Callus induction and embryogenesis were studied in three different genotypes of Acanthopanax senticosus, to develop a protocol for somatic embryogenesis and acclimatization. Young leaf, stem, node, petiole, peduncle, flower and root explants were collected from 3-year old trees of A. senticosus accessions (Korea, Russia and Japan). Callus was obtained from all cultured explants but showed the higher rate of callus formation in flower cultured. For the three A. senticosus accessions, callus was well formd on MS media containing 2mg/ l of 2,4-D and 2mg/ l of TDZ, 4mg/ l of 2,4-D and 1mg/ l of TDZ than other treatments. For three A. senticosus accessions, when callus transferred to MS medium with 2,4-D, embryogenic cell formed. For A. senticosus accessions Korea, embryogenic cells were obtained on callus induced from petiole, stem, node and root explants, and induction rate was lower than 3%. 200mg of embryogenic callus was transferred to MS free liquid medium and somatic embryos of heart stage were obtained after 45days of culture. When somatic embryo of germination stage were transferred to solid medium, most of the embryos were regenerated into plantlets on 1/4 MS medium. Normal plants with both shoots and roots were transferred to greenhouse soil and were successfully acclimatized.
In an effort to optimize tissue culture conditions for genetic transformation of orchardgrass (Dactylis glomerata L.), an efficient and high-frequency plant regeneration system from seed-derived calli was established. Embryogenic calli induced on MS medium containing 3mg/L 2,4-D and 0.1mg/L BA had significantly improved regeneration ability. Plant regeneration rate was 92% when embryogenic calli were cultured on N6 medium supplemented with 1mg/L 2,4-D and 3mg/L BA. Among three kinds of medium, MS and N6 medium were optimal for embryogenic callus induction and plant regeneration, respectively. Ho difference in callus induction frequency was observed among four cultivars of orchardgrass, however, "Roughrider" cultivar showed higher regenerability with the frequency of 61%. Addition of maltose to the regeneration medium as a carbon source dramatically increased regeneration frequency up to 69%. A short tissue culture period and high-frequency regeneration system would be beneficial for molecular breeding of orchardgrass through genetic transformation.
This study was conducted to investigate the possibility of callus induction and plant regeneration from immature inflorescence, stem and petiole of A. koreana MAX. which is worth enough to be used as food and medicine. The callus induction and its proliferation was best when immature inflorescence segments were placed on MS medium supplemented with 2, 4-D 2mg / l. The white and compact embryogenic callus on the surface of dark yellow and soft callus which was induced from immature inflorescence segments came into being only on MS medium with 2, 4-D 1mg /l and 2mg /l, but didn't come into being on the other ones. The shoot came into being effectively from callus derived from immature inflorescence on MS medium mixed 2, 4-D 0. 1mg /l with Kinetin 1mg /l, and 2, 4-D 0.5mg /1 with Kinetin 2mg /l. Immature inflorescence was most appropriate material for callus induction and plant regeneration.
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.27
no.4
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pp.235-240
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2007
Optimum tissue culture conditions for an efficient induction of embryogenic callus from mature seeds of perennial ryegrass (Lolium perenne L.) and regeneration of plants from callus tissues were investigated. MS medium containing 3 mg/L 2,4-D and 0.1 mg/L BA was optimal for embryogenic callus induction from mature seeds. The highest plant regeneration frequency (58.3%) was observed when the embryogenic callus tissues were cultured on N6 medium supplemented with 1 mg/L 2,4-D and 3 mg/L BA. Regenerated plants were grown normally when shoots transplanted to the soil. A short tissue culture period and high-frequency regeneration system would be helpful for molecular breeding of perennial ryegrass through Agrobacterium-mediated genetic transformation.
We describe culture conditions for a high-efficiency in vitro regeneration system of Papaver nudicaule through somatic embryogenesis and secondary somatic embryogenesis. The embryogenic callus induction rate was highest when petiole explants were cultured on Murashige and Skoog (MS) medium containing 1.0 mg $1^{-1}$${\alpha}$-naphthaleneacetic acid (NAA) and 0.1 mg $1^{-1}$ 6-benzyladenine (BA) (36.7%). When transferred to plant growth regulator (PGR)-free medium, 430 somatic embryos formed asynchronously from 90 mg of embryogenic callus in each 100-ml flask. Early-stage somatic embryos were transferred to MS medium containing 1.0 mg $1^{-1}$ BA and 1.0 mg $1^{-1}$ NAA to germinate at high frequency (97.6%). One-third-strength MS medium with 1.0% sucrose and 1.0 mg $1^{-1}$$GA_3$ had the highest frequency of plantlet conversion from somatic embryos (91.2%). Over 90% of regenerated plantlets were successfully acclimated in the greenhouse. Secondary somatic embryos were frequently induced directly when the excised hypocotyls of the primary somatic embryos were cultured on MS medium without PGRs. Sucrose concentration significantly affected the induction of secondary embryos. The highest induction rate (89.5) and number of secondary somatic embryos per explant (9.3) were obtained by 1% sucrose. Most secondary embryos (87.2-94.3%) developed into the cotyledonary stage on induction medium. All cotyledonary secondary embryos were converted into plantlets both in liquid and on semisolid 1/3-strength MS medium with 1.0% sucrose.
