For the expression of CGTase gene(cgtS) kom Bacillus stearothemophilus NO2 in Saccharomyces cerevisiae, cgtS gene was subcloned into the Eschepichia coll-yeast shuttle vector, pVT103-U. The constructed plasmid, pVT-CGTS was introduced to 5. cemi-siae 2805 cell, and then the cgtS gene under the control of adhl promoter was successfully expressed in the yeast transformant and 87% of the total activity was detected into the fermentation medium. Therefore, the signal peptide of B. stearothemephilus NO2 CeTase showed high secretion efficiency in 5. cerevisiae. Optimal conditions of the recombinant yeast cell f3r expression of CGTase was achieved, when 5. cerevisiae 2805/pv7-CGTS was cultivated on YP medium at 2% dextrose, pH 5.5,$30^{\circ}C$ and the expression level of CGTase was 0.624units/mL for 48 h culture.
Kim, Hae-Yun;Lee, Sang-Hyeon;Kim, Hae-Nam;Min, Bok-Kee;Baik, Hyung-Suk;Jun, Hong-Ki
Korean Journal of Microbiology
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v.44
no.1
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pp.74-79
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2008
The purpose of this study is to clone cgt gene from Paenibacillus sp. JB-13 and to overexpress the protein in E. coli. For this purpose, the cgt gene was amplified from Paenibacillus sp. JB-13 genomic DNA by PCR using degenerate oligonucleotide primers. The sequence analysis results showed that the cgt gene from Paenibacillus sp. JB-13 has 98% homology with the cgt gene of Bacillus sp. To overexpress the protein, the cgt gene was cloned into pEXP7 expression vector and transformed into E. coli. The production of CGTase by recombinant E. coli was optimized under following conditions: 0.5% glucose, 3.0% polypeptone, 0.3% $K_2HPO_4$, 0.5% NaCl, and 7.0 of initial pH, 2.0% of inoculum, $37^{\circ}C$ of culture temperature for 14 hr. And the optimal agitation was found at 0.1 vvm. The synthesis of 2-O-${\alpha}$-D-Glucopyranosyl L-Ascorbic acid (AA-2G) using the CGTase expressed in E. coli was identified as AA-2G by HPLC and HPLC confirmed that treating AA-2G made by cloned CGTase with ${\alpha}$-glucosidase substantially produced AA and glucose.
The soybean cyst nematode (Heterodera glycines Inchinoe; SCN) is a devastating pest of soybean and is responsible for significant losses in yield. The use of resistant cultivars is the effective method to reduce or eliminate SCN damage. The objective of this research is to identify AFLP markers linked to the SCN resistant genes. Bulked genomic DNA was made from resistant and susceptible genotypes to SCN and a total of 19 primer combinations were used. About 31 fragments were detected per primer combination. The banding patterns were readily distinguished in resistant and susceptible bulked genotypes. Polymorphic fragments were detected between resistant and susceptible bulked genotypes in the primer combination of CGT/GGC, CAG/GTG and CTC/GAG. In primer combinations of CGT/GGC and CAG/GTG, bulked resistant genotype produced a polymorphic bands. However, in primer of CTC/GAG, bulked susceptible genotype produced a polymorphic fragments. Three AFLP markers identified as a polymorphic fragments between bulked genomic DNA were mapped in 85 F2 population. Among them, only two markers, CGT/GGC and CTC/GAG, was linked and was mapped. Broad application of AFLP marker would be possible for improving resistant cultivars to SCN.
To overproduce the cyclodextrin glucanotransferase(CGTase) of Bacillus stearothermophilus NO2 in B. subtilis, the pJH-CGTl plasmid (8.14 kb) was constructed, in which the ORF of CGTase gene could be transcribed by strong constitutive promoter, P$\_$JH/. To overproduce CGTase from a recombinant B. subtilis, the effect of media on the cell growth and expression level of CGTase were investigated with various media (LB, 2${\times}$LB, 5% molasses+2% CSL, CS, LBG) in the flask culture. Among them, [5% molasses+2% CSL] medium revealed the maximum expression level of CGTase with 1.8 unit/$m\ell$ at 9 hr culture. In the batch culture on [10% molasses+5% corn steep liquor] medium the expression level of CGTase, the secretion efficiency, and plasmid stability were about 4.2 unit/$m\ell$, 90% and 90%, respectively, at 30 hr culture. The cell growth and expression level in the fermenter culture with the industrial molasses medium were increased by 2-folds over the flask culture.
The prevalence of thermophilic Campylobacter (C.) spp. in stray, breeding, and household dogs was 25.2, 12.0, and 8.8%, respectively. C. jejuni and C. upsaliensis were the predominant Campylobacter spp. from household dogs. cdtA, cdtB, and cdtC were detected by PCR in all isolates. Despite the high cytolethal distending toxin (CDT) gene prevalence, only 26 (31%) C. jejuni strains and one (15.3%) C. coli strain showed evidence of CDT production in HEp-2 cell cytotoxicity assays. Virulence-associated genes detected in the C. jejuni and C. coli isolates were cadF, dnaJ, flaA, racR, ciaB, iamA, pldA, virB11, ceuE, and docC. cadF, dnaJ, flaA, and ceuE were found in all C. jejuni and C. coli isolates. When detecting Guillain-Barr$\acute{e}$ syndrome-associated genes (galE, cgtB, and wlaN), galE was identified in all isolates. However, cgtB and wlaN were more prevalent in C. jejuni isolates from humans than those from dogs. Adherence and invasion abilities of the C. jejuni and C. coli strains were tested in INT-407 cells. A considerable correlation (adjusted $R^2$= 0.678) existed between adherence and invasion activities of the Campylobacter spp. isolates.
