Digoxigenin (DIG) was used to prepare nucleic acid probe for the detection of RNA of potato leafroll virus (PLRV) in the potato leaf extracts. The 0.6 kb coat protein (CP) gene cDNA of PLRV in plasmid pSPT 18 vector was labeled with digoxigenin by in vitro run-off transcription and then used for cRNA probe. In the several buffers tested for increase the total RNA extraction efficiency AMES buffer was the most suitable for this detection method. The RNA extracts from potato leaves shown symptoms of PLRV were dot blotted onto nylon membrane and hybridized with labeled RNA probes. After hybridization, labeled RNA bound to PLRV RNA on membrane was detected with anti-digoxigenin alkaline phosphatase. 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-phosphate/nitroblue tetrazolium (NBT) salt and CSPD were used as substrate for colorimetric and film exposure detection, respectively. These detection methods were very sensitive allowing for detection of 1/32 diluted total RNA extract from 100 mg leaf tissue.
Plant tissue homogenization using a mortar or mechanical equipment has been the preferred method for obtaining high yields of total RNA; this method, however, is both time-consuming and expensive. Additionally, homogenization may generate excessive endogenous RNases, polyphenolics, and other substances that reduce the quality and quantity of RNA. In this study, we describe the microwave irradiation-assisted RNA extraction (MIRE) technique which, without tissue disruption and homogenization, allows for the cost-effective and rapid generation of intact RNA from apple cane shavings and the reliable detection of apple virus by RT-PCR.
Co-infection with two virus species was previously reported in some cactus plants. Here, we showed that Notocactus leninghausii f. cristatus can be co-infected with six different viruses: cactus mild mottle virus (CMMoV)-Nl, cactus virus X (CVX)-Nl, pitaya virus X (PiVX)-Nl, rattail cactus necrosis-associated virus (RCNaV)-Nl, schlumbergera virus X (SchVX)-Nl, and zygocactus virus X (ZyVX)-Nl. The coat protein sequences of these viruses were compared with those of previously reported viruses. CMMoV-Nl, CVX-Nl, PiVX-Nl, RCNaV-Nl, SchVX-Nl, and ZyVX-Nl showed the greatest nucleotide sequence homology to CMMoV-Kr (99.8% identity, GenBank accession NC_011803), CVX-Jeju (77.5% identity, GenBank accession LC12841), PiVX-P37 (98.4% identity, GenBank accession NC_024458), RCNaV (99.4% identity, GenBank accession NC_016442), SchVX-K11 (95.7% identity, GenBank accession NC_011659), and ZyVX-B1 (97.9% identity, GenBank accession NC_006059), respectively. This study is the first report of co-infection with six virus species in N. leninghausii f. cristatus in South Korea.
Garlic generally becomes coinfected with several types of viruses belonging to the Potyvirus, Carlavirus, and Allexivirus genera. These viruses produce characteristically similar symptoms, they cannot be easily identified by electron microscopy (EM) or immunological detection methods, and they are currently widespread around the world, thereby affecting crop yields and crop quality adversely. For the early and reliable detection of garlic viruses, virus-specific sets of primers, including species-specific and genus-specific primers were designed. To effectively detect the twelve different types of garlic viruses, primer mixtures were tested and divided into two independent sets for multiplex polymerase chain reaction (PCR). The multiplex PCR assays were able to detect specific targets up to the similar dilution series with monoplex reverse transcription (RT)-PCR. Seventy-two field samples collected by the Gyeongbuk Agricultural Technology Administration were analyzed by multiplex RT-PCR. All seventy two samples were infected with at least one virus, and the coinfection rate was 78%. We conclude that the simultaneous detection system developed in this study can effectively detect and differentiate mixed viral infections in garlic.
Using the reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR), a rapid and sensitive assay method for the detection and identification of barley yellow mosaic virus (BaYMV) and barley mild mosaic virus (BaMMV) was adapted. Two units of primers from each virus were selected and used for the determination of two different viruses. PCR fragments of BaYMV (ca. 0.9kb) and BaMMV (ca. 0.8kb) were obtained from the designed method for the assay of BaYMV and BaMMV coat protein. PT-PCR fragments were cloned using vector pT7 Blue and the sequences of the selected clones were analyzed. coat protein of BaYMV and that of BaMMV consisted of 297 amino acids (891 nucleotides) and 251 amino acids (753 nucleotides), respectively. The snalysis of coat protein genes from these two viruses showed that 45.6% of nucleotides sequence ad 34.9% of amino acid in BaYMV were homologous to those in BaMMV.
Choi, Hoseong;Cho, Won Kyong;Yu, Jisuk;Lee, Jong-Seung;Kim, Kook-Hyung
The Plant Pathology Journal
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v.29
no.1
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pp.99-104
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2013
To detect five plant viruses (Beet black scorch virus, Beet necrotic yellow vein virus, Eggplant mottled dwarf virus, Pelargonium zonate spot virus, and Rice yellow mottle virus) for quarantine purposes, we designed 15 RT-PCR primer sets. Primer design was based on the nucleotide sequence of the coat protein gene, which is highly conserved within species. All but one primer set successfully amplified the targets, and gradient PCRs indicated that the optimal temperature for the 14 useful primer sets was $51.9^{\circ}C$. Some primer sets worked well regardless of annealing temperature while others required a very specific annealing temperature. A primer specificity test using plant total RNAs and cDNAs of other plant virus-infected samples demonstrated that the designed primer sets were highly specific and generated reproducible results. The newly developed RT-PCR primer sets would be useful for quarantine inspections aimed at preventing the entry of exotic plant viruses into Korea.
