CD29 $({\beta}1-integrins)$ is one of major adhesion molecules involved in regulating cell adhesion, migration and morphological changes. In this study, we investigated the regulatory role of CD29 in monocytic functions using monocytic cell line U937 cells. CD29 was found to be one of highly expressed membrane proteins in U937 cells, according to flow cytometric analysis. The activation of CD29 by agonistic antibody MEM101A and extracellular matrix protein (ECM) fibronectin strongly induced cell-cell and cell-fibronectin adhesions. However, blocking antibodies to CD98 and CD147 showed different inhibitory features in these two adhesion events. Furthermore, U0126, an ERK inhibitor, only blocked cell-cell adhesion but not cell-fibronectin adhesion, indicating that cell-cell or cell-fibronectin adhesion events may be regulated by different molecular mechanisms. Meanwhile, CD29 activation also enhanced ROS generation but not phagocytic ability, and similarly radical scavenger N-acetyl-L-cysteine strongly blocked CD29-mediated cell-cell adhesion, implying that ROS may play a critical role in up-regulating cell-cell adhesion. Therefore, our data suggest that the activation of CD29 may be critically involved in regulating monocytic cell-mediated cell-cell adhesion and ROS generation.
BAY11-7082 was initially found to be an anti-inflammatory drug with NF-${\kappa}B$ inhibitory property. In this study, we evaluated modulatory function of BAY11-7082 on U937 cell-cell adhesion induced by CD29 (${\beta}1$-integrins). BAY11-7082 strongly blocked functional activation of CD29 (${\beta}1$-integrins), as assessed by cell-cell adhesion assay. However, this compound did not block a simple activation of CD29, as assessed by cell-fibronectin adhesion assay. In particular, to understand molecular mechanism of BAY11-7082-mediated inhibition, the regulatory roles of CD29-induced actin cytoskeleton rearrangement under cell-cell adhesion and surface level of CD29 were examined using confocal and flow cytometic analysis. Interestingly, this compound strongly suppressed the molecular association of actin cytoskeleton with CD29 at cell-cell adhesion site. Moreover, BAY11-7082 also diminished surface levels of CD29 as well as its-associated adhesion molecule CD147, but not other adhesion molecules such as CD18 and CD43. Therefore, our data suggest that BAY11-7082 may be involved in regulating immune responses managed by CD29-mediated cell-cell adhesion.
Cell-cell adhesion managed by various adhesion molecules plays an important role in regulating functional activation of cells. This event mediates attachment of inflammatory cells to endothelial cells, interaction of antigen-presenting cells with T cells and metastatic adherence of cancer cells to epithelial tissue cells. Therefore, this cellular response is considered as one of therapeutic target to treat various cancers and inflammatory diseases. To develop proper model for evaluation of functional activation of adhesion molecules, the ability of U937 and Jurkat T cells responsive to various adhesion inducers such as phorbal-12-myristate-13-acetate (PMA), staurosporin and monoclonal antibodies to CD29, CD43 and CD98 was investigated using quantitative cell-cell adhesion assay. U937 cells made more cell-cell clusters by the treatment of antibodies to CD29 and CD43 than Jurkat T cells, while Jurkat T cells exhibited increased cell-cell adhesion ability in CD98 antibody treatment. In agreement, the surface levels of CD29 and CD98 were highly observed in U937 and Jurkat T cells, respectively. Therefore, our data suggest that Jurkat T and U937 cells can be used for model system to evaluate functional activation of adhesion molecules such as CD29 and CD98.
Cell adhesion is a coordinated process involving initial binding of integrin receptors to extracellular matrix (ECM), recruitment of adhesion proteins, and focal adhesion assembly. The formation of mechanically stable focal adhesion assembly of cells within surrounding ECM is a key parameter to direct numerous cellular functions including cell migration, differentiation, and apotosis. With current cell adhesion assays, it is difficult to understand contributions of each coordinated event on evolution of cell adhesion strengthening since cells spontaneously spread upon their adhesion to the substrate, thus remodeling their cytoskeletal structure. In this presentation, novel approaches for analysis of cell adhesion strengthening process based on the combination of mechanical device, micro-patterned substrates, and molecular biological techniques will be discussed.
Diethylstilbestrol (DESB) is a synthetic estrogen not only that routinely prescribed, but also that known to be a teratogen. In this study, we found a novel pharmacological feature that DESB is able to positively modulate CD29 $({\beta}1-integrin)$ function. Thus, DESB up-regulated homotypic cell-cell adhesion of monocytic U937 cells mediated by CD29. However, DESB did not increase the surface level of CD29 and its binding activity to ligand (fibronectin), according to flow cytometric analysis and cell-fibronectin adhesion assay. Instead, the DESB-mediated up-regulation of cell-cell adhesion was blocked by several signaling enzyme inhibitors. Treatment of U0126 [an extracellular signal-regulated kinase (ERK) inhibitor], SB20358 (a p38 inhibitor) or Rp-8-pCPT-cGMP (a protein kinase G inhibitor) clearly inhibited DESB-mediated up-regulation of cell-cell adhesion induced by CD29. However, estrogen receptor antagonist ICI 182,780 failed to abrogate DESB effect. Therefore, our data suggest that DESB may up-regulate CD29-mediated cell-cell adhesion via modulating intracellular signaling enzymes such as ERK, PKG, and p38, independent of estrogen receptor function.
