Kim, Min-Jea;Choi, Sun-Hee;Kim, Tae-Sung;Park, Min-Hye;Lim, Hee-Rae;Oh, Kyung-Hee;Kim, Tae-San;Lee, Min-Hyo;Ryu, Ki-Hyun
The Plant Pathology Journal
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v.20
no.3
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pp.206-211
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2004
Transgenic Nicotiana benthamiana plants harboring coat protein (CP) gene of Zucchini green mottle mosaic virus (ZGMMV) were generated for virus-resistant screening and complementation analysis of related viruses for environmental safety assessment (SA) of living modified organism (LMO) purposes. Transformation of leaf disc of N.benthamiana was performed by using Agrobacterium-mediated method and the pZGC-PPGA748 containing the ZGMMV CP and NPTII genes. Two kinds of transgenic homozygous groups, virus-resistant and virus-susceptible N.benthamiana lines, were obtained by screening of challenging homologous virus for Tl generations. These two pathologically different lines can be useful for host-virus interactions and LMO environmental SA.
The coat protein (CP) gene of Apple mosaic virus (ApMV), a member of the genus Ilarvirus, was selected for the design of virus-specific primers for amplification and molecular detection of the virus in cultivated apple. A combined assay of reverse transcription and polymerase chain reaction (RT-PCR) was performed with a single pair of ApMV-specific primers and crude nucleic acid extracts from virus-infected apple for rapid detection of the virus. The PCR product was verified by restriction mapping analysis and by sequence determination. The lowest concentration of template viral RNA required for detection was 100 fg. This indicates that the RT-PCR for detection of the virus is a 10$^3$times more sensitive, reproducible and time-saving method than the enzyme-linked immunosorbent assay. The specificity of the primers was verified using other unrelated viral RNAs. No PCR product was observed when Cucumber mosaic virus (Cucumovirus) or a crude extract of healthy apple was used as a template in RT-PCR with the same primers. The PCR product (669 bp) of the CP gene of the virus was cloned into the plasmid vector and result-ant recombinant (pAPCP1) was selected for molecule of apple transformation to breed virus-resistant transgenic apple plants as the next step. This method can be useful for early stage screening of in vitro plantlet and genetic resources of resistant cultivar of apple plants.
Park, Won-Mok;Park, Seung-Kook;Park, Sun-Hee;Ryu, Ki-Hyun;Park, Chang-Won;Park, Jang-Kyung
The Plant Pathology Journal
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v.18
no.6
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pp.317-322
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2002
An isolate of Odontoglossum ringspot virus (ORSV) was identified from Cymbidium var. 'Grace Kelly' showing ringspot symptom on the floral and leaf parts, and was denoted as cymbidium ringspot isolate (ORSV-CR). In ultrathin sections of leaf tissue from diseased Cymbidium plants, clusters of virus particles were observed in the vacuole and cytoplasm. In the Western blot hybridization, the virus strongly reacted with ORSV-specific antiserum indistinguishable from ORSV, suggesting that the vims is serologically identical with ORSV. ORSV-CR sap was inoculated onto 20 species belonging to 12 genera. Systemic infection occurred in Cymbidium sp., Nicotiana benthamiana and N. clevelandii, the host of which was found to be different from that of ORSV-Cy, the Korean strain of ORSV. The analysis of coat protein (CP) gene showed that ORSV-CR was highly homologous to the known isolates of ORSV, with over 95.6% identity in amino acid level. Phylogenetic tree analysis of CP showed that ORSV-CR was clustered with the known ORSV isolates, suggesting that ORSV is a very stable tobamovirus.
Talaromyces flavus mediates the transmission of Apple stem grooving virus (ASGV) to several host plants. The ASGV-F carried by T.flavus was partially purified from the fungus. Based on sequence analysis and homology searches, this is closely related to other ASGV strains isolated from host plants. The partially purified viral coat protein (CP) was separated on a 12% SDS-polyacrylamide gel and analyzed by Western blotting with an ASGV anti-serum. A single band at 28 kDa reacted with the ASGV anti-serum. The deduced amino acid sequence of the ORF-l showed conserved domains, including an NTP-binding helicase motif, GFAGSGKT. The amino acid sequences of the helicase and CP showed strong homology to other ASGV strains (98%). All ASGV isolated from plants and fungi had salt bridges composed of the CP and the GFAGSGKT motif of the helicase, which are commonly conserved in plant viruses. These results suggest that ASGV-F is one of ASGV strains isolated from T.flavus based on sequence similarity as well as the serological analysis of CP.
