KSII Transactions on Internet and Information Systems (TIIS)
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제2권2호
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pp.120-133
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2008
This paper presents a novel approach for facial motion tracking and facial expression cloning to create a realistic facial animation of a 3D avatar. The exact head pose estimation and facial expression tracking are critical issues that must be solved when developing vision-based computer animation. In this paper, we deal with these two problems. The proposed approach consists of two phases: dynamic head pose estimation and facial expression cloning. The dynamic head pose estimation can robustly estimate a 3D head pose from input video images. Given an initial reference template of a face image and the corresponding 3D head pose, the full head motion is recovered by projecting a cylindrical head model onto the face image. It is possible to recover the head pose regardless of light variations and self-occlusion by updating the template dynamically. In the phase of synthesizing the facial expression, the variations of the major facial feature points of the face images are tracked by using optical flow and the variations are retargeted to the 3D face model. At the same time, we exploit the RBF (Radial Basis Function) to deform the local area of the face model around the major feature points. Consequently, facial expression synthesis is done by directly tracking the variations of the major feature points and indirectly estimating the variations of the regional feature points. From the experiments, we can prove that the proposed vision-based facial expression cloning method automatically estimates the 3D head pose and produces realistic 3D facial expressions in real time.
Clostridium thermocellum의 cellulase 유전자를 pBR322를 이용하여 Escherichia coli에 cloning하였다. 삽입된 Hind III 분해 DNA 단편의 크기는 약 1. 8kb였으며 이미 알려진 C. themocellum의 cellulase gene과는 다른 제한효소 분해위치를 가진 새로운 cellulase gene으로서 E, coli에서 CMCase와 FPase 활성을 나타내었다. 이 유전자는 생육의 전시기를 통해 표현되었고 고온성 cellulase의 구조적, 기능적 특성이 그대로 유지되었을 뿐만 아니라 상당량이 세포밖으로 분비되었다.
Lee, Eun Ji;Ji, Kuk Bin;Lee, Ji Hye;Oh, Hyun Ju;Kil, Tae Young;Kim, Min Kyu
Journal of Animal Science and Technology
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제63권2호
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pp.281-294
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2021
Although somatic cell nuclear transfer (SCNT) is frequently employed to produce cloned animals in laboratories, this technique is expensive and inefficient. Therefore, the handmade cloning (HMC) technique has been suggested to simplify and advance the cloning process, however, HMC wastes many oocytes and leads to mitochondrial heteroplasmy. To solve these problems, we propose a modified handmade cloning (mHMC) technique that uses simple laboratory equipment, i.e., a Pasteur pipette and an alcohol lamp, applying it to porcine embryo cloning. To validate the application of mHMC to pig cloning, embryos produced through SCNT and mHMC are compared using multiple methods, such as enucleation efficiency, oxidative stress, embryo developmental competence, and gene expression. The results show no significant differences between techniques except in the enucleation efficiency. The 8-cell and 16-cell embryo developmental competence and Oct4 expression levels exhibit significant differences. However, the blastocyst rate is not significantly different between mHMC and SCNT. This study verifies that cloned embryos derived from the two techniques exhibit similar generation and developmental competence. Thus, we suggest that mHMC could replace SCNT for simpler and cheaper porcine cloning.
The gene encoding MPB83 from Mycobacterium bovis Vallee111 chromosomal DNA was amplified by using polymerase chain reaction (PCR) technique, and the PCR product was approximately 600bp DNA segment. Using T-A cloning technique, the PCR product was cloned into pGEM-T vector and the cloning plasmid pGEM-T-83 was constructed successfully. pGEM-T-83 and pET28a(+) were digested by BamHI and EcoRI double enzymes. The purified MPB83 gene was subcloned into the expression vector pET28a(+), and the prokaryotic expression vector pET28a-83 was constructed. Plasmid containing pET28a-83 was transformed into competence Escherichia coli BL21 (DE3). The bacterium was induced by isopropyl-$\beta$-D-thiogalactopyranoside (IPTG) and its lysates were loaded directly onto sodium dodecyl sulphate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE), approximately 26 kDa exogenous protein was observed on the SDS-PAGE. The protein was analyzed using Western-blotting. The results indicated that the protein was of antigenic activity of M. bovis. The results were expected to lay foundation for further studies on the subunit vaccine and DNA vaccine of MPB83 gene in their prevention against bovine tuberculosis.
