Seo, J.K.;Park, T.S.;Kwon, I.H.;Piao, M.Y.;Lee, C.H.;Ha, Jong K.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.26
no.1
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pp.50-58
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2013
A facultative bacterium producing cellulolytic and hemicellulolytic enzymes was isolated from the rumen of a native Korean goat. The bacterium was identified as a Bacillus licheniformis on the basis of biochemical and morphological characteristics and 16S rDNA sequences, and has been designated Bacillus licheniformis JK7. Endoglucanase activities were higher than those of ${\beta}$-glucosidase and xylanase at all temperatures. Xylanase had the lowest activity among the three enzymes examined. The optimum temperature for the enzymes of Bacillus licheniformis JK7 was $70^{\circ}C$ for endoglucanase (0.75 U/ml) and $50^{\circ}C$ for ${\beta}$-glucosidase and xylanase (0.63 U/ml, 0.44 U/ml, respectively). All three enzymes were stable at a temperature range of 20 to $50^{\circ}C$. At $50^{\circ}C$, endoglucanse, ${\beta}$-glucosidase, and xylanase had 90.29, 94.80, and 88.69% residual activity, respectively. The optimal pH for the three enzymes was 5.0, at which their activity was 1.46, 1.10, and 1.08 U/ml, respectively. The activity of all three enzymes was stable in the pH range of 3.0 to 6.0. Endoglucanase activity was increased 113% by $K^+$, while $K^+$, $Zn^+$, and tween 20 enhanced ${\beta}$-glucosidase activity. Xylanase showed considerable activity even in presence of selected chemical additives, with the exception of $Mn^{2+}$ and $Cu^{2+}$. The broad range of optimum temperatures (20 to $40^{\circ}C$) and the stability under acidic pH (4 to 6) suggest that the cellulolytic enzymes of Bacillus licheniformis JK7 may be good candidates for use in the biofuel industry.
An alkalophilic bacterium, the strain AC-711 as a potent producer of alkaline cellulase, was selected among many isolates from soil environments. Morphological, physiological and chemical characteristics of the strain AC-711 suggested that it belongs to the genus Pseudomonas according to the Bergey's Manual of Systematic Bacteriology, however the G+C mol% (54.43) of its chromosomal DNA is lower than the normal values of the genus. The major cell wall fatty acids were determined as 15:0 and 17:0 anteiso. The production of alkaline CMCase by the strain was maximal when grown on the mediun containing 1% carboxymethyl cellulose, 0.1% $KH_2PO_4$, 0.02% $CoCl_2$, 0.02% Tween 80, 0.5% $Na_2CO_3$, 0.8% yeast extract, pH 10.3 at $30^{\circ}C$ for 3 days, and the most of enzyme was excreted into culture mediun.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.16
no.2
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pp.128-135
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1987
Extracellular ${\alpha}-amylase$, ${\beta}-amylase$ and glucoamylase produced by a thermophilic and cellulolytic bacterium, Herpetosiphon geysericola CUM 317, were partially purified by salting out with ammonium sulfate and by chromatography on a DEAE-cellulose column and on a CM-cellulose column. The Km values of ${\alpha}-amylase$, ${\beta}-amylase$ and glucoamylase for potato starch were $2.31mg/m{\ell}$, $7.69mg/m{\ell}$, and $8.33mg/m{\ell}$. The molecular weights of ${\alpha}-amylase$, ${\beta}-amylase$ and glucoamylase were calculated to be about 84000 dalton, 76000 dalton and 80000 dalton, respectively.
Cellulomanas sp. CS 1-1 was studied for its morphological, physiological and biochemical characteristics, together with DNA homology and fatty acid pattern to elucidate its taxonomical position in the species level. Colony morphology of CS1-1 exhibited circular form, opaque, convex, entire edge and pale yellow. Cells were of rod with the size of $0.3{\sim}0.5{\times}0.8{\sim}1.2{\mu}m$, while coryneforms were formed at the early stage of culture. D-ribose, raffinose, rhamnose, acetate, propionate, L-lactate, D-gluconate, aspartate and proline were not utilized as a sole source of carbon, whereas saccharose, arabinose, and amlyose were utilized. Biochemical characteristics of CS1-1 were Gram positive, catalase positive, oxidase negative, nonmotile, facultative anaerobic, mesophilic and G+C content of 74.7 mol %. The major fatty acid and menaquinone were 12-methyltetradecanoic acid(anteiso-$C_{15:1}$) and MK-$9(H_4)$, respectively. These results were correspondent with the characteristics reported for member of the genus Cellulomonas. The strain CS 1-1 exhibited a high level of DNA homology as 70% with C. uda ATCC491, compared to those of 54~59% with C. fimi ATCC 15724, 46~48% with C. biazotea, C. gelida and C. bibula. Finally, strain CS1-1 could be classified as a novel species belongs to C. uda.
