The 44Md plasmid of Bacillus thruingiensis var. kurstaki HD-1(B. t k HD-1) was partially digested with Sau3AI and the fragments were cloned into E. coli HB101 on vector pBR322. Of 2, 950 clones with a recombinant pBR322, only one clone KC1 was determined to have the gene for crystal toxic proteins from the 44Md plasmid of B. t k HD-1 at the BamHI site of pBR322. The recombinant pBR322 was named pKC1 and its molecular size was 12kb. The KC1 produced a protein which was toxic to the silkworm and antigenically similar to the crystal toxic protein of B. t k HD-1. Also, electrophoretic mobility of the KC1 protein was apparently the same as that of the crystal toxic protein of B. t k HD-1.
G protein-coupled receptors (GPCRs) are membrane receptors; approximately 40% of drugs on the market target GPCRs. A precise understanding of the activation mechanism of GPCRs would facilitate the development of more effective and less toxic drugs. Heterotrimeric G proteins are important molecular switches in GPCR-mediated signal transduction. An agonist-activated receptor interacts with specific sites on G proteins and promotes the release of GDP from the $G{\alpha}$ subunit. Because of the important biological role of the GPCR-G protein coupling, conformational changes in the G protein upon receptor coupling have been of great interest. One of the most important questions was the interface between the GPCR and G proteins and the structural mechanism of GPCR-induced G protein activation. A number of biochemical and biophysical studies have been performed since the late 80s to address these questions; there was a significant breakthrough in 2011 when the crystal structure of a GPCR-G protein complex was solved. This review discusses the structural aspects of GPCR-G protein coupling by comparing the results of previous biochemical and biophysical studies to the GPCR-G protein crystal structure.
Six new serovarieties of B. thuringiensis carrying specific H-antigen have minor differences in biochemical characteristics and morphological characteristics of crystals, which are commonly resistant against four antibiotics. The B. thuringiensis serovar. coreanensis is nontoxic to silkworm larvae, but it is moderately toxic against the Culex pipiens larvae. The B. thuringiensis serovar. konkukian and leesis are nontoxic against mosquitos larvae, but are toxic against silkworm larvae. The B. thuringiensis serovar. seoulensis, sooncheon, and yosoo are highly toxic to B. mori larvae and moderately toxic to C. pipiens larvae. The six serovarieties harbor different plasmid DNA patterns. A 102-kDa protein is a major crystal protein in the four serovarieties and a 86-kDa protein is in one serovariety.
Park, Seung-Hwan;Koo, Bon-Tag;Shin, Byung-Sik;Kim, Jeong-Il
Journal of Microbiology and Biotechnology
/
v.1
no.1
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pp.37-44
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1991
A shuttle promoter-probe vector, pEB203, was derived from pBR322, pPL703 and pUB110. Using the vector, a useful DNA fragment, 319 bp EcoRI fragment, having strong promoter activity has been cloned from Bacillus subtills chromosomal DNA. Selection was based on chloramphenicol resistance which is dependent upon the introduction of DNA fragments allowing expression of a chloramphenicol acetyl transferase gene. The nucleotide sequence of the 319 bp fragment has been determined and the putative -35 and -10 region, ribosome binding site, and ATG initiation codon were observed. This promoter was named EB promoter and the resultant plasmid which can be used as an expression vector was named pEBP313. The crystal protein gene from B. thuringiensis subsp. kurstaki HD-73 was cloned downstream from the EB promoter without its own promoter. When the resultant plasmid, pBT313, was introduced into Escherichia coli and B. subtilis, efficient synthesis of crystal protein was observed in both cells, and the cp gene expression in B. subtilis begins early in the vegetative phase. The cell extracts from both clones were toxic to Hyphantria cunea larvae.
Cloning and expression of two different crystal protein genes from transformed Bacillus thuringiensis were investigated. B. thuringiensis NT0423 is toxic to both Lepidopterous and Dipte-rous larvae. The pCG5 vector carrying crystal protein genes (mosquitocidal and hemolytic activity) of B. thurigiensis subsp. morrisoni PG-14 was transformed into B. thurigiensis NT0423. Transformant has expressed two type crystals of bipyramid from NT0423 and ovoid from pCG5 in one cell.
A noninsecticidal strain, Bacillus thuringiensis NTB-88, isolated from Korean soil, had a typical bipyramidal parasporal inclusion and its serotype is identical to B. thuringiensis subspmorrisoni (H8a8b). To elucidate differences between insecticidal and noninsecticidal strains, we compared strain NTB-88 to other toxic B. thuringiensis subsp. morrisoni strains (HD-12 and PG-14). Restriction endonucleases digested plasmid DNA patterns showed that strain NTB-88 was different from lepidopteran-toxic strain, HD-12, but it was similar to dipteran-toxic strain, PG-14. The gene type of strain NTB-88 was different from those of other insecticidal strains, Furthermore, the NH2-terminal amino acid sequence of crystal protein of strain NTB-88 had no relation to those of the previously known $\delta$-endotoxins in other toxic strains as well as HD-12 and PG-14 strains. Therefore, the noninsecticidal crystal protein in strain NTB-88 is novel and its property is different from insecticidal ones.
A clone pSL 2-1, which is a recombinant plasmid believed to contain the mosquitocidal crystal-line protein gene of the Bacillus sphaericus 1593, was expressed in Escherichia coli JM83 and the product of the clone was purified and identified. The unsolubilized mosquitocidal crystal proteins from the B. sphaericus had formed 43, 58, 64, 100, 113, and 130 Kd bands in the SDS-polyacrylamide gel, but the NaOH-solublized proteins at pH 12 formed 2 protein bands of 43- and 64Kd in the gel because the larger protein (precursor) bands were cleaved. The products of the pSL 2-1 clone was purified by Sephadex G-200 and only the fractions having lethal activity to the 3rd in-star larvae of mosquito Culex pipiens were analyzed by the gel. The only single protein band of 42 Kd toxic to the larvae was formed. The major toxic protein being produced from the B. sphaericus 1593 and the pSL 2-1 clone was found to be the 42 Kd.
The objective of this study is to identify plasmids of Bacillus thuringiensis var. kurstaki HD-1(B. t k HD-1) toxic to lepidopteran larvae. The results from agarose gel electrophoresis indicated that the bacterium contained 9 plasmids with approximate sizes of 1.4, 4.9, 5.4, 9.3, 10, 29, 44, 52, and 150 megadaltons(Md). By treating the wild type of B. t k HD-1 with either SDS or EtBr as curing agent, 26 cured mutants of the bacterium were obtained, 9 of them were crystallifereous(cry+) and the others acrystallifereous(cry-). Plasmids from B. t k HD-1 were transferred to B. cereus 569 strR cry- recipients(Bc569 M1). Among 13 isolates of Bc569 M1 transcipient, 11 of them were capable of producing the crystal toxic proteins. The plasmid patterns of Bc569 M1 transcipients and partially curved mutants of B. t k HD-1 on agarose gel electrophoresis suggested that the 29 and 44Md plasmids should be involved in the production of crystalline toxic proteins.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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