CD99 is known to be involved in the regulation of cell-cell adhesion. However, it remains unclear whether CD99 controls cell-extracellular matrix adhesion. In this study, the effects of CD99 activation on cell-extracellular matrix adhesion were investigated. It was found that engagement of CD99 with the stimulating antibody YG32 downregulated the adhesion of MCF-7 cells to fibronectin, laminin and collagen IV in a dose-dependent manner. The CD99 effect on cell-ECM adhesion was inhibited by overexpression of the dominant negative form of CD99 or CD99 siRNA transfection. Treatment of cells with $Mn^{2+}$ or by ${\beta}_1$ integrin-stimulating antibody restored the inhibitory effect of CD99 on cell-ECM adhesion. Cross-linking CD99 inactivated ${\beta}_1$ integrin through conformational change. CD99 activation caused dephosphorylation at Tyr-397 in FAK, which was restored by the ${\beta}_1$ stimulating antibody. Taken together, these results provide the first evidence that CD99 inhibits cell-extracellular matrix adhesion by suppressing ${\beta}_1$ integrin affinity.
Purpose: In osteoclast differentiation, actin-rich membrane protrusions play a crucial role in cell adhesion. Odontogenic ameloblast-associated protein (Odam) contributes to cell adhesion by inducing actin rearrangement. Odam-mediated RhoA activity may play a significant role in multinucleation of osteoclasts. However, the precise function of Odam in osteoclast cell adhesion and differentiation remains largely unknown. Here, we identify a critical role for Odam in inducing osteoclast adhesion and differentiation. Materials and Methods: The expression of Odam in osteoclasts was evaluated by immunohistochemistry. Primary mouse bone marrow and RAW264.7 cells were used to test the cell adhesion and actin ring formation induced by Odam. Result: Odam was expressed in osteoclasts around alveolar bone. Odam transfection induced actin filament rearrangement and cell adhesion compared with the control or collagen groups. Overexpression of Odam promoted actin stress fiber remodeling and cell adhesion, resulting in increased osteoclast fusion. Conclusion: These results suggest that Odam expression in primary mouse osteoclasts and RAW264.7 cells promotes their adhesion, resulting in the induction of osteoclast differentiation.
Rap1 is a key regulator of cell adhesion and migration. Although increasing evidence indicates that the Rap1 signaling pathway is involved in the process of bone remodeling, the mechanism by which Rap1 regulates osteoblastic differentiation and cell adhesion remains unknown. Here, we investigated the morphological characteristics and osteoblastic differentiation of cells expressing constitutively activated form of Rap1A (Rap1ACA) or Rap1 GTPase activating protein Rap1GAP and found that activated Rap1 induces osteoblastic differentiation and cell adhesion as well as cell spreading. When osteoblastic differentiation was induced, Rap1ACA cells showed considerably higher levels of calcium deposits than the wild-type and Rap1GAP-overexpressing cells did. Rap1ACA cells showed increased spreading and size, as well as strong cell adhesion and significantly decreased growth rates. F-actin staining using phalloidin revealed several thin thread-like filopodia around the protrusions in Rap1ACA cells, which possibly contribute to the increased cell adhesion.
Statement of problem. The effects of surface roughness have not or insufficiently been analyzed on earlier events such as cell adhesion though cell behavior most germane to implant performance is cell adhesion. Purpose. The purpose of this study was to evaluate cell adhesion of osteoblast-like cells (MG63) onto three types of titanium disks with varying roughness using the Elisa assay. Materials and methods. Representative disks from each group (SLA, HA, machined) were subjected to surface analysis and surface roughness was measured by the optical interferometer (Accura 2000, Intekplus Co., Seoul, Korea). Following this, MG63 cells were cultured on the titanium disks and released. Cell adhesion measurements using the Elisa assay were performed specifically at three points: after 24, 48, and 72 hours of culture. Results. Among the 3 types of surface analyzed, the SLA surface was the roughest with a Ra value of $1.114{\mu}m$ followed by HA coated surface and machined surface, consecutively. The optical density values for the SLA surface group was significantly higher than that of the machined and HA coated surface groups following 24 and 48 hours of culture. The cell culture on HA coated surface showed significantly higher values compared to the machined surface following 24, 48 and 72 hours of culture. Conclusion. The results suggest that surface treatment of titanium surfaces enhanced cell adhesion of human osteoblast-like cells (MG63).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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