Since the commercially available rabbit anti-cyclin D3, generated from c-terminal 16 amino acid residues which are common to human and murine cyclin D3, is highly cross-reactive with many other cellular proteins of mouse, a new rabbit polyclonal anti-cyclin D3 has been raised by using murine cyclin D3 protein expressed at a high level in Escherichia coli as the immunogen. To express murine cyclin D3 protein in E. coli, the cyclin D3 cDNA fragment encoding c-terminal 236 amino acid residues obtained by polymerase chain reaction (PCR) was inserted into the NcoI/BamHI site of protein expression vector, pET 3d. Molecular mass of the cyclin D3 overexpressed in the presence of IPTG (Isopropyl $\beta$-D-thiogalactopyranoside) was approximately 26 kDa as calculated from the reading frame on the DNA sequence, and the protein was insoluble and mainly localized in the inclusion bodies that could be easily purified from the other cellular soluble proteins. When renaturation was performed following denaturation of the insoluble cyclin D3 protein in the inclusion bodies using guanidine hydrochloride, 4.4 mg of soluble form of cyclin D3 protein was produced from the transformant cultured in 100ml of LB media under the optimum conditions. Four-hundred micrograms of the soluble form of cyclin D3 protein was used for each immunization of a rabbit. When the antiserum obtained 2 weeks after tertiary immunization was applied to Western blot analysis, it was able to detect 33 kDa cyclin D3 protein in both murine lymphoma cell line BW5147.G.1.4 and human Jurkat T cells at 3,000-fold dilution with higher specificity to murine cyclin D3, demonstrating that the new rabbit polyclonal anti-murine cyclin D3 generated against c-terminal 236 amino acid residues more specifically recognizes murine cyclin D3 protein than does the commercially available rabbit polyclonal antibody raised against c-terminal 16 amino acids residues.
Kundu, Suman;Sundd, Monica;Jagannadham, Medicherla V.
BMB Reports
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v.35
no.2
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pp.155-164
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2002
The structural aspects of ervatamin B have been studied in different types of alcohol. This alcohol did not affect the structure or activity of ervatamin B under neutral conditions. At a low pH (3.0), different kinds of alcohol have different effects. Interestingly, at a certain concentration of non-fluorinated, aliphatic, monohydric alcohol, a conformational switch from the predominantly $\alpha$-helical to $\beta$-sheeted state is observed with a complete loss of tertiary structure and proteolytic activity. This is contrary to the observation that alcohol induces mostly the $\alpha$helical structure in proteins. The O-state of ervatamin B in 50% methanol at pH 3.0 has enhanced the stability towards GuHCl denaturation and shows a biphasic transition. This suggests the presence of two structural parts with different stabilities that unfold in steps. The thermal unfolding of ervatamin B in the O-state is also biphasic, which confirms the presence of two domains in the enzyme structure that unfold sequentially. The differential stabilization of the structural parts may also be a reflection of the differential stabilization of local conformations in methanol. Thermal unfolding of ervatamin B in the absence of alcohol is cooperative, both at neutral and low pH, and can be fitted to a two state model. However, at pH 2.0 the calorimetric profiles show two peaks, which indicates the presence of two structural domains in the enzyme with different thermal stabilities that are denatured more or less independently. With an increase in pH to 3.0 and 4.0, the shape of the DSC profiles change, and the two peaks converge to a predominant single peak. However, the ratio of van't Hoff enthalpy to calorimetric enthalpy is approximated to 2.0, indicating non-cooperativity in thermal unfolding.
Sundd, Monica;Kundu, Suman;Jagannadham, Medicherla V.
BMB Reports
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v.35
no.2
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pp.143-154
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2002
The structural and functional aspects of ervatamin B were studied in solution. Ervatamin B belongs to the $\alpha+\beta$ class of proteins. The intrinsic fluorescence emission maximum of the enzyme was at 350 nm under neutral conditions, and at 355 nm under denaturing conditions. Between pH 1.0-2.5 the enzyme exists in a partially unfolded state with minimum or no tertiary structure, and no proteolytic activity. At still lower pH, the enzyme regains substantial secondary structure, which is predominantly $\beta$-sheet conformation and shows a strong binding to 8-anilino-1-napthalene-sulfonic acid (ANS). In the presence of salt, the enzyme attains a similar state directly from the native state. Under neutral conditions, the enzyme was stable in urea, while the guanidine hydrochloride (GuHCl) induced equilibrium unfolding was cooperative. The GuHCl induced unfolding transition curves at pH 3.0 and 4.0 were non-coincidental, indicating the presence of intermediates in the unfolding pathway. This was substantiated by strong ANS binding that was observed at low concentrations of GuHCl at both pH 3.0 and 4.0. The urea induced transition curves at pH 3.0 were, however, coincidental, but non-cooperative. This indicates that the different structural units of the enzyme unfold in steps through intermediates. This observation is further supported by two emission maxima in ANS binding assay during urea denaturation. Hence, denaturant induced equilibrium unfolding pathway of ervatamin B, which differs from the acid induced unfolding pathway, is not a simple two-state transition but involves intermediates which probably accumulate at different stages of protein folding and hence adds a new dimension to the unfolding pathway of plant proteases of the papain superfamily.