Somatic embryogenesis is as an excellent technology for potential use in plant mass production, germplasm conservation, or genetic engineering. We examined the effect of cold storage using 3 embryogenic callus lines with different levels of embryogenesis competence derived from immature zygotic embryo cultures of Kalopanax setemlobus. Somatic embryo induction, germination and plant conversion were evaluated after 1, 3 and 6 months storage at $4^{\circ}C$ in the dark. Most cold-stored embryogenic calli formed somatic embryos normally even after 6 months; however, the induction rate was gradually decreased by increasing the storage period. The most competent line tended to show a slight decline in somatic embryo induction rate, as compared with other lines after cold storage. In general, cold storage resulted in reduced somatic embryo germination and plant regeneration, although 93% somatic embryo germination and 91% plant conversion were achieved regardless of the storage period. Cold storage led to cell browning and degradation. Additionally, the cell structures were confirmed by the aceto-carmine and evans blue dye evaluation. Collectively, our results showed that embryogenic callus of K. septemlobus could be preserved at $4^{\circ}C$ without subculture for 6 months, and suggested the need for storage of relatively more competent embryogenic calli lines to support somatic embryo induction.
In order to optimize tissue culture conditions for genetic transformation of orchardgrass (Dactylis glomerata L.), the effects of culture medium supplements on tissue culture responses were investigated with mature seeds of a cultivar, 'Roughrider', as explant tissues. The optimal concentration of 2,4-D for the induction of embryogenic callus from mature seeds was 3 mg/L. Plant regeneration frequency was 36.3% when embryogenic calli were cultured on the regeneration medium supplemented with 1mg/L 2,4-D and 3mg/L BA. Addition of 1 g/L casein hydrolysate and 300 mg/L L-proline improved frequencies of embryogenic callus induction and plant regeneration up to 57.3 and 60.7%, respectively. Supplementation of the media with 10 mga $\textrm{AgNO}_3$ and 40 mg/L cysteine enhanced frequencies of callus induction and plant regeneration. Efficient regeneration system established in this study will be useful for molecular breeding of orchardgrass through genetic transformation.
This study was carried out to investigate the appropriate medium and constitutionof growth regulators for somatic embryogenesis for development of rapid mass propagation system via somatic embrygenesis in Rehmennia glutinosa. Embryogenic callus formation from leaf explant was more effective when 4mg / l BA with 0.5mg / l NAA than that of treated with only auxins or cytokinins. LS medium was suitable for embryogenic callus formation. LS medium with 4mg / l BA with 0.5mg / l NAA was effective for the maintenance and proliferation of embryogenic callus. In suspension culture, addition of 1mg / l BA to LS medium was proper for somatic embryogenesis. The highest rate of shoot developement form cotyledon stage embryo was obtained in 1/2 LS medium and plantlet survived by 75% after transplanted to the soil. after 4 weeks.
The halophyte Leymus chinensis (Trin.) is a perennial rhizome grass (tribe Gramineae) that is widely distributed throughout China, Mongolia and Siberia. This study was conducted to investigate an optimal condition for plant regeneration from mature seeds, leaf base segments, and root segments in L. chinensis. Plant growth regulators affecting embryogenic callus induction and plant regeneration were investigated by four-factor-three-level [L9 (34)] orthogonal test in this study. The effects of explants types (mature seeds, leaf base segments and root segments), callus types, medium types were examined in this study. Wild type (WT) and Jisheng No. 1 plants (JS) were used for primary callus induction. A clear explants difference was seen during callus induction; mature seeds were considered as the preferred explants; and the highest frequency of callus induction was obtained in Medium 6 using mature seeds as explants in WT. Plant regeneration ability was evaluated by frequencies of green callus forming, shooting, rooting, and shooting with roots. Effect of α-naphthalene acetic acid (NAA) on shoot regeneration was remarkable with the highest frequency of 70.8% in WT after 2-month culture. The medium with 0.2- 0.5 mg/L NAA was found to have the highest shoot induction. All regenerated shoots were successfully rooted when transferred on half-strength Murashige and Skoog (MS) basal medium. The acclimatized plantlets were grown to mature with flowering and seeds setting in green house conditions.
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.29
no.1
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pp.1-6
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2009
In order to optimize tissue culture conditions for genetic transformation of zoysiagrass (Zoysia japonica Stued.), the effect of plant growth regulators and culture medium supplements on embryogenic callus induction from mature seeds of a cultivar 'Zenith' were investigated. The optimal concentration and treatment period of NaOCl is 30% (v/v) for 60 minutes. Cultivation of mature seed on the callus Induction medium containing 3 mg/L 2,4-D and 3 mg/L dicamba showed 17.5% of embryogenic callus formation frequency. Supplementation of 1 g/L casein hydrolysate and 500 mg/L L-proline improved frequency of embryogenic callus induction. Audition of the medium with 5 mg/L $AgNO_3$ and 20 mg/L cysteine enhanced frequencies of embryogenic callus induction. Efficient callus induction system established in this study will be useful for molecular breeding of Boysiagrass through genetic transformation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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