This study was carried out to select the best cryoprotectant and to establish optimal concentration of the cryoprotectant in ultrarapid freezing of mouse 4-cell embryos and morulae, respectively. We investigated survival of ultrarapid frozen embryos according to various cryoprotectants such as glycerol, ethylene glycol, propylene glycol and dimethyl sulfoxide (DMSO). Suvival of the embryos frozen at different concentrations (3.0, 4.0 and 5.0 M) of indivisual cryoprotectant was also tested. Preimplantation developmental rate (96.3%, 83/86) of 4-cell mouse embryos treated with 4.0 M ethylene glycol after ultrarapid freezing and thawing was higher than those of other cryoprotectants (glycerol, propylene glycol and DMSO). In the ultrarapid freezing of mouse morulae, the highest developmental rate (98.8%, 89 /90) of the embryos to blastocysts was shown in the group of 5.0 M glycerol. Thus, these results demonstrate that 4.0 M ethylene glycol and 5.0 M glycerol are optimal for ultrarapid freezing of 4-cell mouse embryos and morulae, respectively.
Embryos formed in vivo were collected from 171 donors housed in Chung Cheong Buk-Do Institute of Livestock and Veterinary Research of the Chungbuk community during the years 2009~2012. We evaluated annual embryo collection, effect of follicle stimulating hormone (FSH), controlled internal drug release (CIDR) and prostaglandin (PG) administration to the donor for superovulation and controlling the estrus cycle, seasonal effects of embryo collection and compared the number of embryos recovered as per the collection days and pregnancy rate. In all, 1,243 embryos were collected from 118 donors with an average of $7.31{\pm}5.35$ embryos per donor, out of which 69.4% were transferable. Dosages of FSH required for inducing superovulation in various donors were compared. Average number of embryos collected from donors administered with 30 AU of FSH ($7.13{\pm}5.74$ per donor) was not significantly different from that of donors who were given an injection of 24 AU of FSH ($7.53{\pm}4.91$ per donor). However, the percentage of transferable embryos in the 30AU FSH-administered group (63.2 %, 449 of 711) was higher than that in the 24AU FSH-administered group (77.8%, 414 of 532). In the group of donors under a natural estrus cycle, the FSH dose administered did not influence the number of transferable embryos produced ($7.49{\pm}6.25$ per donor for 30 AU of FSH vs $7.49{\pm}4.92$ per donor for 24 AU of FSH). However, in donors administered with CIDR and PG for controlling the estrus cycle, the FSH dose affected the average number of transferable embryos collected ($4.25{\pm}2.87$ per donor for 30 AU of FSH vs $8.50{\pm}6.36$ per donor for 24 AU of FSH). We collected embryos from donors 6, 7 or 8 days after artificial insemination (AI). Results showed that the percentage of transferable embryos among those collected 8 days after AI was significantly higher than that among embryos collected 6 or 7 days after AI. Seasonal variations did not affect number of recovered embryos and pregnancy rates in natural estrus cycle and CIDR treatment groups (48.28% and 42.55%) but higher than pregnancy rate of frozen embryos (19.63%). These results indicated that administration of FSH beyond a threshold dose (at least 24 AU) has no beneficial effect on the production embryos and that collection of embryos 7~8 days after AI is optimal for embryo recovery. CIDR treatment induced superovulation in short term and had no influence on the natural estrus cycle. Finally, although good-quality embryos were transferred, freezing significantly reduced the pregnancy rates after transfer.
This experiments were carried out to investigate the viabilities and the pregnancy rate of frozen-thawed IVF bovine embryos in various media, cryoprotectants and age of embryos produced. Hanwoo oocyte were collected in size of 2~7mm follicles, matured for 20~22hrs at 38.5$^{\circ}C$ in 5% CO2 incubator and then in vitro fertilized with Hanwoo semen. Blastocysts or more developed embryos at Day 7, 8 and 9 were frozen in 1.5 or 1.8M ethylene glycol. Viability of frozen thawed IVF embryos were identified the reformation of blastocoele after thawing and culture for 24~48 hours at 38.5$^{\circ}C$ in 5% CO2 incubator. Production rate of Hanwoo IVF embryos in TCM 199 and CR1aa ws 21.3%(39/183) and 28.1%(41/146), respectively. The viability of frozen thawed IVF embryos was higher rate in 1.8M ethylene glycol and Day 7 embryos than that in 1.5M and Day 8.53 cows out of 100 Hanwoo receipients transfered IVF embryos were pregnant and twin production rate was 26.3%.
