Ran-binding protein family member, RanBP9 has been reported in various basic cellular mechanisms and neuropathological conditions including schizophrenia. Previous studies have reported that RanBP9 is highly expressed in the mammalian brain and retina; however, the role of RanBP9 in retinal development is largely unknown. Here, we present the novel and regulatory roles of RanBP9 in retinal development of a vertebrate animal model, zebrafish. Zebrafish embryos exhibited abundant expression of ranbp9 in developing brain tissues as well as in the developing retina. Yeast two-hybrid screening demonstrated the interaction of RanBP9 with Mind bomb, a component of Notch signaling involved in both neurogenesis and neural disease autism. The interaction is further substantiated by co-localization studies in cultured cells. Knockdown of ranbp9 resulted in retinal dysplasia with defective proliferation of retinal cells, downregulation of neuronal differentiation marker huC, elevation of neural proliferation marker her4, and alteration of cell cycle marker p57kip2. Expression of the $M{\ddot{u}}ller$ glial cell marker glutamine synthase was also affected in knockdown morphants. Our results suggest that Mind bomb-binding partner RanBP9 plays a role during retinal cell development of zebrafish embryogenesis.
Several lines of evidence suggest that endoplasmic reticulum (ER) stress plays a critical role in the pathogenesis of many neurodegenerative diseases such as Alzheimer's disease, Parkinson's disease, and amyotrophic lateral sclerosis. Protein tyrosine phosphatase 1B (PTP1B) is known to regulate the ER stress signaling pathway, but its role in neuronal systems in terms of ER stress remains largely unknown. Here, we showed that rotenone-induced toxicity in human neuroblastoma cell lines and mouse primary cortical neurons was ameliorated by PTP1B inhibition. Moreover, the increase in the level of ER stress markers ($eIF2{\alpha}$ phosphorylation and PERK phosphorylation) induced by rotenone treatment was obviously suppressed by concomitant PTP1B inhibition. However, the rotenone-induced production of reactive oxygen species (ROS) was not affected by PTP1B inhibition, suggesting that the neuroprotective effect of the PTP1B inhibitor is not associated with ROS production. Moreover, we found that MG132-induced toxicity involving proteasome inhibition was also ameliorated by PTP1B inhibition in a human neuroblastoma cell line and mouse primary cortical neurons. Consistently, downregulation of the PTP1B homologue gene in Drosophila mitigated rotenone- and MG132-induced toxicity. Taken together, these findings indicate that PTP1B inhibition may represent a novel therapeutic approach for ER stress-mediated neurodegenerative diseases.
Park, Su Bin;Kim, Ha Na;Park, Gwang Hun;Son, Ho-Jun;Eo, Hyun Ji;Song, Jeong Ho;Song, Hun Min;Park, Ji Ae;Jeong, Jin Boo
Korean Journal of Plant Resources
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v.31
no.3
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pp.218-227
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2018
In this study, we investigated the effect of the extracts from Vaccinium oldhamii on cell proliferation and the regulatory mechanisms of cyclin D1 protein level in human cancer cells. The branch extracts from Vaccinium oldhamii (VOB) showed higher inhibitor effect against the cell growth than leave extracts (VOL) and fruit extracts (VOF) in human colorectal cancer, breast cancer, prostate cancer, non-small lung cancer, pancreatic cancer and liver cancer cells. In addition, VOB decreased cyclin D1 level at both protein and mRNA level. MG132 treatment attenuated VOB-mediated cyclin D1 downregulation. A point mutation of threonine-286 to alanine attenuated cyclin D1 degradation by VOB. In addition, the inhibition of nuclear export by leptomycin B (LMB) attenuated cyclin D1 degradation by VOB. But, the treatment of PD98059 (ERK1/2 inhibitor), SB203580 (p38 inhibitor), SP600125 (JNK inhibitor), LiCl ($GSK3{\beta}$ inhibitor), LY294002 (PI3K inhibitor) or BAY 11-7082 ($I{\kappa}K$ inhibitor) did not affect VOB-induced cyclin D1 degradation. In conclusion, VOB induced cyclin D1 degradation through redistribution of cyclin D1 from the nucleus to cytoplasm via T286 phosphorylation of cyclin D1, which resulted in the inhibition of cancer cell proliferation.