Potato virus Y (PVY) is one of the most important viruses in many field crops in Korea. In this study, 31 PVY isolates were isolated from infected potato (Solanum tuberosum), tobacco (Nicotiana tabacum), pea (Pisum sativum), and weeds (Veronica persica, Lamium amplexicause and Capsella bursa-pastoris) showing different mosaic symptoms in Jeonbuk, Chungnam, Gangwon, and Gyeongbuk areas in Korea. The 640 nucleotide region containing the C-terminal portion of coat protein (CP) gene and 3'non-translated region (NTR) was amplified by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) using PVY-specific oligonucleotide primers. Sequence analyses of the amplified DNA fragments showed that the C-terminal portion of CP gene was not significantly different from that of previously reported PVY strains from potato (PVY-OK and -T) and tobacco (PVY-VN) in Korea. Homologies of the deduced CP amino acid sequences were 93.3-99.0% to corresponding regions of the other PVY strains including PV $Y^{N}$, PV $Y^{o}$ , PV $Y^{OK}$ , PV $Y^{T}$ , and PV $Y^{VN}$ . In contrast the sequences located at the 3'-NTR showed more diverse sequence homologies (76.4-99.7%). These results indicate that the C-terminal portion of the CP gene was relatively conserved while sequences at the 3'NTR were more diverse and variable over the host species and the regions where they were isolated.e isolated.
The 3,000 nucleotides of 3'-terminal region of the genomic RNA of a new isolate of carlavirus from a Korean native lily (Lilum lancitoium) was cloned and its nucleotide sequences were determined. The coat protein (CP) gene of the virus showed 72.0% to 72.8% nucleotide sequence identities and 86.9% to 88.0% amino acid sequence identities with those of the four strains (two Korean, one Dutch, and one Japanese isolates) of lily symptomless virus (LSV). Interestingly, different amino acid sequences between the new isolate and LSV strains were located at the N-terminal region of the CP. Pairwise amino acid sequence comparison of the CP gene revealed sequence identities of 22.0% to 71.1% between the virus and other 9 carlavirus species. The 25 kDa and 12 kDa proteins genes of the virus share 30.7% to 76.3% and 31.1% to 85.8% amino acid sequence identities, respectively, with those of 8 other carlaviruses. The 16 kDa protein gene of the virus shares 16.7% to 72.9% amino acid sequence identities with that of 9 other carlaviruses. These data indicate that the virus, designated as lily latent virus (LiLV), is a distinct of the Carlavirus genus and distinguished from the known strains of LSV.
Seo, Jang-Kyun;Hwang, Sung-Hyun;Kang, Sung-Hwan;Choi, Hong-Soo;Lee, Su-Heon;Sohn, Seong-Han;Kim, Kook-Hyung
The Plant Pathology Journal
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v.23
no.4
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pp.281-286
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2007
Interactions between viral proteins and host proteins are essential for virus replication. Especially, translation of viral genes completely depends on the host machinery. In potyviruses, interactions of genome-linked viral protein (VPg) with host translation factors including eIF4E, eIF(iso)4E, and poly(A)-binding protein (PABP) has previously been characterized. In this study, we investigated interactions between Soybean mosaic virus (SMV) viral proteins and host translation factors by yeast two-hybrid system. SMV VPg interacted with eIF4E, eIF(iso)4E, and PABP in yeast two-hybrid system, while SMV helper component proteinase (HC-pro) interacted with neither of those proteins. The interaction between SMV NIb and PABP was also detected. These results are consistent with those reported previously in other potyviruses. Interestingly, we found reproducible and specific interactions between SMV coat protein (CP) and PABP. Deletion analysis showed that the region of CP comprising amino acids 116 to 206 and the region of PABP comprising amino acids 520 to 580 are involved in CP/PABP interactions. Soybean library screening with SMV NIb by yeast two-hybrid assay also identified several soybean proteins including chlorophyll a/b binding preprotein, photo-system I-N subunit, ribulose 1,5-biphosphate carboxylase, ST-LSI protein, translation initiation factor 1, TIR-NBS type R protein, RNA binding protein, ubiquitin, and LRR protein kinase. Altogether, these results suggest that potyviral replicase may comprise a multi-protein complex with PABP, CP, and other host factors.
