In this study the enzyme inhibition method using dehydrogenase which has been popularly used to estimate ecotoxicity was optimized. When three bacterial strains, Escherichia coli HB101, Enterobacter asburiae KCAD-4, and Aeromonas media KCAD-13, were compared, KCAD-4 was considered as the adequate strain to estimate toxicity because of its sensitivity and reproducibility. The optimal bacterial density was estimated as $5.4{\times}10^9CFU/mL$, at which the maximum sensitivity was observed. The phosphate buffer was suitable for the reaction solution. When the reaction times required for inhibition of enzyme activity by contact of toxicants and for reaction of damaged bacteria and substrate were tested, the optimal value was estimated as 20 min and 2 hrs, respectively. It is expected that the optimized conditions can be used to develop the standardized kits to estimate ecotoxicity of heavy metals in effluent from the industrial wastewater treatment facilities.
In this study, we evaluated the bioactivities of methanol extract and its solvent fractions of Sonchus asper (L.) Hill. The EtOAc fraction of S. asper exhibited more strong antioxidant activity than other extracts as evidenced by the strongest 1,1-diphenyl-2-picryl hydrazyl (DPPH) radical scavenging activity with a $EC_{50}$ value at $33.55\;{\mu}g/mL$ and reducing power, the total polyphenol (180.71 mg GAE/g) and flavonoid contents (145.86 mg QE/g) of S. asper extract were higher than other extracts. The EtOAc fraction of the S. asper also showed 47.38% mushroom tyrosinase inhibition activity, 56.22% ${\alpha}$-glucosidase inhibition and 46.58% ${\alpha}$-amylase inhibition ratio at 1 mg/mL. Both methylene chloride and EtOAc fractions of methanol extract of S. asper effectively reduced of the 86.34% and 62.03% angiotensin I converting enzyme (ACE) activity at 2 mg/mL, respectively. These findings suggest that the EtOAc fraction of the S. asper could be a potential antioxidant in food additive, medicinal, and industry product.
A new alkyldithiocarbonate (xanthate), as sodium salts, C2H5OCS2Na, was synthesized by the reaction between CS2 with ethyl alcohol in the presence of NaOH. The new xanthate was characterized by 1H NMR, IR and elemental analysis. Then, the new synthesized compound was examined for functional study of cresolase activity of Mushroom Tyrosinase (MT) from a commercial source of Agricus bisporus in 10 mM phosphate buffer pH 6.8, at three temperatures of 10, 20 and 33℃ using UV spectrophotemetry. 4-[(4-methylphenyl)- azo]-phenol (MePAPh) was used as a synthetic substrate for the enzyme for cresolase reaction. The results show that ethyl xanthate can activate or inhibit the cresolase activity of mushroom tyrosinase depending to the concentration of ethyl xanthate. It was concluded that the enzyme has two distinct sites for ethyl xanthate. The first one is a high-affinity activation site and the other is a low-affinity inhibition site. Activation of the enzyme in the low concentration of ethyl xanthate arises from increasing the affinity of binding for the substrate as well as increasing the enzyme catalytic constant. The affinity of ligand binding in the activation site is decreased by increasing of the temperature, which is the opposite result for the inhibition site. Hence, the nature of the interaction of ethyl xanthate is different in two distinct sites. The binding process for cresolase inhibition is only entropy driven, meanwhile the binding process for cresolase activation is not only entropy driven but also enthalpy driven means that hydrophobic interaction is more important in the inhibition site.
Aldose reductase was purified to electrophoretic homogeneity from porcine liver. The purified enzyme was a monomer of 36 kDa. The enzyme was strongly inhibited by $Cu^{2+}\;and\;Mg^{2+}$ ions. Incubation of the enzyme with pyridoxal 5'-phosphate led to complete inhibition of enzymatic activity, suggesting that lysine residue is involved at or near the active site of the enzyme. The enzyme exhibited a broad substrate specificity. Furthermore, the enzyme was capable of decolorizing Alizarin, an anthraquinone dye.
In previous paper, we isolated the bacteria, Bacillus subtilis JM-3, with proteolytic and fibrinolytic activity for candidate microorganisms that have rapid fermenting and physiological functions from anchovy sauce. This study was carried out to search physiological functions of Bacillus subtilis JM-3, such as antimicrobial, antioxidative, antimutagenic, angiotensin-converting enzyme inhibition, and anticarcinogenic activity in vitro. The cell free culture of Bacillus subtilis JM-3 showed strong antibacterial activity against Listeria monocytogenes, antioxidative activity with 87% of inhibition rate against linoleic acid, 50% of antimutagenic activity against N-nitrosodimethylamine and N-nitrosomorpholine, and 88.9% of growth inhibition rate against SNU-1 cell line (stomach cancer cell of human). However, Bacillus subtilis JM-3 did not show angiotensin-converting enzyme inhibition activity.
The hydrolysates prepared with various enzyme digestion of Capsosiphon fulvescens were used to measure the inhibitory effects against angiotensin I converting enzyme (ACE). The commercially available enzymes such as Celluclast, Viscozyme, Lysing enzyme, Flavourzyme, Alcalase and Pectinex were used to digest C. fulvescens and produce hydrolysates. The maximum ACE inhibitory activity was observed using Alcalase hydrolysis (72.9%). The optimal conditions of Alcalase extraction were pH 8.0 and extraction time for 12 hr. The hydrolysates were fractionated using preparative-LC and anion-exchange chromatography on DEAE-cellulose and the fraction B and B-2 were isolated. The ACE inhibitory activity of fraction B-2 by anion-exchange chromatography was 82.6%. The molecular weight of fraction B-2 estimated using size exclusion chromatography was about 1 kDa. The monosaccharide composition of the fraction B-2 was determined to be mannose (1.1%), glucuronic acid (1.3%), galactose (1.3%) and glucose (96.3%).