Kim, Chang-Sup;Han, Nam-Soo;Kweon, Dae-Hyuk;Seo, Jin-Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.9
no.2
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pp.230-233
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1999
A plasmid vector was constructed for the expression and secretion of Bacillus macerans cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) in Bacillus subtilis. The vector, pUBACGT, was composed of the ribosome-binding sequence, signal sequence, and cgt gene from B. macerans under the control of amyR2, the promoter of amyE gene coding for $\alpha$-amylase from B. subtilis var. natto. Bacillus subtilis LKS88, a mutant strain lacking genes for an amylase and two proteases, was used as a host for the transformation of the plasmid vector. The transformants were selected on kanamycin-containing Luria-Bertani plates. The starch hydrolyzing activity was observed on the starch-containing plates by the iodine method and cyclodextrin-forming activity was detected in the culture medium. A SDS-PAGE analysis showed that most of the expressed CGTase in the recombinant B. subtilis was secreted into the medium at a high expression level.
$\beta$-Cyclodextrin glucanotransferase ($\beta$-CGTase) was overproduced extracellularly using recombinant E. coli by transforming the plasmid pECGT harboring a secretive signal peptide. The $\beta$-CGTase gene of alkalophilic Bacillus firmus var alkalophilus was inserted into the high expression vector pET20b(+) containing a secretive pelB signal peptide, and then transformed into E. coli BL2l(DE3)pLysS. The optimum culture conditions fer the overproduction of $\beta$-CGTase were determined to be TB medium containing 0.5% (w/v) soluble starch at post-induction temperature of $25^{\circ}C$. A significant amount of $\beta$-CGTase, up to 5.83 U/ml, which was nine times higher than that in the parent strain B. firmus var. alkalophilus, was overproduced in the extracellular compartment. A pH-stat fed-batch cultivation of the recombinant E. coli was also performed to achieve the secretive overproduction of $\beta$-CGTase at a high cell density, resulting in production of up to 21.6 U/ml of $\beta$-CGTase.
Kwon, Mi-Jung;So-Lim Park;Sung-Koo Kim;Soo-Wan Nam
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.12
no.6
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pp.1002-1005
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2002
The effects of GroEL/ES chaperone on the production of soluble form of B. macerans cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) in recombinant E. coli were investigated. The cgt gene and groEL/ES genes are under the control of T7 promoter and Pzt-1 promoter, respectively. The optimal concentrations of inducers, IPTG and tetracycline, were found to be 1.0 mM and 10 ng/ml, respectively. When tetracycline and IPTG were added at the early exponential phase (2h) and exponential phase (3h) of growth, respectively, about 1.5-fold increase of soluble CGTase activity and 1.6-fold increase of soluble CGTase protein were obtained. An SDS-PAGE analysis revealed that about $37.2\%$ of total CGTase protein was in the soluble fraction when GroEL/ES chaperone was overexpressed.
The cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) gene from Bacillus stearothermophilus NO2 was expressed in Saccharomyces cerevisiae 2805 under the adhl promoter. The CGTase was purified from S. cerevisiae 2805/pVT-CGTS. The purified enzyme exhibited a optima of activity around pH 7.0 and $65^{\circ}C$. Thermal stability of the enzyme was increased fairly as compared with the CGTase of B. stearothermophilus NO2. The conversion yield of cyclodextrin (CD) and the production ratio of $\alpha$-, $\beta$,-, ${\gamma}$-CD from starch were showed similarly aspect to the CGTase of B. stearothermophilus NO2.
Lee Young-Hoon;Lee Sung-Ho;Park Ki-Hoon;Choi Young-Ju;Jeong Yong-Kee;Gal Sang-Wan
Journal of Life Science
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v.16
no.2
s.75
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pp.274-281
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2006
A fibrinolytic enzyme gene was isolated from Bacillus subtilis BB-1 by PCR method. Primers for PCR cloning were designed according to pre-identified gene for fibrinolytic enzymes from B. subtilis. The primer sequences were 5'-CGG ATC CGT GAG AGG CAA AAA GGT G-3' and 5'-TGA ATT CTT AAT GTG CTG CTG CTT GTC C-3' as concensus sequences of the fibrinolytic genes of Bacillus species. The PCR product was 1,145 bp and the sequence homology was 99% with nattokinase gene isolated from Japanese natto. The cloned fibrinolytic gene was reconstructed in Bacillus-E. coli shuttle vector, pEB for bulk-production. The fibrinolytic enzyme was purified by FPLC from the cloned B. subtilis 168. The optimum pH and temperature of the enzyme were 7.0 and $35^{\circ}C$, respectively. The fibrinolytic enzyme did not show any activity toward to skim milk, gelatin, casein and blood agar plate. The enzyme specific polyclonal antibody was prepared in rabbit for further assays such as detection of the gene expression in plant cells. This means that the enzyme may be used for health-care such as thrombosis without any hamful effects in the blood vessel.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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