To understand the molecular structure and pathogenesis mechanism of Korean garlic viruses, we have isolated cDNA clones for garlic viruses. The partial nucleotide sequences of 24 cDNA clones were determined and those of five clones containing poly(A) tail were compared with sequences of other plant viruses. One of these clones, V9, has a primary structure similar to the carlavirus group, suggesting that the clone V9 derived from a part of garlic latent virus (GLV). Northern blot analysis with the clone V9 as a probe demonstrated that GLV genome is 8.5 knt long and has a poly(A) tail. The clone V9 encodes coat protein (CP) of 33 kDa and nucleic acid binding protein of 10 kDa in different reading frame. The hexanucleotide motif, 5'-ACCUAA, which is conserved in the 3' noncoding region arid was proposed to be a cis-acting element involved in the production of negative strand genomic RNA was noticed. Complementary sequence to the hexanucleotide motif, 5'-TTAGGT, is also found in the positive strand of V9 RNA. The putative CP gene was cloned into the pRSET-A expression vector and expressed in E. coli BL21. The expressed recombinant V9CP protein was purified by $Ni^{2+}$ NTA affinity chromatography. The anti-V9CP antibody recognizes 34 kDa polypeptide which could be CP of GLV in infected garlic leaf extract. Immunoblot and Northern blot analysis of various cultivars shows wide occurrence of GLV in Korean garlic plants.
Genetically modified (GM) pepper H15 containing the gene for cucumber mosaic virus (CMV) coat protein (CP) and its control line non-GM pepper P2377 were investigated for their allergic risk. Amino acid sequence of the inserted gene product CMV-CP was compared with those of known allergens. No known allergen had greater than 35% amino acid sequence homology over an 80 amino acid window or more than 8 consecutive identical amino acids. Protein patterns of GM and non-GM pepper extracts were evaluated by SDS-PAGE, which showed similar distribution of protein bands for both GM and non-GM pepper. Antigen-antibody reactions were compared between GM and its non-transgenic parental control. ELISA and immunoblot analysis of sera from allergic patients showed some IgE reactivity; however, no differences were observed between GM pepper H15 and P2377. We therefore conclude that CMV-CP is less likely to be an allergen; the protein composition and allergenicity of the GM pepper H15 is not different from that of P2377 and safe as a commercial host.
We isolated the Cucumber green mottle mosaic virus(CGMMV) particles from watermelon leaves and designated as CGMMV-HY1 as a watermelon isolate and attempted to characterize the pathogenic isolate responsible for such an epidemic in watermelon and also to monitor dominant viral isolates in greenhouse. The watermelon plants infected with CGMMV generally showed mottle mosaic, mosaic, growth stunting, necrosis and deformed fruit. The reactions of indicator plants to CGMMV-HY1 were the local lesions on Nicotiana tabacum cv. White Burley, Nicotiana tabacum cv. Samsun, and Chenopodium amaranticola, and the mosaic symptoms only on Cucumis sativus, but the CGMMV-HY1 did not infect Nicotiana sylvesytis, Datura stramonium, Chenopodium quinoa, and Petunia hybrida. Purified virus particles were rod-shaped and about 300 nm long. The coat protein (CP) of purified CGMMV-HY1 was single band with molecular weight of about 16.5 kDa which was confirmed by western blot analysis probed with monoclonal antibody of CGMMV-HY1. The genomic and subgenomic RNAs of 6.4 kb and 0.75 kb were revealed by the electrophoresis on 1.2% formaldehydedenatured agarose gel. Viral and complementary CGMMV-specific primer sets were designed for spanning the genome using previously reported CGMMV sequences. A 464bp of CP gene of CGMMV-HY1 was amplified by RT-PCR and cloned into PGEM-T easy vector. The nucleotide sequence of CP gene of CGMMV-HY1 shared 98%, 99%, and 100% identities with that of CGMMV strains W, KOM, and KW respectively. Based on these results, we identified CGMMV-HY1 as a CGMMV isolate of watermelon, a member of Tobamovirus.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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