We investigated the microtubule dynamics, including the inheritance of donor centrosomes and the mitotic spindle assembly occurring during the first mitosis of somatic cell nuclear transfer (SCNT) embryos in pigs. SCNT embryos were fixed 15 min and 1 h after fusion in order to assess the inheritance pattern of the donor centrosome. The distribution and dynamic of the centrosome and microtubule during the first mitotic phase of SCNT embryos were also evaluated. The frequency of embryos evidencing $\gamma$-tubulin spots (centrosome) was 93.2% in the SCNT embryos 15 min after fusion. In the majority of the SCNT embryos (61.5%), however, no centrosome was observed 1 h after fusion. The frequency of the embryos with no or abnormal mitotic spindles 20 h after fusion was 19.6%. The $\gamma$-tubulin spots were detected near the nuclei of somatic cells regardless of cell cycle phase, whereas $\gamma$-tubulin spots in the SCNT embryos were observed only during the inter-anaphase transition. These results showed that the donor centrosome is inherited into the SCNT embryos, but failed to assemble the normal mitotic spindles during first mitotic phase in some SCNT embryos.
This study was carried out to investigate effective condition for producing somatic cell nuclear transfer (SCNT) embryos of Jeju native cattle. As donor cells for SCNT, ear skin cells from Jeju native cattle were used. In experiment 1, the effect of recipient oocyte sources on the development of Jeju native cattle SCNT embryos were examined. Fusion rate of recipient oocyte and donor cell was not different between the Hanwoo and Holstein recipient oocytes (86.0% vs 89.9%). The rate of embryos developing to the blastocyst stage was significantly (p<0.05) higher in Hanwoo recipient oocytes than in Holstein recipient ones (28.2% vs 14.7%). Blastocysts derived from Hanwoo recipient oocytes contained higher numbers of total cells than those derived from Holstein ones ($115.1{\pm}40.8$ vs $101.4{\pm}33.3$), although there were no significant difference. The mean proportion of apoptotic cells in blastocyst was not different between the sources of recipient oocytes. In experiment 2, the development of Jeju native cattle and Hanwoo SCNT embryos were compared. Hanwoo oocytes were used as the recipient oocytes. Fusion rate was not different between the Jeju native cattle and Hanwoo SCNT embryos (92.1% vs 92.9%). The blastocyst rate of SCNT embryos was significantly (p<0.05) lower in Jeju native cattle than in Hanwoo (16.9% vs 31.0%). Blastocysts derived from Jeju native cattle SCNT embryos contained smaller numbers of total cells than those derived from Hanwoo ones ($136.6{\pm}33.7$ vs $149.9{\pm}39.7$), but there were no significant difference. The mean proportion of apoptotic cells in blastocyst was not different between the Jeju native cattle and Hanwoo SCNT embryos. The present study demonstrated that Hanwoo recipient oocytes were more effective in supporting production of Jeju native cattle SCNT embryos, although Jeju native cattle SCNT embryos showed reduced developmental capacity when compared to Hanwoo SCNT embryos.
These experiments were carried out to examine the effect of rapid thawing (500$^{\circ}C$/min) on the survival of 8-cell mouse embryos cooled slowly (0.5-1$^{\circ}C$/min) to precooling temperatures between -10 and 070$^{\circ}C$ before direct transfer ofembryos to -196$^{\circ}C$, and to compare the survival of embroys thawed slowly (20$^{\circ}C$/min) and rapidly (500$^{\circ}C$/min) after in vitro culture. In addition, the sensitivity of 8-cell mouse embroys to the rate of addition and removal of cryoprotectant at room temperauture, and the effect of developing stages on the survival of embryos frozen-thawed slowly were investigated. The results obtained were summarized as follows: 1. Embryos were survived in rapid thawing (500$^{\circ}C$/min) only when slow cooling was terminated at relatively high subzero teperaure (-20 to -60$^{\circ}C$). The highest survival rate(77.0%) in in vitro culture of embryos thawed rapidly was obtaeined after transfer to -196$^{\circ}C$ from -40$^{\circ}C$. 2. For the survival of embryos in slow thawing (20$^{\circ}C$/min.), slow cooling to lower subzero temperature (-50$^{\circ}C$ and below) was required before transfer of embryos to -196$^{\circ}C$. These results indicate that embryos transferred to -196$^{\circ}C$ from high subzero temprature contain much interacellular ice to damage them during slow warming but to permit survival of embryos after rapid warming. 3. The Survival rate (72.7%) of 8-cell mouse embryos after rapid addition and removal of cryoprotectant, DMSO at room temperature was similar to that (83.9%) after slow addition and removal of cryoprotectant at same temperature. 4. The survival rates of 1-, 2-, 4- and 8-cell embryos frozen-thawed slowly were 26.7, 76.4, 70.0 and 83.9%, respectively.