A potentiometric flow injection biosensor for the analysis of anti-cholinesterases (anti-ChEs), based on inhibition of enzyme activity, was developed. The sensor system consists of a reactor with acetylcholinesterase (AChE) immobilized on controlled pore glass and a detector with an $H^{+}-selective$ PVC-based membrane electrode. The principle of the analysis is based on the fact that the degree of inhibition of AChE by an anti-ChE is dependent on the concentration of the anti-ChE in contact with AChE. The sensor system was optimized by changing systematically the operating parameters of the sensor to evaluate the effect of the changes on sensor response to ACh. The optimized biosensor was applied to the analysis of paraoxon, an organophosphorus pesticide. Treatment of the inhibited enzyme with pyridine-2-aldoxime fully restored the enzyme activity allowing repeated use of the sensor.
Kim, Nam-Doo;Lee, Youn-Ho;Han, Chang-Kyun;Ahn, Soon-Kil
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.33
no.7
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pp.2365-2368
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2012
The $11{\beta}$-hydroxysteroid dehydrogenase type 1 ($11{\beta}$-HSD1) enzyme is involved in modulation of glucocorticoid activity within target tissues. This enzyme may contribute to obesity and/or metabolic disease through its action in adipose or liver tissue. Inhibition of $11{\beta}$-HSD1 has major therapeutic potential for glucocorticoid-associated diseases, including obesity, diabetes (wound healing), and muscle atrophy. To develop such therapeutics, we performed a pharmacophore-based virtual screening (VS) for identification of novel $11{\beta}$-HSD1 inhibitors and found that the VS hit compounds show potent inhibition of $11{\beta}$-HSD1 enzyme activity. Further, we present a binding model for active compounds. The proposed pharmacophore may serve as a useful guideline for future design of new chemical entities as $11{\beta}$-HSD1-targeted antidiabetic agents.
The present experiments were carried out to investigate the active center of sodium and potassium ion activated adenosine triphosphatase. An ATPase, activated by sodium ion Plus potassium ion in the presence of magnesium ion, and inhibited by ouabain, has been obtained from rabbit red cell ghosts. The ATPase activity was measured by inorganie phosphate released from ATP. From this values of the measured inorganic phosphate, the activity of ATPase was calculated. The following results were observed. 1. The activity of $(Na^++K^+)-ATPase$ is inhibited by ouabain. This effect may not be due to an effect on sulfhydryl groups, amino groups, carboxyl groups, imidazole groups and hydroxyl groups. 2. The $(Na^++K^+)$-activated enzyme system is inhibited by p-chloromercuribenzoate and by d nitroflurobenzene, and this effect may be due to an effect on sulfhydryl groups. These results indicate that the sulfhydryl groups is attached to sodium-potassium dependent adenosine triphosphate, an aspect of the pump. 3. The $(Na^++K^+)-activated$ enzyme system is inhibited by maleic anhydride and this inhibition is reversed by lysine. This Seems to indicate that the active center of this enzyme is the amino groups. 4. The $(Na^++K^+)$-activated enzyme system is inhibited by iodoacetamide and this inhibition is reversed by the simultaneous present of cysteine and aspartic acid in the suspension medium. This result indicates that this enzyme contains sulfhydryl groups and carboxyl groups. 5. The $(Na^++K^+)-ATPase$ activity is accelerated by adrenaline and this effect is abolished by aspartic acid. This effect of aspartic acid indicate that carboxyl group might be involved in the hydrolysis of ATP by the enzyme system. On the hydrolysis of ATP by the enzyme system. On the basis of these experiments it f·as suggested that the active center of $(Na^++K^+)-activated$ ATPase contains sulfhydryl groups, amino groups and carboxyl groups.
It has been reported that clonidine is $\alpha_2$-adrenergic agonist, potnet new hypotensive drug in human with low dose. The change in blood pressure is implicated in the concentration, release, uptake and metabalism of catecholamine and activity of catecholamine synthesizing enzyme in specific brain areas. Thus the experiment was set up to investigate the effect on the enzyme activity of clonidine alone and that of clonidine pretreated with imipramine or tranylcypromine by measuring activity of the Dopa-forming enzyme, tyrosine hydroxylase (TH) and epinephrine forming enzyme, phenylethanolamine-N-methyl transferase (PNMT) in brain and adrenal gland. The TH activity in brainstem and substantia nigra is decreased by intraperitoneally administered clonidine 0.1mg/kg twice a day for 5 days, but increased in the rats pretreated with imipramine 10mg/kg intraperitoneally given 26 hrs and 5 hrs before decaptitation. However the TH activity in all regions of brain is increased in rats pretreated with tranylcypromine 10mg/kg intraperitoneally twice a day for 5 days. The effect of clonidine on TH activity is due to inhibition release of norepinephrine by activation of presynaptic $\alpha_2$-adrenoreceptor, axon terminal result in the decrease of TH activity in brain. The increasing of TH activity in brain results in attenuation of the role of clonidine by pretreated with imipramine or tranylcypromine in rats. The activity of PNMT was not significantly affected by clonidine, imipramine and tranylcypromine in adrenal gland.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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