Kim, Yun-Kyeong;Choi, In-Geol;Nam, Won-Woo;Yu, Yeon-Gyu
BMB Reports
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v.33
no.6
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pp.493-498
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2000
Aquifex pyrophilus, a hyperthermophilic bacterium, has a serine-type protease that is located at the cell wall fraction with a mature size of 43 kDa. Molecular cloning of the protease gene revealed that it has an ORF of 619 amino acids with homologous catalytic site of serine-type proteases [Choi, I.-G., Bang, W.-K., Kim, S.-H., Yu, G. Y., J. Biol. Chem. (1999), Vol. 274, pp. 881-888]. Constructs containing different regions of the protease gene, including a alanine-substituted mutant at the active site serine, were constructed, and the factors affecting the expression level of the cloned protease gene in E. coli were examined. The presence of the C-terminus hydrophobic region of the protease hindered over-expression in E. coli. Also, the proteolytic activity of the expressed protein appeared to toxic to E. coli. An inactive form that deleted both of the N-terminal signal sequence and the C-terminal polar residues was over-expressed in a soluble form, purified to homogeneity, and its thermostability examined. The purified protein showed three disulfide bonds and three free sulfhydryl group. The thermal denaturation temperature of the protein was measured around $90^{\circ}C$ using a differential scanning calorimeter and circular dichroism spectrometry. The disulfide bonds were hardly reduced in the presence of reducing agents, suggesting that these disulfide bonds were located inside of the protein surface.
SCK tumor cells were exposed to heat shock or several sulihydryl-reacting agents such as iodoacetamide(IAA), zinc chloride(Zn), and 2-mercaptoethanol(ME). Stress proteins induced by these agents were examined and the relationship between the induction of stress proteins and the production of abnormal proteins was discussed. Based on the present experiments, two classes of intracellular pathways for the induction of stress proteins were defined; one dependent on and the other independent of protein synthesis. The presence of cycloheximide during the induction period blocked the formation of stress proteins in the cells exposed to Zn or ME, but not in those exposed to heat shock or IAA.Therefore, stress protein seems to be induced either by denaturation of pre-existing mature proteins (e.g., heat shock or IAA) or by newly synthesized abnormal proteins(e.g., Zn or ME). In conclusion, it is ilkely that the production of abnormal proteins by stresses triggers stress protein induction. In addition, it was found that the cells exposed to IISP and GRP inducers simultaneously responded to more strong stress among several stresses encountered.
Leptin gene, an obesity gene, has been known to involve in the regulation of food intake and body weight. It is also thought to be related to the glucose metabolism, insulin secretion and type II diabetes mellitus. Recently, the production of recombinant leptin protein has been attempted for the application in the treatment of obesity and the correction of hereditary obesity and type II diabetes. In the present study, leptin cDNA was cloned from mouse fat cells by RT-PCR and prokaryotic expression of leptin was attempted in order ot prepare a leptin-specific antigen. Immunization of a rabbit with the leptin-specific antigen into a rabbit resulted in the generation of leptin-specific antiserum that could be useful in the detection of leption expressed in various tissues. The sequence of leptin cDNA prepared in the present study wa identical to the previously reported one. Transformation of E. coli(DH5a) cells with the leptin cDNA-inserted translation vector, pGEX-4T-3-leptin followed by treatment with IPTG (0.1mM) resulted in the expression of a large amount of GST-leptin fusion protein with a molecular weight of 44 KDa as an inclusion body. Denaturation of the insoluble fusion protein by 8M urea, 6M guanidium-HCI or 0.1% 2-mercaptoethanol followed by a slow oxidation could not solubilize the inclusion body. The cell extract was subjected to SDS-PAGE and GST-leptin protein electroeluted from the gel was then injected into a rabbit subcutaneously for the immunization. Anti-GST-leptin rabbit antiserum which had a cross reactivity to the GST-leptin protein was generated. Leptin protein expressed in mouse brain and fat tissues was detected by Western blot immunodetection system using the antiserum generated in the present study.
