The effects of imipramine on A-type delayed rectifier $K^{+}$ currents and ATP-sensitive $K^{+}\;(K_{ATP)$ currents were studied in isolated murine proximal colonic myocytes using the whole-cell patch-clamp technique. Depolarizing test pulses between-80 mV and +30 mV with 10 mV increments from the holding potential of-80 mV activated voltage-dependent outward $K^{+}$ currents that peaked within 50 ms followed by slow decreasing sustained currents. Early peak currents were inhibited by the application of 4-aminopyridine, whereas sustained currents were inhibited by the application of TEA. The peak amplitude of A-type delayed rectifier $K^{+}$ currents was reduced by external application of imipramine. The half-inactivation potential and the half-recovery time of A-type delayed rectifier $K^{+}$ currents were not changed by imipramine. With 0.1 mM ATP and 140 mM $K^{+}$ in the pipette and 90 mM $K^{+}$ in the bath solution and a holding potential of -80 mV, pinacidil activated inward currents; this effect was blocked by glibenclamide. Imipramine also inhibited $K_{ATP}$ currents. The inhibitory effects of imipramine in A-type delayed rectifier $K^{+}$ currents and $K_{ATP}$ currents were not changed by guanosine 5-O-(2-thiodiphosphate) ($GDP{\beta}S$) and chelerythrine, a protein kinase C inhibitor. These results suggest that imipramine inhibits A-type delayed rectifier $K^{+}$ currents and $K_{ATP}$ currents in a manner independent of G-protein and protein kinase C.
The human $ether$-$a$-$go$-$go$-related gene ($hERG$) channel is important for repolarization in human myocardium and is a common target for drugs that prolong the QT interval. We studied the effects of two antipsychotics, tiapride and sulpiride, on hERG channels expressed in $Xenopus$ oocytes and also on delayed rectifier $K^+$ currents in guinea pig cardiomyocytes. Neither the amplitude of the hERG outward currents measured at the end of the voltage pulse, nor the amplitude of hERG tail currents, showed any concentration-dependent changes with either tiapride or sulpiride ($3{\sim}300{\mu}M$). However, our findings did show that tiapride increased the potential for half-maximal activation ($V_{1/2}$) of HERG at $10{\sim}300{\mu}M$, whereas sulpiride increased the maximum conductance ($G_{max}$) at 3, 10 and $100{\mu}M$. In guinea pig ventricular myocytes, bath applications of 100 and $500{\mu}M$ tiapride at $36^{\circ}C$ blocked rapidly activating delayed rectifier $K^+$ current ($I_{Kr}$) by 40.3% and 70.0%, respectively. Also, sulpiride at 100 and $500{\mu}M$ blocked $I_{Kr}$ by 38.9% and 76.5%, respectively. However, neither tiapride nor sulpiride significantly affected the slowly activating delayed rectifier $K^+$ current ($I_{Ks}$) at the same concentrations. Our findings suggest that the concentrations of the antipsychotics required to evoke a 50% inhibition of IKr are well above the reported therapeutic plasma concentrations of free and total compound.
Recent studies have reported that delayed-rectifier Kv channels regulate apoptosis in the nervous system. Herein, we investigated changes in the expression of the delayed-rectifier Kv channels Kv1.2, Kv2.1, and Kv3.1 after acute spinal cord injury (SCI) in rats. We performed RT-PCR analysis and found an increase in the level of Kv2.1 mRNA after SCI but no significant changes in the levels of Kv1.2 and Kv3.1 mRNA. Western blot analysis revealed that Kv2.1 protein levels rapidly decreased and then dramatically increased from 1 day, whereas Kv3.1b protein levels gradually and sharply decreased at 5 days. Kv1.2 protein levels did not change significantly. In addition, Kv2.1 clusters were disrupted in the plasma membranes of motor neurons after SCI. Interestingly, the expressional changes and translocation of Kv2.1 were consistent with the apoptotic changes on day 1. Therefore, these results suggest that Kv2.1 channels probably contribute to neuronal cell responses to SCI.
In sino-atrial node cells which act as the normal pacemaker of the heart, K conductance in resting state is minimal due to the absence of inward rectifier K channels K conductance only increases when the membrane is depolarized by the activation of the delayed rectifier K current I$\_$k/. In the present study, we investigated the gating mechanism of$\_$k/ using the whole cell patch clamp technique in isolated single sinoatrial cells of the rabbit. (omitted)
Park, Won-Sun;Son, Youn-Kyoung;Ko, Eun-A;Choi, Seong-Woo;Kim, Na-Ri;Choi, Tae-Hoon;Youn, Hyun-Joo;Jo, Su-Hyun;Hong, Da-Hye;Han, Jin
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제14권3호
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pp.119-125
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2010
We investigated the effects of a hot-water extract of Artemisia iwayomogi, a plant belonging to family Compositae, on cardiac ventricular delayed rectifier $K^+$ current ($I_K$) using the patch clamp technique. The carbohydrate fraction AIP1 dose-dependently increased the heart rate with an apparent $EC_{50}$ value of $56.1{\pm}5.5\;{\mu}g/ml$. Application of AIP1 reduced the action potential duration (APD) in concentration-dependent fashion by activating $I_K$ without significantly altering the resting membrane potential ($IC_{50}$ value of $APD_{50}$: $54.80{\pm}2.24$, $IC_{50}$ value of $APD_{90}$: $57.45{\pm}3.47\;{\mu}g/ml$). Based on the results, all experiments were performed with $50\;{\mu}g/ml$ of AIP1. Pre-treatment with the rapidly activating delayed rectifier $K^+$ current ($I_{Kr}$) inhibitor, E-4031 prolonged APD. However, additional application of AIP1 did not reduce APD. The inhibition of slowly activating delayed rectifier $K^+$ current ($I_{Ks}$) by chromanol 293B did not change the effect of AIP1. AIP1 did not significantly affect coronary arterial tone or ion channels, even at the highest concentration of AIP1. In summary, AIP1 reduces APD by activating $I_{Kr}$ but not $I_{Ks}$. These results suggest that the natural product AIP1 may provide an adjunctive therapy of long QT syndrome.
