• Reproductive and Developmental Biology
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• 제36권2호
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• pp.115-120
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• 2012

This study was conducted to examine the optimal concentration and treatment time of antioxidants for inhibition of the ROS generation in bovine somatic cell nuclear transfer (SCNT) embryos. Bovine oocytes were activated parthenogenetically, during which oocytes were treated with various antioxidants to determine the optimal concentrations and kind of antioxidants. Determined antioxidants were applied to oocytes during in vitro maturation (IVM) and/or SCNT procedures. Finally, antioxidant-treated SCNT embryos were compared with in vitro fertilized (IVF) embryos. $H_2O_2$ levels were analyzed in embryos at 20 h of activation, fusion or insemination by staining of embryos in $10{\mu}M$ 2'7'-dichlorodihydrofluorescein diacetate (H2DCFDA) dye, followed by fluorescence microscopy. $H_2O_2$ levels of parthenogenetic embryos were significantly lower in $25{\mu}M$ ${\beta}$-mercaptoethanol (${\beta}$-ME), $50{\mu}M$ L-ascorbic acid (Vit. C), and $50{\mu}M$ L-glutathione (GSH) treatment groups than each control group ($24.0{\pm}1.5$ vs $39.0{\pm}1.1$, $29.7{\pm}1.0$ vs $37.0{\pm}1.2$, and $32.9{\pm}0.8$ vs $36.3{\pm}0.8$ pixels/embryo, p<0.05). There were no differences among above concentration of antioxidants in direct comparison ($33.6{\pm}0.9{\sim}35.2{\pm}1.1$ pixels/embryo). Thus, an antioxidant of $50{\mu}M$ Vit. C was selected for SCNT. $H_2O_2$ levels of bovine SCNT embryos were significantly lower in embryos treated with Vit. C during only SCNT procedure ($26.4{\pm}1.1$ pixels/embryo, p<0.05) than the treatment group during IVM ($29.9{\pm}1.1$ pixels/embryo) and non-treated control ($34.3{\pm}1.0$ pixels/embryo). Moreover, $H_2O_2$ level of SCNT embryos treated with Vit. C during SCNT procedure was similar to that of IVF embryos. These results suggest that the antioxidant treatment during SCNT procedures can reduce the ROS generation level of SCNT bovine embryos.

• Nuclear Medicine and Molecular Imaging
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• 제43권5호
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• pp.487-494
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• 2009

목적: 작은 크기의 재조합 단일사슬 항체는 빠른 혈중 제거율과 종양의 항체 집적율이 증가되는 등의 장점을 가지고 있다. 반면에 항체의 작은 크기는 방사성 또는 형광물질의 표지를 위한 킬레이터 결합에 중요한 아미노산 그룹의 감소를 의미하기도 한다. 본 연구에서는 단일사슬 lym-1 염기서열 C-말단에 lysine 아미노산 태그를 삽입하여 형광 물질의 직접표지 및 그 표지수율 증가를 확인하고자 하였다. 대상 및 방법: 대장균 pET-22b (+) 벡터에 재조합 된 lysine 삽입 단일사슬 lym-1유전자는 대장균 BL21 (DE3)에 형질전환하여 발현하였다. 생산된 lysine lym-1 항체는 Ni-NTA 컬럽과 분자량 컬럼을 사용해 정제하였고. 단백질 전기 영동과 western blot을 통해 확인하였다. lysine lym-1 항체에 방사성 동위원소인 I-124, I-125, I-131 과 Tc-99m를 표지하여 그 수율을 확인하였으며 유세포계측기를 사용해 형광물질인 FITC가 직접표지된 라이신 lym-1 항체의 면역반응성을 사람의 버킷 림프종 세포주인 Raji 세포주에서 면역반응성을 확인하였다. 결과 Lysine도입 단일사슬 lym-1 항체는 두 과정의 정제를 통하여 획득하였으며 그 크기는 약 48 KDa이었고, 방사성동위원소인 I-124, I-125, I-131과 Tc-99m의 표지수율은 각각 >99%, >99%, >95%, >99%로 확인되었다. 유세포계측을 통한 lysine 도입 단일사슬 lym-1항체의 면역반응성은 기존의 단일사슬 lym-1항체와 유사함을 확인하였다. 결론: 재조합 lym-1 항체에 형광 물질을 직접 표지하기 위한 lysine 아미노산의 도입은 항체의 면역반응성 감소를 최소화 시키면서 직접표지 수율을 증가시킬 수 있는 유용한 방법임을 확인하였다.