Du, Hui;Kim, Sunghan;Hur, Yoon-Sun;Lee, Myung-Sok;Lee, Suk-Ha;Cheon, Choong-Ill
Molecules and Cells
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v.38
no.2
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pp.187-194
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2015
Thioredoxin (TRX) is a disulfide reductase present ubiquitously in all taxa and plays an important role as a regulator of cellular redox state. Recently, a redox-independent, chaperone function has also been reported for some thioredoxins. We previously identified nodulin-35, the subunit of soybean uricase, as an interacting target of a cytosolic soybean thioredoxin, GmTRX. Here we report the further characterization of the interaction, which turns out to be independent of the disulfide reductase function and results in the co-localization of GmTRX and nodulin-35 in peroxisomes, suggesting a possible function of GmTRX in peroxisomes. In addition, the chaperone function of GmTRX was demonstrated in in vitro molecular chaperone activity assays including the thermal denaturation assay and malate dehydrogenase aggregation assay. Our results demonstrate that the target of GmTRX is not only confined to the nodulin-35, but many other peroxisomal proteins, including catalase (AtCAT), transthyretin-like protein 1 (AtTTL1), and acyl-coenzyme A oxidase 4 (AtACX4), also interact with the GmTRX. Together with an increased uricase activity of nodulin-35 and reduced ROS accumulation observed in the presence of GmTRX in our results, especially under heat shock and oxidative stress conditions, it appears that GmTRX represents a novel thioredoxin that is co-localized to the peroxisomes, possibly providing functional integrity to peroxisomal proteins.
Enzymatic hydrolysis of insoluble cellulose was performed in a bubble column with tangential flow ulrafiltration membrane unit. The reactor was operated in a batch mode as well as semi-continuous and continuous with continuous removal of products through the tangential flow ultrafiltration membrane. The optimum superficial gas velocity was 1-3cm / sec so as to avoid bubble coalescence and enzyme denaturation. In continuous and selni-cotinuous process, the conversion was gradually increased but the total reduced sugar concentration was drcastically dereased with the dilution rate. It was concluded that the bubble column attaching tangential flow ultrafiltration membrane unit was effective on continuous hydrolysis of cellulose and recovery of enzyme.
Carbon Nano Tubes could be either metallic or semi-conducting in nature, depending on their diameter. Its photocatalytic behavior has given an impetus to use it as an anti-microbial agent. More than 95% Escherichia coli and Staphylococcus aureus bacteria got killed when exposed to Carbon Nano Tubes for 30 minutes in presence of sunlight. Carbon Nano Tubes are supposed to have smooth surface on to which it accumulates positive charges when exposed to light. The surface that is non illuminated has negative charge. At the cellular level microorganisms produce negative charges on the cell membrane, Therefore damaging effect of multi walled carbon nano tubes (exposed to light) on the microorganisms is possible. In this paper, photo catalytic killing of microbes by multi walled carbon nano tubes is reported. Killing was due to damage in the cell membrane, as seen in SEM micrographs. Moreover biochemical analysis of membrane as well as total cellular proteins by SDS PAGE showed that there was denaturation of membrane proteins as well as total proteins of both the microbes studied. The killed microbes that showed a decrease in number of protein bands (i.e. due to breaking down of proteins) also showed an increase in level of free amino acids in microbes. This further confirmed that proteins got denatured or broken down into shorter units of amino acids. Increased level of free amino acids was recorded in both the microbes treated with multi walled carbon nano tubes and sunlight.
This paper describes a micro total analysis system ($\mu$ TAS) for detecting and digesting the target protein which includes a bead based temperature controllable microchip and computer based controllers for temperature and valve actuation. We firstly combined the temperature control function with a bead based microchip and realized the on-chip sequential reactions using two kinds of beads. The PEG-grafted bead, on which RNA aptamer was immobilized, was used for capturing and releasing the target protein. The target protein can be chosen by the type of RNA aptamer. In this paper, we used the RNA aptamer of HCV replicase. The trypsin coated bead was used for digesting the released protein prior to the matrix assisted laser desorption ionization time of flight mass spectrometer (MALDI TOF MS). Heat is applied for release of the captured protein binding on the bead, thermal denaturation and trypsin digestion. PDMS microchannel and PDMS micro pneumatic valves were also combined for the small volume liquid handling. The entire procedures for the detection and the digestion of the target protein were successfully carried out on a microchip without any other chemical treatment or off-chip handling using $20\;{\mu}l$ protein mixture within 20 min. We could acquire six matched peaks (7% sequence coverage) of HCV replicase.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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