Chios gum mastic (CGM) is produced from Pistiacia lentiscus L var chia, which grows only on Chios Island in Greece. CGM is a kind of resin extracted from the stem and leaves, has been used for many centuries in many Mediterranean countries as a dietary supplement and folk medicine for stomach and duodenal ulcers. CGM is known to induce cell cycle arrest and apoptosis in some cancer cells. This study was undertaken to investigate the alteration of the cell cycle and induction of apoptosis following CGM treatment of HL-60 cells. The viability of the HL-60 cells was assessed using the MTT assay. Hoechst staining and DNA electrophoresis were employed to detect HL-60 cells undergoing apoptosis. Western blotting, immunocytochemistry, confocal microscopy, FACScan flow cytometry, MMP activity and proteasome activity analyses were also employed. CGM treatment of HL-60 cells was found to result in a dose- and time-dependent decrease in cell viability and apoptotic cell death. Tested HL-60 cells showed a variety of apoptotic manifestations and induced the downregulation of G1 cell cycle-related proteins. Taken collectively, our present findings demonstrate that CGM strongly induces G1 cell cycle arrest via the modulation of cell cycle-related proteins, and also apoptosis via proteasome, mitochondrial and caspase cascades in HL-60 cells. Hence, we provide evidence that a natural product, CGM could be considered as a novel therapeutic for human leukemia.
Cell behavior of the transformed cells is known to affect by interaction with extracellular matrix (ECM) proteins and integrin. To investigate the alterations of both integrin expression and cell-matrix interaction during neoplastic conversion of human oral kerationcytes, we studied expression levels of integrin subunits by flow cytometry and cellular responses to the ECM proteins in normal human oral keratinocytes (NHOKs), HPV-immortalized HOK-16B line, and three oral cancer cell lines established from HOK-16B line, CTHOK-16B-BaP, CTHOK-16B-DMBA, and CTHOK-16B-Dexa lines. The expression levels of ${\alpha}\;and\;{\beta}$ integrin subunits were shown decreased tendency in human oral keratinocytes undergoing immortalization and tumorigenic transformation except CTHOK-16B-DMBA line tested. Although ${\alpha}v{\beta}6$ integrin is known to be highly expressed in squamous cell carcinomas, and the altered integrin expression is suspected to be associated with cellular carcinogenesis, ${\alpha}v$ integrin subunit and ${\alpha}v{\beta}6$ integrin did not express in oral cancer cell lines tested. Cell behavior to the ECM proteins in HOK-16B line was generally similar to that of exponentially proliferating NHOKs. The adhesion activity profiles of type I collagen were very similar to that of its laminin counterparts, but fibronectin showed minimal adhesion activity under our conditions compared to the BSA control. The ability of the CTHOK-16B-BaP line to spread upon type I collagen and laminin markedly decreased, but migration was notably increased on type I collagen. In contrast, CTHOK-16B-DMBA and CTHOK-16B-Dexa lines spread less but migrated more upon type I collagen than immortalized HOK-16B line. These data indicate that downregulation of integrin subunits causes the changes of cellular responses to the ECM proteins during neoplastic conversion of human oral keratinocytes, and that cellular responses to the ECM proteins in oral cancer cell lines established by exposing different carcinogens are variable according to chemical carcinogens treatment.
Background: Healthy individuals who develop nontuberculous mycobacteria (NTM) lung disease are likely to have specific susceptibility factors which can lead to a NTM infection. The aim of the present study was to investigate the mechanism underlying innate immune responses, including the role of mitogen-activated protein kinase (MAPK), in Mycobacterium abscessus lung disease. Methods: Extracellular signal-regulated kinase (ERK1/2) and p38 MAPK expression in monocytes from peripheral blood mononuclear cells were measured by Western blot analysis after stimulation by Mycobacterium avium in five patients with M. abscessus lung disease and seven healthy controls. A M. avium-induced cytokine assay was performed after inhibition of ERK1/2 and p38 MAPK pathways. Results: Mycobacterium avium induced p38 and ERK1/2 expression in monocytes from healthy controls and subsequently upregulated tumor necrosis factor (TNF)-${\alpha}$, interleukin (IL)-6, and IL-10 production. In monocytes from patients with M. abscessus lung disease, however, induction of p38 and ERK1/2 expression, and the production of TNF-${\alpha}$, IL-6, and IL-10 were significantly lower. Conclusion: Decreased activity of MAPK and cytokine secretion in monocytes from patients with M. abscessus lung disease may provide an explanation regarding host susceptibility to these uncommon infections.
