was expressed in a His-tagged form in Escherichia coli cells, and the His-tagged CFTase was purified to homogeneity. The optimal temperature and pH for CFTase activity were found to be $50^{\circ}C$ and 9.0, respectively. The enzyme activity was completely inhibited by 10 mM $Ag^+\;and\;Cu^2+$. Thin-layer chromatography analyses indicated that CFTase catalyzed not only the cyclization reaction ut also disproportionation and hydrolysis reactions as well.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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