Miguel, Michelle A.;Lee, Sung Sill;Mamuad, Lovelia L.;Choi, Yeon Jae;Jeong, Chang Dae;Son, Arang;Cho, Kwang Keun;Kim, Eun Tae;Kim, Sang Bum;Lee, Sang Suk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.29
no.7
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pp.1083-1095
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2019
Butyrate is known to play a significant role in energy metabolism and regulating genomic activities that influence rumen nutrition utilization and function. Thus, this study investigated the effects of an isolated butyrate-producing bacteria, Clostridium saccharobutylicum, in rumen butyrate production, fermentation parameters and microbial population in Holstein-Friesian cow. An isolated butyrate-producing bacterium from the ruminal fluid of a Holstein-Friesian cow was identified and characterized as Clostridium saccharobutylicum RNAL841125 using 16S rRNA gene sequencing and phylogenetic analyses. The bacterium was evaluated on its effects as supplement on in vitro rumen fermentation and microbial population. Supplementation with $10^6CFU/ml$ Clostridium saccharobutylicum increased (p < 0.05) microbial crude protein, butyrate and total volatile fatty acids concentration but had no significant effect on $NH_3-N$ at 24 h incubation. Butyrate and total VFA concentrations were higher (p < 0.05) in supplementation with $10^6CFU/ml$ Clostridium saccharobutylicum compared with control, with no differences observed for total gas production, $NH_3-N$ and propionate concentration. However, as the inclusion rate (CFU/ml) of C. saccharobutylicum was increased, reduction of rumen fermentation values was observed. Furthermore, butyrate-producing bacteria and Fibrobacter succinogenes population in the rumen increased in response with supplementation of C. saccharobutylicum, while no differences in the population in total bacteria, protozoa and fungi were observed among treatments. Overall, our study suggests that supplementation with $10^6CFU/ml$ C. saccharobutylicum has the potential to improve ruminal fermentation through increased concentrations of butyrate and total volatile fatty acid, and enhanced population of butyrate-producing bacteria and cellulolytic bacteria F. succinogenes.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.14
no.2
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pp.188-191
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1985
A thermophilic and cellulolytic bacterium, Herpetosiphon geysericola CUM 317 isolated from the compost, produced ${\alpha}-amylase,\;{\beta}-amylase$, and glucoamylase. Mutual relationships on the production of the three amylases were studied by changing the cultivation conditions. ${\alpha}-Amylase$ and glucoamylase were produced highly after 40 hrs on wheat bran medium at $50^{\circ}C$ and after 30 hrs on liquid medium at $40^{\circ}C$, though ${\beta}-amylase$ was produced best at 10 hrs of initial cultivation phase. The production of the amylases was generally repressed by the addition of carbon sources in liquid medium containing polypeptone. ${\alpha}-Amylase$ production was enhanced relatively by the addition of cupric sulfate in the liquid medium, ${\beta}-amylase$ was enhanced by cadmium sulfate, and glucoamylase was enhanced by calcium chloride.
