Choi Cheol Young;Chang Young Jin;Takemura Akihiro;Takano Kazunori
Journal of Aquaculture
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v.9
no.1
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pp.83-92
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1996
This study was conducted to compare the immunochemical properties of female-specific serum proteins (vitellogenin, VTG) and egg yolk proteins in female fusilier, Caesio diagramma. VTG of fusilier was identified and characterized by using immunochemical analysis. Two types of VTG (VTG1 and VTG2) reacted clearly with antiserum against egg proteins, were confirmed in the serum of mature female. The results of sephacryl S-300 showed that the molecular weights of VTG1 and VTG2 were 560,000 and 410,000, respectively. Yolk proteins, E2 and E3, were isolated from egg extracts, and molecular weights of them were estimated 410,000 and 170,000, respectively. The treatment of $17\beta$-estradiol ($E_2$) to males has induced the synthesis of VTG of which immunological characteristics seems to be similar to the yolk proteins. The results suggest that VTG can be synthesized in the liver by the action of $E_2$ stimulation, and incorporated into the oocytes through the blood circulation. The level of serum $E_2$ was moderately high throughout the spawning period of June. The level of serum VTG was also sustained at high in May and June. The concentration changes of serum $E_2$ and VTG were corelated to the ovarian development in female fusilier. The results indicated that $E_2$ may have some important roles for the vitellogenesis in female fusilier. Also) the VTG can be a precursor protein of yolk not only because it could be synthesized in the liver then incorporated into the oocytes but also because an egg yolk protein had the similiar molecular weights and antigenecity with VTG.
This study aimed to develop a species identification method for the egg and fry of the three Korean bitterling fishes (Pisces: Acheilognathinae), including Acheilognathus signifer, Acheilognathus yamatsutae and Rhodeus uyekii based on the PCR-based Restriction Fragment Length Polymorphism (RFLP) markers. We conducted a field survey on the Deokchicheon River from the North Han River basin, where the three Acheilognathinae species co-occur, and also analyzed the existing sequence dataset available from the GenBank. We found coexistence of the three species at the study site. The egg and fry were obtained from the host mussels (Unio douglasiae sinuolatus) by hand from May to June 2015 and in May 2017. To develop PCR-based RFLP markers for species identification of the three Acheilognathinae fish species, restriction enzymes pinpointing species-specific single nucleotide variation (SNV) sites in mitochondrial DNA COI (cytochrome oxidase I) and cyt b (cytochrome b) genes were determined. Genomic DNA was extracted from the egg and fry and RFLP experiments were carried out using restriction enzymes Apal I, Stu I and EcoR V for A. signifer, A. yamatsutae and R. uyekii, respectively. Consequently, unambiguous discrimination of the three species was possible, as could be seen in DNA band patterns from gel electrophoresis. Our developed PCR-based RFLP markers will be useful for the determination of the three species for the young and would assist in studying the spawning patterns and reproductive ecology of Acheilognathinae fishes. Furthermore, we believe the obtained information will be of importance for future maintenance, management and conservation of these natural and endangered species.
This study was investigated the changes of gel properties about pH, color and water holding capacity at various hydration time and temperature of food-grade additives (BPP: bovine plasma protein, DEW: dried egg white, SPI: soy protein isolate). The changes of rheological properties were checked about hydration time and temperature. Hydration time and temperature affected pH value, hydration decreased pH of SPI and DEW. The BPP was not influenced at hydration time and temperature. Some Hydration condition increased jelly strength of food-grade additive, but SPI did not form a gel at all hydration condition. Hydration increased lightness of food-protein.
Lysozyme in egg white functions as bacteriolysis agent and ovalbumin plays a role as antigen in immune system. Egg white analysis methods usually include electrophoresis, gel permeation chromatography and reversed-phase HPLC(RP-HPLC). Among them, RP-HPLC was selected for rapid analysis and C18 column(Agilent, USA) was used as HPLC column. Optimum conditions were searched by changing mobile phase and temperature. Capacity factor and resolution were calculated and compared for various elution conditions. In the isocratic elution, mobile phase volume ratio was changed from 30/70/0.1 to 60/40/0.1(Acetonitrile(ACN)/Distilled water(DW)/Trifluoroacetic acid(TFA)). ACN composition was increased by 10% and temperature was set as $20^{\circ}C$. In the gradient elution, ACN/DW ratio was changed from 10/90 to 60/40 during 20 minute and temperature was varied as 20, 30 and $40^{\circ}C$. In the isocratic elution, three peaks were separated at 50/50/0.1. Lysozyme and ovalbumin were confirmed as first and third peak in three peaks respectively. In the gradient elution, four peaks were separated at $30^{\circ}C$. Lysozyme and ovalbumin were confirmed as first peak and third peak in four peaks respectively.