Park, Hong-Lyeol;Yoon, Jae-Seung;Kim, Hyun-Ran;Baek, Kwang-Hee
The Plant Pathology Journal
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v.22
no.2
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pp.168-173
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2006
To develop the diagnostic method for the viral infection in apple, the partial genes corresponding to the N-terminal region of RNA polymerase of Apple stem grooving virus (ASGV) and coat protein of Apple chlorotic leaf spot virus (ACLSV) were characterized from the infected apple cultivars in Korea. Based on the nucleotide sequences of the characterized partial genes, the virus gene-specific primers were designed for the detection of ASGV and ACLSV infected in species of Malus. The RT-PCR using the primers for the genes of ASGV and ACLSV successfully gave rise to 404 and 566 bp DNA fragments, respectively. Using those viral gene-specific primers, the multiplex RT-PCR assays were also established to diagnose the mixed infection by ASGV and ACLSV simultaneously. Furthermore, the control primers, which have to be included for the RT-PCR as an internal control, were designed using the nucleotide sequence of the gene encoding elongation factor $1{\alpha}(EF1{\alpha})$. This multiplex RT-PCR including the control primers provides more reliable, rapid and sensitive assay for the detection of ASGV and ACLSV infected in Korean apple cultivars.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.144.2-145
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2003
This study was performed to investigate the incidence of Hosta uirus X (HVX), a Potexvirus, from cultivated hosta ornamental plants in Korea and to ascertain seed transmission of the virus from infected parent plant to progeny ones for breeding program of hosta plants. Infection rate of HVX in cultivated hostas was 25.6 % (11 out of 43 collected samples contained HVX) based on Western blot and RT-PCR detection methods. Most of HVX-infected hostas showed visible systemic leaf symptoms (mosaic, mottle, curling, stunting or combinations). Variability of HVX was confirmed by sequences of coat protein gene of individual isolates from different hostas. HVX was seed-transmitted on Hosta 'Blue Cadet'. The virus was detected from seeds, and sprouts and seedlings from the virus-contaminated seed sources. Over 7.5 % of seeds were HVX-contaminated surveyed in this study, Our data suggest that HVX can be transmitted by seed source, and indexing of the virus should be done for breeding program of Hosta.
In Korea, isolated cultivation has been implemented for 102 genera, including about 250 species, each of which has underwent microscopic inspection, cultivation of bacteria in selective medium, analysis of physiology and biochemistry, enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and polymerase chain reaction (PCR). The number of isolated microorganisms was 8,307 in the period of 2005-2012, and bulbs and tubers had the greatest diversity of microorganisms, of 5,165 (62.2%), followed by 2,119 (25.0%) sapling, 796 (9.6%) seed, 150 (1.8%) cutting slip, 70 (0.8%) branch graft and 7 (0.1%). The number of cases which were disqualified were 413 (4.97%), after the detection of 47 disease causing species of microorganism. Viruses predominated, with 27 species, followed by 16 fungi, a viroid, a Chromalveolata and 2 further species. Top on the list of detection was Arabis mosaic virus (77 cases), followed by Tobacco rattle virus (70 cases), Lily symptomless virus (46 cases) and Penicillium expansum (46 cases).
Kim, Dong Seon;Jung, Ji Young;Wang, Yao;Oh, Hye Ji;Choi, Dongjin;Jeon, Che Ok;Hahn, Yoonsoo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.24
no.7
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pp.979-986
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2014
Plant pathogenic RNA viruses are present in a variety of plant-based foods. When ingested by humans, these viruses can survive the passage through the digestive tract, and are frequently detected in human feces. Kimchi is a traditional fermented Korean food made from cabbage or vegetables, with a variety of other plant-based ingredients, including ground red pepper and garlic paste. We analyzed microbial metatranscriptome data from kimchi at five fermentation stages to identify plant RNA virus-derived sequences. We successfully identified a substantial amount of plant RNA virus sequences, especially during the early stages of fermentation: 23.47% and 16.45% of total clean reads on days 7 and 13, respectively. The most abundant plant RNA virus sequences were from pepper mild mottle virus, a major pathogen of red peppers; this constituted 95% of the total RNA virus sequences identified throughout the fermentation period. We observed distinct sequencing read-depth distributions for plant RNA virus genomes, possibly implying intrinsic and/or technical biases during the metatranscriptome generation procedure. We also identified RNA virus sequences in publicly available microbial metatranscriptome data sets. We propose that metatranscriptome data may serve as a valuable resource for RNA virus detection, and a systematic screening of the ingredients may help prevent the use of virus-infected low-quality materials for food production.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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