Fenoxycarb, pyriproxyfen and methoprene are juvenile hormone mimic insecticide. These insecticides have been widely used for mosquito, fly, scale insects, and Lepidoptera. The purpose of this study was to develop a simultaneous determination procedure of fenoxycarb, pyriproxyfen and methoprene residues in crops using HPLC-UVD/MS. These insecticide residues were extracted with acetone from representative samples of four raw products which comprised brown rice, apple, green pepper, and Chinese cabbage. The extract was diluted with saline water, and then n-hexane/dichloromethane partition was followed to recover these insecticides from the aqueous phase. Florisil column chromatography was additionally employed for final clean up of the extract. The analytes were quantitated by HPLC-UVD/MS, using a $C_{18}$ column. The crops were fortified with each insecticide at 3 levels per crop. Mean recovery ratios were ranged from 80.0 to 104.3% in four representative agricultural commodities. The coefficients of variation were less than 4.8%. Quantitative limit of fenoxycarb, pyriproxyfen, and methoprene was 0.04 mg/kg in crop samples. A HPLC-UVD/MS with selected-ion monitoring was also provided to confirm the suspected residues. The proposed simultaneous analysis method was reproducible and sensitive enough to determine the residues of fenoxycarb, pyriproxyfen and methoprene in the agricultural commodities.
BACKGROUND: Trinexapac-ethyl is a plant growth regulator (PGR) that inhibits the biosynthesis of plant growth hormone (gibberellin). It is used for the prevention of lodging, increasing yields of cereals, and reducing mowing of turf. The experiment was conducted to establish a determination method for trinexapac-ethyl and its metabolites trinexapac in agricultural products using LC-MS/MS.METHODS AND RESULTS: Trinexapac-ethyl and trinexapac were extracted from agricultural products with methanol/ distilled water and the extract was partitioned with dichloromethane and then detected by LC-MS/MS. Limit of detection(LOD) was 0.003 mg/kg and limit of quantification(LOQ) was 0.01 mg/kg, respectively. Matrix matched calibration curves were linear over the calibration ranges (0.01-1.0 mg/L) for all the analytes into blank extract withr2> 0.997. For validation purposes, recovery studies were carried out at three different concentration levels (LOQ, 10LOQ, 50LOQ,n=5). Recoveries of trinexapacethyl and trinexapac were within the range of 73.6-106.9%, 72.7-99.2%, respectively. The relative standard deviations (RSDs) were less than 9.0%. All values were consistent with the criteria ranges requested in the CODEX guideline(CAC/GL 40, 2003).CONCLUSION: The proposed analytical method was accurate, effective and sensitive for trinexapac-ethyl and trinexapac determination and it can be used to as an official method in Korea.
BACKGROUND: Prochloraz has been widely used as an imidazole fungicide on fruits and vegetables in Korea. Analytical approaches to evaluate prochloraz residues in herbal medicine are required for their safety management. In this study, we developed a GC-ECD method for quantitative determination of prochloraz in Platycodi Radix. The metabolite 2,4,6-trichlorophenol (2,4,6-T) was used as a target compound to evaluate total prochloraz residues as it is categorized to a representative residue definition of prochloraz. All residues containing 2,4,6-T were converted to 2,4,6-T and subjected to GC-ECD. METHODS AND RESULTS: In order to verify the applicability, the method was optimized for determining prochloraz and it metabolite 2,4,6-T in Platycodi Radix. Prochloraz and its metabolite 2,4,6-T residuals were extracted using acetone. The extract was diluted with and partitioned directly into dichloromethane to remove polar co-extractives in the aqueous phase. The extract was decomposed to 2,4,6-T, and then the partitioned ion-associate was finally purified by optimized aminopropyl solid-phase extraction (SPE). The limits of quantitation of the method (MLOQs) were 0.04 mg/kg and 0.02 mg/kg, respectively for prochloraz and 2,4,6-T, considering the maximum residue level (MRL) of prochloraz as 0.05 mg/kg in Platycodi Radix. Recovery tests were carried out at two levels of concentration (MLOQ, 10 MLOQ) and resulted in good recoveries (82.1-89.7%). Good reproducibilities were obtained (coefficient of variation < 2.8%), and the linearities of calibration curves were reasonable (r2 > 0.9986) in the range of 0.005-0.5 ㎍/mL. CONCLUSION(S): The method developed in this study was successfully validated to meet the guidelines required for quantitative determination of pesticides in herbal medicine. Thus, the method could be useful to monitor prochloraz institutionally in herbal medicine.