Proceedings of the Korean Society of Sericultural Science Conference
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2003.10a
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pp.95-96
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2003
We investigated the proteins that are associated with initiation, maintenance, and termination of diapause in silkworm eggs by means of 2D-gel electrophoresis. 1. Materials : Bombyx mori: unfertilized eggs, diapause eggs, non-diapause eggs, cold-treated egges. 2. Methods: isoelectric focusing, SDS-PAGE, silver staining. (omitted)
Halotolerant protease produced by Halomonas marisflava KCCM 10457 was partially purified through ammonium sulfate precipitation and Sephacryl S-200HR gel permeation chromatography. Optimal pH and temperature of protease were 11.0 and $45^{\circ}C$, respectively. Enzyme activity was inhibited by $Cu^{2+}$, $Hg^{2+}$, $Fe^{2+}$, and $Fe^{3+}$, and selectively inhibited by p-chloromercuribenzoic acid (PCMB), suggesting this enzyme is cysteine protease. The enzyme is halotolerant, because it retained 77% of original activity in presence of 3.33 M NaCl. The protease showed broad substrate specificity to various natural proteins; BSA, casein, egg albumin, gelatin, and hemoglobin.
In this study, food protein hydrolysates were prepared from six types of food protein: purified meat protein, whole egg protein, casein, isolated soy protein, concentrated rice protein, and gluten. Food proteins were hydrolyzed with pepsin and ethanol (80%)-soluble fractions of pepsin hydrolysates were employed for analysis. The products were colorless and odorless powders with low fat content and good solubility. The MW (molecular weight) of the protein hydrolysates was confirmed to be $200{\sim}1,800$ via gel filtration. Free amino acid contents accounted for less than 5% of the samples. The results of our amino acid analysis revealed that all food protein hydrolysates preserved their original amino acid compositions and nutritional values of their source proteins with highly pure oligopeptide mixtures. These results show that the food protein hydrolysates prepared in these investigations should prove excellent dietary nitrogen sources for a variety of applications.
In order to characterize the permeability of small unilamellar vesicles (SUV), efflux of 6-carboxyfluorescein (6-CF) from the vesicles was monitored spectrophotofluorometrically. Since the entrapped highly quenched 6-CF (200 mM) became fluorescent upon release from the vesicles, the 6-CF could be used as an efflux probe. SUV containing entrapped 6-CF was prepared from egg phosphatidylcholine and separated by gel filtration on Sepharose 4B. Observed change of relative fluorescent intensity with time was sigmoidal. From this curve, the parameter of permeability was determined either by half-time or a released amount per unit time from the initial slope. Half-time of efflux of prepared SUV having 302 ng phospholipid/ml in 10 mM Tris-HCl buffer pH 7.4 was 21.0 min at $37{\circ}C$. Various factors which could affect the half-time were examined including temperature, pH, salt, and vesicle concentration. In particular the effect of vesicle concentration on the efflux revealed that the permeability can be a function of the concentration.
Kim, Yesol;Shukla, Shruti;Ahmed, Maruf;Son, Seokmin;Kim, Myunghee;Oh, Sejong
Food Science of Animal Resources
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v.32
no.6
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pp.706-712
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2012
The present study was aimed to produce a chicken polyclonal antibody against Cronobacter muytjensii and to develop an immunoassay for its detection. Purification of anti-C. muytjensii IgY from egg yolk was accomplished using various methods such as water dilution and salt precipitation. As a result, sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis produced two bands around 30 and 66 kDa, corresponding to a light and a heavy chain, respectively. Indirect competitive enzyme-linked immunosorbent assay (IC-ELISA) was performed to determine the effectiveness of the chicken IgY against C. muytjensii. The optimum conditions for detecting C. muytjensii by indirect ELISA and checkerboard titration of the antigen revealed an optimum average absorbance at the concentration of 18 ${\mu}g/mL$, having ca. $10^8$ coated cells per well. The anti-C. muytjensii IgY antibody had high specificity for C. muytjensii and low cross-reactivity with other tested pathogens. In this assay, no cross-reactivity was observed with the other genera of pathogenic bacteria including Escherichia coli O157:H7, Salmonella Typhimurium, Staphylococcus aureus, Bacillus cereus, Enterobacter aerogenes, Salmonella Enteritidis and Listeria monocytogenes. In addition, detection of C. muytjensii in infant formula powder showed a low matrix effect on the detection curve of IC-ELISA for C. muytjensii, with similar detection limit of $10^5$ CFU/mL as shown in standard curve. These findings demonstrate that the developed method is able to detect C. muytjensii in infant formula powder. Due to the stable antibody supply without sacrificing animals, this IgY can have wide applications for the rapid and accurate detection of C. muytjensii in dairy foods samples.
Lysozyme amounts to 0.3% in egg white and functions as an agent of cell lysis and activator of tissue reconstruction. Ion exchange chromatography is the most useful method of separation among affinity chromatography, ion exchange chromatography, and ultra-filtration. The aim of present study is to find the optimum pH and temperature for the separation of lysozyme in egg white within cation exchange gel filled glass column. And we compared results of experiments with those of simulations. Phosphate buffer was used, and pH and temperature were varied as 5~7 and $25{\sim}40^{\circ}C$ respectively. RP-HPLC was the tool for the retention time identification and quantitative analysis of lysozyme. OriginPro 8 measured the peak area of lysozyme chromatogram and quantified the eluted lysozyme. Largest amount of lysozyme was separated under the conditions of pH 5 and T $25^{\circ}C$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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