It is well known that rapidly activating delayed rectifier $K^{+}$ channels ( $I_{Kr}$ ) playa role in repolarisation in mammalian hearts. Recently, human ether-a- go- go related gene (HERG) channels was shown to be a molecular equivalent to $I_{Kr}$ . We have investigated the permeation of various external cations on $I_{Kr}$ in mammalian hearts and on HERG channels expressed in Xenopus laevis oocytes.(omitted)
To identify the effect and mechanism of carbon monoxide (CO) on delayed rectifier K+ currents (IK) of human cardiac fibroblasts (HCFs), we used the wholecell mode patch-clamp technique. Application of CO delivered by carbon monoxidereleasing molecule-3 (CORM3) increased the amplitude of outward K+ currents, and diphenyl phosphine oxide-1 (a specific IK blocker) inhibited the currents. CORM3-induced augmentation was blocked by pretreatment with nitric oxide synthase blockers (L-NG-monomethyl arginine citrate and L-NG-nitro arginine methyl ester). Pretreatment with KT5823 (a protein kinas G blocker), 1H-[1,-2,-4] oxadiazolo-[4,-3-a] quinoxalin-1-on (ODQ, a soluble guanylate cyclase blocker), KT5720 (a protein kinase A blocker), and SQ22536 (an adenylate cyclase blocker) blocked the CORM3 stimulating effect on IK. In addition, pretreatment with SB239063 (a p38 mitogen-activated protein kinase [MAPK] blocker) and PD98059 (a p44/42 MAPK blocker) also blocked the CORM3's effect on the currents. When testing the involvement of S-nitrosylation, pretreatment of N-ethylmaleimide (a thiol-alkylating reagent) blocked CO-induced IK activation and DL-dithiothreitol (a reducing agent) reversed this effect. Pretreatment with 5,10,15,20-tetrakis(1-methylpyridinium-4-yl)-21H,23H porphyrin manganese (III) pentachloride and manganese (III) tetrakis (4-benzoic acid) porphyrin chloride (superoxide dismutase mimetics), diphenyleneiodonium chloride (an NADPH oxidase blocker), or allopurinol (a xanthine oxidase blocker) also inhibited CO-induced IK activation. These results suggest that CO enhances IK in HCFs through the nitric oxide, phosphorylation by protein kinase G, protein kinase A, and MAPK, S-nitrosylation and reduction/oxidation (redox) signaling pathways.
The purpose of our investigation was to examine the effects of prostaglandin $F_{2{\alpha}}\;(PGF_{2{\alpha}})$ on membrane potentials, $Ca^{2+}-activated\;K^+\;(K_{Ca})$ channels, and delayed rectifier $K^+(K_V)$ channels using the patch-clamp technique in single rabbit middle cerebral arterial smooth muscle cells. $PGF_{2{\alpha}}$ significantly hyperpolarized membrane potentials and increased outward whole-cell K currents. $PGF_{2{\alpha}}$ increased open-state probability of $K_{Ca}$ channels without the change of the open and closed kinetics. $PGF_{2{\alpha}}$ increased the amplitudes of $K_V$ currents with a leftward shift of activation and inactivation curves and a decrease of activation time constant. Our results suggest that the activation of $K_{Ca}$ and $K_V$ channels, at least in part, may lead to attenuate or counteract vasoconstriction by $PGF_{2{\alpha}}$ in middle cerebral artery.
Torilin was purified from Torilis japonica (Houtt.) DC., and its effects on a rapidly activating delayed rectifier $K^+$ channel (hKv1.5), cloned from human heart and stably expressed in Ltk cells, as well as the corresponding $K^+$ current (the ultrarapid delayed rectifier, $I_{KUR}$) were assessed in human atrial myocytes. Using the whole cell configuration of the patch-clamp technique, torilin was found to inhibit the hKv1.5 current in time and voltage-dependent manners, with an $IC_50$ value of $2.51{\pm}0.34\;{\mu}M$ at +60 mV. Torilin accelerated the inactivation kinetics of the hKv1.5 channel, and slowed the deactivation kinetics of the hKv1.5 current, resulting in a tail crossover phenomenon. Additionally, torilin inhibited the hKv1.5 current in a use dependent manner. These results strongly suggest that torilin is a type of open-channel blocker of the hKv1.5 channel.
The aim of present study was to define the cellular mechanisms underlying changes in delayed rectifier $K^+\;(K_{DR})$ channel function in isoproterenol-induced hypertrophy. It has been proposed that $K_{DR}$ channels play a role in regulation of vascular tone by limiting membrane depolarization in arterial smooth muscle cells. The alterations of the properties of coronary $K_{DR}$ channels have not been studied as a possible mechanism for impaired coronary reserve in cardiac hypertrophy. The present study was carried out to compare the properties of coronary $K_{DR}$ channels in normal and hypertrophied hearts. These channels were measured from rabbit coronary smooth muscle cells using a patch clamp technique. The main findings of the study are as follows: (1) the $K_{DR}$ current density was decreased without changes of the channel kinetics in isoproterenol-induced hypertrophy; (2) the sensitivity of coronary $K_{DR}$ channels to 4-AP was increased in isoproterenol-induced hypertrophy. From the above results, we suggest for the first time that the alteration of $K_{DR}$ channels may limit vasodilating responses to several stimuli and may be involved in impaired coronary reserve in isoproterenol-induced hypertrophy.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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