The effect of carbon dioxide on yeast growth was investigated during the cultivation of pH 5.0 and pH 6.8. by replacing the nitrogen part with carbon dioxide under aerobic conditions. The values of the specific growth rate under pH 5.0 and pH 6.8 conditions became 64.0% and 46.9%, respectively, compared to those before the change in gas composition. This suggests that the effect of carton dioxide was greater pronounced in pH 6.8 than in pH 5.0. The genome-wide transcriptional response to elevated carbon dioxide was examined using a DNA microarray. As for upregulated genes, it was noteworthy that 3 genes were induced upon entry into a stationary phase and 6 genes were involved in stress response. Of 53 downregulated genes, 22 genes were involved in the ribosomal biogenesis and assembly and 5 genes were involved in the lipid metabolism. These facts suggest that carbon dioxide could bring the cell conditions partially to a stationary phase. The ALD6 gene encoding for cytosolic acetaldehyde dehydrogenase was downregulated, which would lead to a lack of cell components for the growth. The downregulation of ALD6 was greater in pH 6.8 than in pH 5.0. consistent with physiological response. This suggests that it might be the most effective factor for growth inhibition.
MED19 is a member of the Mediator that plays a key role in the activation and repression of signal transduction or the regulation of transcription in carcinomas. To tested the functional role of MED19 in human prostate cancer, we downregulated MED19 expression in prostate cancer cells (PC-3 and DU145) by lentivirus-mediated short hairpin (shRNA), and analyzed the effect of inhibition of MED19 on prostate cancer cell proliferation and tumorigenesis. The in vitro prostate cancer cell proliferation, colony formation, and in vivo tumor growth in nude mice xenografts was significantly reduced after the downregulation of MED19. Knockdown of MED19 caused S-phase arrest and induced apoptosis via modulation of Bid and Caspase 7. It was suggested that MED19 serves as a novel proliferation regulator that promotes growth of prostate cancer cells.
As a $\beta_2$-adrenergic agonist, clenbuterol decreases body fat, but the molecular mechanism underlying this process is unclear. In the present study, we treated 293T and L-02 cells with clenbuterol and found that clenbuterol downregulates SREBP-1c expression and upregulates CREB1 expression. Considering SREBP-1c has the function of regulating the transcription of several lipogenic enzymes, we considered that the downregulation of SREBP-1c is responsible for body fat reduction by clenbuterol. Many previous studies have found that clenbuterol markedly increases intracellular cAMP levels, therefore, we also investigated whether CREB1 is involved in this process. The data from our experiments indicate that CREB1 overexpression inhibits SREBP-1c transcription, and that this action is antagonized by CREB2, a competitive inhibitor of CREB1. Furthermore, since PPARs are able to repress SREBP-1c transcription, we investigated whether clenbuterol and CREB1 function via a pathway involving PPAR activation. However, our results showed that clenbuterol or CREB1 overexpression suppressed PPARs transcription in 293T and L-02 cells, which suggested that they impair SREBP-1c expression in other ways.
Kim, Hyun-Kyung;Kang, Mi Ae;Kim, Mi-Sook;Shin, Young-Joo;Chi, Sung-Gil;Jeong, Jae-Hoon
Molecules and Cells
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v.41
no.4
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pp.362-372
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2018
High mobility group box 2 (HMGB2) is an abundant, chromatin-associated, non-histone protein involved in transcription, chromatin remodeling, and recombination. Recently, the HMGB2 gene was found to be significantly downregulated during senescence and shown to regulate the expression of senescent-associated secretory proteins. Here, we demonstrate that HMGB2 transcription is repressed by p21 during radiation-induced senescence through the ATM-p53-p21 DNA damage signaling cascade. The loss of p21 abolished the downregulation of HMGB2 caused by ionizing radiation, and the conditional induction of p21 was sufficient to repress the transcription of HMGB2. We also showed that the p21 protein binds to the HMGB2 promoter region, leading to sequestration of RNA polymerase and transcription factors E2F1, Sp1, and p300. In contrast, NF-Y, a CCAAT box-binding protein complex, is required for the expression of HMGB2, but NF-Y binding to the HMGB2 promoter was unaffected by either radiation or p21 induction. A proximity ligation assay results confirmed that the chromosome binding of E2F1 and Sp1 was inhibited by p21 induction. As HMGB2 have been shown to regulate premature senescence by IR, targeting the p21-mediated repression of HMGB2 could be a strategy to overcome the detrimental effects of radiation-induced senescence.
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