Four saponins (1~4) were isolated from Akebia quinata pericarp through bioassay-guided fractionation. Pericarps of A. quinata were extracted with ethanol and sequentially fractionated with dichloromethane, ethyl acetate, butanol and water. Compounds 1~4 from the butanol fraction were identified as 3-O-${\alpha}$-L-arabinopyranosyl hederagenin (${\delta}$-hederin), 3-O-${\alpha}$-L-rhamnopyranosyl (1${\rightarrow}$2) ${\alpha}$-L-arabinopyranoly oleanolic acid (${\beta}$-hederin), 3-O-${\beta}$-D-xylopyranosyl (1${\rightarrow}$3) ${\alpha}$-L-arabinopyranosyl hederagenin (saponin C), and 3-O ${\alpha}$-L-rhamnopyranosyl (1${\rightarrow}$2) ${\alpha}$-L-arabinopyranosyl hederagenin (${\alpha}$-hederin) based on the spectroscopic evidences, respectively. Oleanolic acid and hederagenin were identified as the corresponding sapogenins by acid-hydrolysis. These compounds exhibited strong cytotoxic activity in MTS [3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-5-(3-carboxy-methoxyphenyl)-2-(4-sulfophenyl)-2H- tetrazolium, inner salt] assay on HepG2 cells. ${\beta}$-Hederin obviously attenuated the expression of bcl-2, an anti-apoptotic protein. All of the compounds also induced the activity of caspase-3, an apoptotic enzyme, while ${\alpha}$-hederin was the most potent activator of the enzyme. Our data demonstrate for the first time the apoptosis-inducing activity of A. quinata. These results suggest that A. quinata could be used as a potential source of natural cancer chemopreventive agents.
Polar pesticides like pymetrozine (log $P_{ow}$: -0.18) are known to be difficult to analyze. The analytical method of pymetrozine using hydromatrix included in the official method of KFDA was uncommon and provided ambiguous evidence to confirm both the identity and the quantity. Therefore, precise single residue analytical method was developed in representative crops for using liquid-liquid extraction (LLE). The pymetrozine residue was extracted with methanol from 11 representative crops which comprised apple, blueberry, broccoli, cabbage, cherry, crown daisy, hulled rice, Korean cabbage, potato, rice and watermelon. The extract was purified serially by liquid-liquid extraction (LLE) and silica solid phase extraction (SPE). For rice and hulled rice samples, n-hexane partition was additionally adopted to remove nonpolar interferences, mainly lipids. The residue levels were analyzed by HPLC with DAD, using $C_8$ column. LOQ (limit of quantitation) of pymetroizinie was 1 ng (S/N > 10) and MQL (method quantitation limit) was 0.01 mg/kg. Mean recoveries from 11 crop samples fortified at three levels (MQL, 10 ${\times}$ MQL and 50 ${\times}$ MQL) in triplicate were in the range of 83.1~98.5% with coefficients of variation (CV) of less than 10%, regardless of sample type, which satisfies the criteria of KFDA. The method established in this study could be applied to most of crops as an official and general method for analysis of pymetrozine residue.
Park, Jae-Eun;Lee, Jun-Young;Lee, Min-Woo;Jang, Eun-Jin;Hong, Chang-Oh;Kim, Keun Ki
Journal of Life Science
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v.28
no.11
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pp.1321-1331
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2018
The aim of this study was to separate the photosensitizer that induces apoptosis of U937 and SK-HEP-1 cells from Nostoc commune. Dried N. commune was extracted with $CH_2Cl_2/MeOH$ (1:1) to separate the photosensitizer using various chromatographic techniques. The isolated compound was identified as pheophytin a ($C_{55}H_{74}N_4O_5$) with a molecular weight of 870. Its photodynamic activities were assessed under different irradiation conditions (light and non-light) at the same concentration range of $1.15-23.0{\mu}M$. The apoptosis inducing activity in U937 or SK-HEP-1 cells appeared only in the light. The mechanisms underlying the pheophytin a-mediated photodynamic inhibition of cancer cells were further investigated by examining cell morphology changes, cytotoxicity, caspase-3/7 activity, fluorescence staining, flow cytometry analysis, and DNA fragmentation in these two cell lines. The positive control and the light irradiation group showed typical apoptotic responses, including morphological changes, cytotoxicity, caspase activity, nucleus shrinkage owing to chromatin condensation, DNA laddering, and the presence of apoptotic bodies. Cytotoxicity markedly increased in a dose-dependent manner after a 12 hr exposure. Caspase-3/7 activity was higher in U937 cells than in SK-HEP-1 cells. Apoptosis induction therefore appeared to be both concentration- and light-dependent. In conclusion, pheophytin a, isolated from the blue green alga N. commune, had a photodynamic apoptosis-inducing effect on U937 and SK-HEP-1 cells. The findings reported here can be used as basic data for the development of next-generation photosensitizers from N. commune.
