A total of 136 coliform bacteria isolated from spring water (112 strains) and ground water (24 strains), submitted to Seoul Health and Environmental Research Institute from June to July in 1997, were characterized biochemically and microbiologically. Colonical characteristics of each isolate were also noted, including color and texture on EMB agar. Among the 136 isolates, 50.7% were greenish metallic sheen color, 44.2% were pink and 5.1% were violet. The sixty four percent were smooth, 34.6% were mucoid and 0.7%. were rough. Twenty three bacterial species were identified by IMViC and API 20E test. Among the 136 coliform bacteria known to species, 39 isolates (28.6%) were Escherichia spp., 32 isolates (23.5%) were Klebsiella ssp., 30 isolates (22.1%) were Enterobacter spp., 19 isolates (14.0%) were Serratia spp., 6 isolates (4.4%) were Citrobacter spp., 4 isolates (3.0%) were Kluyvera spp. and 7 isolates (5.1%) were other bacterial species. Strains, which were gas-positive in lactose broth but gas-negative in Kligler Iron Agar were Ent. intermedium, Ser. liquefaciens, Ser. marcescenes and Salmonella arizoae. Strains, which were H2S production were also Kleb. pneumoniae, Kleb. oxytoca, Kleb. ornithinolytica, Ent. sahazahii, Ent. cloacae, Ser. liquefaciens, Ser. fica ria, Cit. freundii and Sal. arizoae. In the present study, most of coliform isolated from spring and ground water were E. coli, Klebsiella spp. and Enterobacter spp. Since coliform with pink colony in EMB agar was isolated as frequent as coliform with greenish metallic sheen colony, coliform with pink colony should be considered as important colony. Our results suggested that new coliform strains may be emerging on the basis of biochemical and microbiological testes.
In this research, mortality rates of pathogen indicator microorganisms discharged from various point sources and diffuse sources in urban area were measured. Water samples were taken at domestic sewer, combined sewer overflow, effluent from a wastewater treatment plant, urban river, and sediment of an urban river. Mortality rates of indicator microorganisms in domestic sewer estimated by assuming the first order kinetics at $20^{\circ}C$ were as follows: total coliform = 0.092/day, fecal coliform = 0.185/day, E. coli = 0.252/day, and fecal streptococci = 0.281/day. Sensitivity of mortality rates of total coliform on temperature was estimated as $K_{temp}=K_{20}{\times}1.162^{(temp-20)}$ for the range of $10-20^{\circ}C$. Mortality rates due to sunlight were measured as 1.22-1.59/day while mortality rate due to settling for 40 min were estimated as $9.21{\times}10^3-20.0{\times}10^3/day$.
Combined sewer overflow (CSOs) is a primary diffuse source degrading water quality of urban streams. In this study, CSOs caused by 5 different rainfall events at an urban watershed located in Daejeon city were monitored for the indicator microorganism concentrations. Event mean concentration (EMC) of the indicator microorganisms were: total coliform = $2.46{\times}10^6CFU/100mL$; fecal coliform = $1.01{\times}10^6CFU/100mL$; E.coli = $5.20{\times}10^5CFU/100mL$; and Fecal Streptococci = $6.08{\times}10^5CFU/100mL$. In addition, coliform concentrations were well correlated with suspended solid concentrations and the first flush effects were identified. Settling tests were carried out to estimate removal rate of indicator organisms by sedimentation from CSOs. As microorganisms are discharged in association with suspended solid, ten minutes of settlement can lower 44% of indicator microorganism leading.
BACKGROUND: Agricultural water is known to be one of the major routes in bacterial contamination of fresh vegetable. However, there is a lack of fundamental data on the microbial safety of agricultural water in Korea. METHODS AND RESULTS: We investigated the density of indicator bacteria in the surface water samples from 31 sites collected in April, July, and October 2018, while the groundwater samples were collected from 20 sites within Jeollabuk-do in April and July 2018. In surface water, the mean density of coliform, fecal coliform, and Escherichia coli was 2.7±0.55, 1.9±0.71, and 1.4±0.58 log CFU/100 mL, respectively, showing the highest bacterial density in July. For groundwater, the mean density of coliform, fecal coliform, and E. coli was 1.9±0.58, 1.4±0.37, and 1.0±0.33 log CFU/ 100mL, respectively, showing no significant difference between sampling time. The survival of E. coli O157:H7 were prolonged in water with higher organic matter contents such as total nitrogen (TN), and nitrate-nitrogen (NO3-N). The reduction rates of E. coli O157:H7 in the water showed greater in order of 25, 35, 5, and 15℃. CONCLUSION: These results can be utilized as fundamental data for prediction the microbiological contamination of agricultural water and the development of microbial prevention technology.
Microbial contamination levels in commercial strawberry juices were examined for sanitary indication bacteria, such as aerobic plate count (APC), coliforms, and Escherchia coli, and pathogenic bacteria such as E. coli O157:H7, Salmonella spp., Staphylococcus aureus, and Listeria monocytogenes. APC and coliform count ranged 0-5.2 and $0-2.8\;log_{10}\;CFU/(mL,\;g,\;100cm^{2},\;hand)$, respectively, and 80% strawberry juices were contaminated with E. coli and S. aureus, detected at 19%, was found in employee's hands, strawberries, and strawberry juices, whereas E. coli O157:H7, Salmonella spp, and L. monocytogenes were not detected. These results will provide microbiological information for introduction of Hazard Analysis Critical Control Point (HACCP) system in juice shops.