Objective: The present study was conducted to select a plant oil without inhibitory effects on rumen fermentation and microbes, and to determine the optimal supplementation level of the selected oil in a series of in vitro studies for dietary application. Then, the selected oil was evaluated in a feeding study using Thai crossbred beef cattle by monitoring growth, carcass, blood and rumen characteristics. Methods: Rumen fluid was incubated with substrates containing one of three different types of plant oil (coconut oil, palm oil, and soybean oil) widely available in Thailand. The effects of each oil on rumen fermentation and microbes were monitored and the oil without a negative influence on rumen parameters was selected. Then, the dose-response of rumen parameters to various levels of the selected palm oil was monitored to determine a suitable supplementation level. Finally, an 8-month feeding experiment with the diet supplemented with palm oil was carried out using 12 Thai crossbred beef cattle to monitor growth, carcass, rumen and blood profiles. Results: Batch culture studies revealed that coconut and soybean oils inhibited the most potent rumen cellulolytic bacterium Fibrobacter succinogenes, while palm oil had no such negative effect on this and on rumen fermentation products at 5% or higher supplementation level. Cattle fed the diet supplemented with 2.5% palm oil showed improved feed conversion ratio (FCR) without any adverse effects on rumen fermentation. Palm oil-supplemented diet increased blood cholesterol levels, suggesting a higher energy status of the experimental cattle. Conclusion: Palm oil had no negative effects on rumen fermentation and microbes when supplemented at levels up to 5% in vitro. Thai crossbred cattle fed the palm oil-supplemented diet showed improved FCR without apparent changes of rumen and carcass characteristics, but with elevated blood cholesterol levels. Therefore, palm oil can be used as a beneficial energy source.
A cellulolytic bacterial strain, S2-3, was isolated from sea water collected in Jeju island, Republic of Korea. The strain was aerobic and gram negative, and formed yellow colored colonies on marine agar medium. S2-3 cells were long rod-shaped, 0.5 × 0.25 ㎛ (width x length) in size, and did not have flagella. The optimal growth conditions for S2-3 were 30-35℃ and pH 6.5-7.0. Analysis of the 16S rRNA gene sequence of S2-3 revealed that it had the highest identity with those of Seonamhaeicola algicola Gy8 (97.08%), Hyunsoonleella udonensis JG48 (95.01%), and Aestuariibaculum scopimerae I-15 (94.86%). In phylogenetic analysis, S2-3 formed the same clade as S. algicola Gy8, implying that S2-3 belongs to the genus Seonamhaeicola. The major fatty acids (>10%) comprised C15:1 iso G (22.29%), C15:0 iso (17.71%), C17:0 iso 3OH (16.06%), and C15:0 iso 3OH (10.7%), resulting in quite different ratio of the component from those of S. algicola Gy8. Moreover, its biochemical characteristics, including acid production and enzyme activities, were different from those of S. algicola Gy8. Therefore, putting all these results together, we concluded S2-3 is distinct species from S. algicola Gy8, and thus named it Seonamhaeicola sp. S2-3. In liquid culture, S2-3 produced extracellular cellulases that can hydrolyze cellulose or cellooligosaccharides into cellobiose, which is a good enzyme resource that deserves further research.
In the previous paper, we isolated a bacterium that can hydrolyze various organic materials from soybean paste, including cellulose, lipids, starch, and protein. The activity and chemical properties of the crude enzymes produced by the isolate Bacillus subtilis CK-2 were further investigated. Cellulase showed the highest activity at pH 5.0 and $55^{\circ}C$. The stability of cellulase was maintained within the ranges of pH 5.0~10.0 and $20{\sim}50^{\circ}C$. Cellulolytic enzymes were activated by a $Co^{2+}$ ion, demonstrating the highest activity at a 0.45%(w/v) concentration of $Co^{2+}$. The optimal conditions for amylase were pH 5.0 and $50^{\circ}C$. The activity of amylase was stable within the ranges of pH 4.0~5.0 and $20{\sim}50^{\circ}C$. The $Co^{2+}$ ion was also necessary for amylase activity, which was the highest at a 0.2%(w/v) concentration of $Co^{2+}$. The optimal pH and temperature conditions of protease were pH 8.0 and $50^{\circ}C$. The activity of protease was stable within the ranges of pH 7.0~8.5 and $20{\sim}50^{\circ}C$. Protease activity was catalyzed by $Mn^{2+}$, which was the highest at a 0.125%(w/v) concentration of $Mn^{2+}$. The isolate B. subtilis CK-2 demonstrated a high activity of autolysin. Based on these results, we identified and suggested the optimal pH, temperature, and metal ion concentration in the use of the hydrolytic enzymes of B. subtilis CK-2 for industrial purposes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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