Lim, Seung-Hee;Do, Jung-Ah;Park, Shin-Min;Pak, Won-Min;Yoon, Ji Hye;Kim, Ji Young;Chang, Moon-Ik
Journal of Food Hygiene and Safety
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v.32
no.4
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pp.298-305
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2017
Benzovindiflupyr is a new pyrazole carboxamide fungicide that inhibits succinate dehydrogenase of mitochondrial respiratory chain. This study was carried out to develop an analytical method for the determination of benzovindiflupyr residues in agricultural commodities using LC-MS/MS. The benzovindiflupyr residues in samples were extracted by using acetonitrile, partitioned with dichloromethane, and then purified with silica solid phase extraction (SPE) cartridge. Correlation coefficient ($r^2$) of benzovindiflupyr standard solution was 0.99 over the calibration ranges ($0.001{\sim}0.5{\mu}g/mL$). Recovery tests were conducted on 5 representative agricultural commodities (mandarin, green pepper, potato, soybean, and hulled rice) to validate the analytical method. The recoveries ranged from 79.3% to 110.0% and then relative standard deviation (RSD) was less than 9.1%. Also the limit of detection (LOD) and limit of quantification (LOQ) were 0.0005 and 0.005 mg/kg, respectively. The recoveries of interlaboratory validation ranged from 83.4% to 117.3% and the coefficient of variation (CV) was 9.0%. All results were followed with Codex guideline (CAC/GL 40) and Ministry of Food and Safety guideline (MFDS, 2016). The proposed new analytical method proved to be accurate, effective, and sensitive for benzovindiflupyr determination and would be used as an official analytical method.
Park, Shin-Min;Do, Jung-Ah;Lim, Seung-Hee;Yoon, Ji-Hye;Pak, Won-Min;Shin, Hye-Sun;Kuk, Ju-Hee;Chung, Hyung-Wook
Journal of Food Hygiene and Safety
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v.33
no.4
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pp.296-305
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2018
Spiroxamine, one of fungicides, is used to control powdery mildew in various crops and black yellow sigatoka in bananas. The major strength of spiroxamine is to control powdery mildew in various crops and bananas yellow sigatoka in bananas. The compound has shown a high level of activity, good persistence and crop tolerance. Besides powdery mildew, good control of rust, net blotch and Rhynchosporium diseases been indicated in cereals, together with a complementary activity against Septoria diseases. In 2017, the maximum residue limit (MRL) of spiroxamine established in Korea. According to Ministry of ood and rug afety) regulations, spiroxamine residues defined only parent compound. Thus, a analytical method is needed to estimate the residue level of the parent compound. The objective of this study was to develop and validate analytical method for spiroxamine in representative agricultural commodities. Samples were extracted with acetonitrile and partitioned with dichloromethane to remove the interfering substances. The analyte were quantified and confirmed liquid chromatograph-tandem mass spectrometer (LC-MS/MS) in positive-ion mode using multiple reaction monitoring (MRM). Matrix matched calibration curves were linear over the calibration ranges ($0.0005{\sim}0.1{\mu}g/mL$) for the analyte in blank extract with coefficient of determination ($r^2$) > 0.99. For validation purposes, recovery studies will be carried out at three different concentration levels (LOQ, 10LOQ, and 50LOQ) performing five replicates at each level. The recoveries 70.6~104.6% with relative standard deviations (RSDs) less than 10%. All values were consistent with the criteria ranges in the Codex guidelines (CAC/GL40, 2003) and MFDS guidelines. proposed analytical method be used as an official analytical method in the Republic of Korea.
An analytical method was developed for the determination of sedaxane in agricultural products using liquid chromatograph-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS). The samples were extracted with acetonitrile and partitioned with dichloromethane to remove the interference, and then purified by using silica SPE cartridges to clean up. The analytes were quantified and confirmed by using LC-MS/MS in positive ion mode using multiple reaction monitoring (MRM). The matrix-matched calibration curves were linear over the calibration ranges ($0.001-0.25{\mu}g/mL$) into a blank extract with $r^2$>0.99. For validation, recovery tests were carried out at three different concentration levels (LOQ, 10LOQ, and 50LOQ, n=5) with five replicates performed at each level. The recoveries were ranged between 74.5 to 100.8% with relative standard deviations (RSDs) of less than 12.1% for all analytes. All values were consistent with the criteria ranges requested in the Codex guidelines (CAC/GL 40, 2003) and Food Safety Evaluation Department guidelines (2016). The proposed analytical method was accurate, effective and sensitive for sedaxane determination in agricultural commodities.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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