The efficiency of nuclear transfer using donor embryos originated from ovum pickup(OPU) and activated recipient cytoplasts were examined for induction of twinning in Korean native cattle(KNC). After aspiration of follicle by OPU, regardless of the vacuum applied, we obtained same result in proportions of recovered cumulus-oocyte complex (COCs) with compact cumulus. Under electric stimulation(1.0kV/cm DC for $40{\mu}s$), most of activated oocytes proceed to anaphase II/telophase II within 3h(84.7%). In the treatment of oocyte activation, the preactivation which was performed before fusion had significant effect on the developmental rates to morula/blastocyst stage(9.4 vs 4.0%). In embryo transfer of nuclear transferred embryos, we obtained 2 twins from KNC recipients and 1 twin from a Holstein recipient. Our results showed that it is possible to obtain twins using nuclear transfer technique in KNC.
Quan, Yan Shi;Naruse, Kenji;Choi, Su-Min;Kim, Myung-Youn;Han, Rong-Xun;Park, Chang-Sik;Jin, Dong-Il
Reproductive and Developmental Biology
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제32권4호
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pp.249-253
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2008
Interspecies somatic cell nuclear transfer (iSCNT) is a valuable tool for studying the interactions between an oocyte and somatic nucleus. The object of this study was to investigate the developmental competence of in vitro-matured porcine oocytes after transfer of the somatic cell nuclei of 2 different species (goat and rabbit). Porcine cumulus oocytes were obtained from the follicles of ovaries and matured in TCM-199. The reconstructed embryos were electrically fused with 2 DC pulses of 1.1kV/cm for $30{\mu}s$ 0.3M mannitol medium. The activated cloned embryos were cultured in porcine zygote medium-3 (PZM-3), mSOF or RDH medium for 7 days. The blastocyst formation rate of the embryos reconstructed from goat or rabbit fetal fibroblasts was significantly lower than that of the embryos reconstructed from porcine fetal fibroblast cells. However, a significantly higher number of embryos reconstructed from goat or rabbit fetal fibroblasts cultured in mSOF or RDH, respectively, developed to the morular stage than those cultured in PZM-3. These results suggest that goat and bovine fetal fibroblasts were less efficacious than porcine-porcine cloned embryos and that culture condition could be an important factor in iSCNT. The lower developmental potential of goat-porcine and porcine-bovine cloned embryos may be due to incompatibility between the porcine oocyte cytoplasm and goat and bovine somatic nuclei.
D. B. Koo;Y. K. Kang;Park, Y. H.;Park, J. S.;Kim, H. N.;D. S. Son;Y. M. Han;Lee, K. K.
한국동물번식학회:학술대회논문집
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한국동물번식학회 2001년도 춘계학술발표대회
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pp.20-20
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2001
It has been reported that cloning cattle is inefficient. One of the problems was placental abnormality, finally resulting in fetal mortality after transfer of nuclear transfer (NT) bovine embryos. This study was focused on the allocations of embryonic cells to the inner cell mass (ICM) or to the trophectoderm(TE) in NT bovine blastocysts. Somatic cells were derived from a Day 45 fetus of gestation, individually transferred into enucleated oocytes and developed to the blastocyst stage in vitro. Differential staining was used to assess the qualify of blastocysts derived from NT, IVF and in vivo. Development rate of NT embryos to blastocysts (25.0%, 41/164) was similar to that of IVF embryos (28.7%, 49/171). The total cell number of NT blastocysts (101.3$\pm$45.9) was not different compared with that of IVF embryos (107.9$\pm$34.2, P>0.05), but was lower than in vivo embryos (122.5$\pm$21.6, P<0.05). Ratio of ICM/total cells was higher in NT embryos (51.6$\pm$ 18.6%) than in IVF and in vivo embryos (42.3$\pm$ 15.3% and 34.9$\pm$8.9%, respectively) (P<0.05). Most IVF (56.8%, 25/44) and in vivo blastocysts(80.8%, 21/26) was distributed in the proportion of ICM/total cells ranging from 20 to 40% group. However, most NT blastocysts was biased in the 40-60%(34.1%, 15/44) and >60% (31.8%, 14/44) groups. Our findings suggest that placental abnormalities or early fetal losses in the present cloning system may be due to aberrant allocation of NT embryos to the ICM cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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