Isolation, cloning and sequencing of red seabream (Pagrus major) somatolactin (rsbSL) cDNA from pituitary gland revealed an open reading frame of 693 bp coding for a pre-growth hormone of 231 amino acids with a 22 amino acid putative signal peptide. Deduced amino acid sequence showed that there was one possible N-glycosylation site at Asn$^{145}$ and seven Cys residues (Cys$_{29}$ , Cys$^{39}$ , Cys$^{66}$ , Cys$^{89}$ , Cys$^{205}$ , Cys$^{222}$ , Cys$^{230}$ ). Except Cys$^{66}$ , others may be involved in disulfide bond formation. The rsbSL presented a 93% amino acid sequence identity with the SL of gilthead seabream (Sparus aurata) and contained the conserved hormone domain region. Expression of rsbSL in E. coli (BL2l) cells and gel analysis revealed a higher molecular weight for rsbSL than expected theoretically, implying posttranslational modifications.
The Salmonella typhimurium cdd gene encoding cytidine deaminase (cyti-dine/2'-deoxycytidine aminohydrolase; EC 3.5.4.5.) was isolated through shotgun clon-ing by complementation of the E. coli odd mutation. By subsequent deletion and sub-cloning from the original 3.7 Kb of EcoRI insert (pSAMI), the precise region of the cdd structural gene is located around the BglII site in the middle part of 1.7 Kb of NruI/PvuI segment. The 1.7 Kb containing odd gene wag subcloned to the pUC18 vector and the nucleotide sequence of the cdd gene was determined. When the putative ribosorne-binding site (Shine-Dalgarno sequence) and initiation codon were predicted to be GAGG at the position 459 and ATG at the position 470, respectively, there was an open reading frame of 885 nucleotides, encoding an 294 amino acid protein. The cdd gene expression in E. coli JF611/pSAMI was amplified about 50 fold compared to that of the wild type. The cdd gene expression was maintained in the stationary phase after rea-ching the peak in the late logarithmic phase.
토양에서 분리한 알카리 내성 Bacillus sp. YA-14 의 promoter를 Bacillus promoter probe vector인 pPL703을 이용하여 Bacillus subtilis내에 cloning 하였다. 얻어진 형질전환체 중 promoter 활성이 가장 높은 균주의 CAT 비활성은 8.07로 expression vector인 pPL708의 CAT 비활성보다 2.5배 이상 높았으며 대수 증식기가 끝난 이후에 그 활성이 급격하게 증가하였다. 재조합 plasmid내의 삽입 DNA 단편은 그 크기가 2.8kb이고 제한효소 BamHI, Sal I 인식부위가 각각 한군데 존재하였다.
미생물중 urease생성능이 아주 강한 B. pasteurii의 Hind III partial digest 된 chromosomal DNA를 E. coli-B. subtilis bifunctional plasmid vector pGR 71으로 E. coli RR1 균주에 cloning 하므로써 그 urease gene을 expression시킬 수 있었다. 그러나 B. subtilis에서는 insertion DNA fragment의 deletion으로 expression되지 않았다. Cloning된 E.coli RR1 균주로부터 분리 정제한 urease gene함유 Plasmid(pGU66)의 restriction map을 작성하여 본 결과 7.1 Mdal의 insertion fragment가 삽입된 12.6Mdal의 plasmid에 Hind III, Bgl II, Xba I, Sal I등 몇 개의 cleavage site 위치를 찾을 수 있었다. Cloning된 E. coli의 urease는 periplasmic space에 많은 비율로 축적되며, 그 효소학적 성질은 donor인 B.pasteurii의 그것과 매우 유사하였다.
Schwanniomyces castelli CBS 2863의 glucoamylase 유전자를 Saccharomyuces cerevisiae에 cloning하고 발현시켰다. Southern blot 분석결과, 형질전환체의 glucoamylase 유전자는 Sch. castellii genomic DNA로부터 나온 것임을 확인하였고 5.1 혹은 1.3kb의 Sch.castellii 유전자에 해당되는 DNA 절편이 S.cerevisiae 에서 관찰되지는 않았다. S.cerevisiae의 형질전환체의 glucoamylase 활성은 Sch. castellii의 그것에 비해 2,000배 정도 낮았고 E.coli에서는 발현되지 않았다. Sch.castellii의 glucoamylase와 동일한 특성과 분자량을 가지고 있음을 알 수 있었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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