Eighty-nine different types of commercially salt-fermented fishery products comprising various raw materials were analyzed for total aerobic bacteria, number of coliform bacteria, fecal coliform, and Escherichia coli. The food-poisoning bacterial content of the samples was investigated using next-generation sequencing. The mean mass of total aerobic bacteria in Jeotgal was 6-1.8×109 CFU/g, and that in Aekjeot and Sikhae was 4-2.2×105 CFU/mL and 1.9×105-8.4×108 CFU/g, respectively. Coliform bacteria were detected in 9 (28.1%) of 32 Jeotgal samples; 15 (46.8%) of 32 seasonal Jeotgal samples; and in 5 (55.5%) of 9 Sikhae samples. Fecal coliform and E. coli were not detected in 86 of the 89 samples. Yersinia enterocolitica was detected only in Galchi jeot (salt-fermented hairtail) (1 type) and not in other Jeotgal samples. These results contribute to our knowledge regarding the bacterial stability of salt-fermented fishery products.
The results identified for bacterial flora 174, Vibrio spp.132, and coliform group 183 strains isolated from the areas of last China Sea and Yosu coastal sea during from August 6th. to 14th. 1992 were as follow: 40 strains among the 74 strains of bacteria flora isolated from fast China sea area were Pseudomonas spp.$(54\%)$ and 60 strains among the 100 strains isolated from Yosu sea area were Enterobacteriaceae $(60\%)$. Four strains were Vibrio alginoliticus and one strain of V, parahaemolyticus among 5 strains of genus Vibrio isolated from last China Sea. While 54 strains were V. alginolyticus $(43\%)$ and V, parahaemolyticus $(17\%)$ among 127 strains genus Vibrio isolated from Yosu coastal sea area. Seventy nine strains among the 156 strains of coliform group isolated from Vosu sea area were Escherichia coli I $(51\%)$ and each one strain Citrobacter freundii I and II. 3 strains among 27 strains isolated from last China sea area were E. coli$(11\%)$ and 1 strain of C. freundii I. Coliform group was grouped into 16 types by IMViC system, $44^{\circ}C$, gelatin liquefaction test.
This study was undertaken to investigate the changes of index microorganisms and lactic acid bacteria of traditional Korean fermented vegetables (kimchi) during the ripening and fermentation period. A type of kimchi, baechoo-kimchi, was prepared and stored at $10^{\circ}C$ for 8 days. The numbers of the total aerobic bacteria, psychrotrophilic bacteria, coliform bacteria, and Escherichia coli in the kimchi and also in raw materials of the kimchi (Chinese cabbage, green onion, ginger, garlic, and red pepper) were counted using appropriate media. The highest number of aerobic bacteria was detected from ginger, then red pepper, then garlic, then Chinese cabbage, and lowest number from green onion. The highest number of psychrotrophilic bacteria was detected from red pepper, then Chinese cabbage, then garlic, then ginger, and the lowest number from green onion. Coliforms and E. coli were not detected from all of the raw materials of kimchi. Total aerobic bacteria and lactic acid bacteria of the kimchi showed gradually increasing during ripening and fermentation. The number of psychrotrophilic bacteria showed a similar level in the kimchi. Coliform bacteria were detected at the 3rd, 4th, and 5th day of the kimchi fermentation period, although they were not detected from the raw materials of the kimchi. However, the bacteria were not detected in the kimchi after 6 days. E. coli was not detected in all kimchi samples. The pH value of the kimchi gradually decreased, and acidity increased over fermentation period. This study indicates that there was contamination of coliform bacteria during the process of kimchi preparation, and lactic acid bacteria proliferated in the kimchi during fermentation inhibited the growth of coliforms. More research is needed to evaluate the inhibitory effects of each raw materials of kimchi.
This study evaluated the sanitation management standards for vegetable preparation processes without a cooking stage. The aerobic plate counts (APC), coliform counts, and Escherichia coli of the samples at each production step were analyzed, and microbial growth of the samples stored at different temperatures was measured. The validation was judged in accordance with the microbial criteria stipulated by the British PHLS. After washing and disinfection, the APCs of the two samples decreased to 3~4 log CFU/g in both seasons. Compared to the purchasing stage, the decrease in coliform counts was approximately 0~3 log CFU/g in both seasons; E. coli was not detected. The initial APC and coliform levels of two vegetable samples were 4~5 log CFU/g in both seasons, with an increase of 1 log CFU/g taking more than 6 h at 25℃ and 2 h at 35℃. More than 10 h at 25℃ and 6 h at 35℃ were required to increase the E. coli O157:H7 count by 1~2 log CFU/g for two seasoned samples. In conclusion, washing and disinfection effects and changes in microbial growth during room temperature storage were similar in the two vegetables. Despite the low sanitizing effect of the two vegetables, when cut vegetables were stored under the critical limit within 2 h at two different room temperatures, seasoned lettuce and chicory were at the 'satisfactory' or 'acceptable' levels of PHLS regardless of the storage temperatures. The validation of sanitation management standards applied to vegetable preparation with the no-cook step was approved.
The purpose of this study was to investigate contamination sources of baby leafy vegetables by assessing microbial loads on baby leafy vegetables and agricultural inputs contacted with the vegetables. To estimate microbial loads, fecal indicators (coliform and Escherichia coli) and foodborne pathogens (E. coli O157:H7, Salmonella spp., Staphylococcus aureus, Listeria monocytogenes, and Bacillus cereus) were examined. A total of 126 samples including eleven kinds of leafy vegetables, irrigation water, media, and tools were tested, resulting in coliform contamination observed from most of samples. For E. coli, 10.3% (13/126) of the samples were positive including irrigation water, knife, handler, media, tools, and three kinds of leafy vegetables. B. cereus was detected from 38% (48/126) of the samples including media, tools and three kinds of leafy vegetables. No E. coli O157:H7, Salmonella spp., and L. monocytogenes was detected. This result implies that contacting with agricultural inputs could explain microbial load of baby leafy vegetables.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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