Previous studies showed that Cdc7 kinase of Schizosaccharomyces pombe phosphorylated the minichromosome maintenance (Mcm) complex efficiently in the presence of spMcm10 protein. The biochemical properties of the phosphorylated Mcm complexes were examined to understand the activation mechanism of the Mcm complex by Cdc7 kinase. The phosphorylation of Mcm complex in the presence of spMcm10 by Cdc7 kinase did not affect the stability of the Mcm complex containing all six subunits, and the changes in the sedimentation properties were not observed after the phosphorylation. The reconstitution of the Mcm complex using the purified proteins showed that the phosphorylation of Mcm2 proteins did not affect the interactions between Mcm proteins. The phosphorylation of the Mcm2-7 complex at the same condition also did not activate the other biochemical activities such as DNA helicase and single stranded (ss) DNA binding activities. On the other hand, spMcm10 protein that was used for the stimulation of Mcm phosphorylation showed single stranded DNA binding activity, and inhibited the DNA helicase activity of the Mcm4/6/7 complex. These inhibitory effects were reduced by the addition of Cdc7 kinase, suggesting that the phosphorylation by Cdc7 kinase decreased the interactions between spMcm10 and the Mcm complex. Taken together, these results suggested that the phosphorylation by Cdc7 kinase alone is not sufficient for the remodeling and the activation of the Mcm complex, and the additional factors or the phosphorylations might be required for the activation of the Mcm complex.
Xu, Kui;Stern, Alvin S.;Levin, Wayne;Chua, Anne;Vassilev, Lyubomir T.
BMB Reports
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제36권4호
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pp.421-425
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2003
The serine/threonine protein kinase family is a large and diverse group of enzymes that are involved in the regulation of multiple cellular pathways. Elevated kinase activity has been implicated in many diseases and frequently targeted for the development of pharmacological inhibitors. Therefore, non-radioactive antibody-based kinase assays that allow high throughput screening of compound libraries have been developed. However, they require a generation of antibodies against the phosphorylated form of a specific substrate. We report here a time-resolved fluorescence assay platform that utilizes a commercially-available generic anti-phosphothreonine antibody and permits assaying kinases that are able to phosporylate threonin residues on protein substrates. Using this approach, we developed an assay for Cdc7/Dbf4 kinase activity, determined the $K_m$ for ATP, and identified rottlerin as a non-ATP competitive inhibitor of this enzyme.
Cdc2 kinase is a prototypical cyclin-dependent kinase critical for G2 to M phase cell cycle transition. Yet, its function in the nervous system is largely unknown. Here, we investigated possible role of Cdc2 in axonal regeneration using sciatic nerve system in rat. Cdc2 protein levels and activity were increased in the injured sciatic nerves 3 and 7 days after crush injury and then decreased to basal level 14 days later. Administration of Cdc2 kinase inhibitor roscovitine in vivo at the time of crush injury significantly inhibited axonal regeneration when regrowing axons were analyzed using retrograde tracers. Cdc2 protein levels in cultured Schwann cells which were prepared from sciatic nerves 7 days after crush injury were much higher compared with those from uninjured sciatic nerves, suggesting that Cdc2 protein expression was primarily induced in the Schwann cells. To further investigate Cdc2 function in Schwann cell, we examined changes in cultured Schwann cell proliferation and migration in culture system. Both the number of proliferating Schwann cells and the extent of neurite outgrowth from co-cultured DRG neurons were significantly decreased by Cdc2 inhibitor roscovitine treatment in DRG culture which was prepared from animals with sciatic nerve injury for 7 days. Also, Schwann cell migration in the injured sciatic nerve explant was significantly inhibited by roscovitine treatment. Taken together, the present data suggest that Cdc2 may be involved in peripheral nerve regeneration via Schwann cell proliferation and migration.
The actin cytoskeleton plays a key role in the entry of mitosis as well as in cytokinesis. In a previous study, we showed that actin disruption delays mitotic entry at G2/M by sustained activation of extracellular signal-related kinase 1/2 (ERK1/2) in primary cells but not in transformed cancer cell lines. Here, we examined the mechanism of cell cycle delay at G2/M by actin dysfunction in IMR-90 normal human fibroblasts. We observed that de-polymerization of actin with cytochalasin D (CD) constitutively activated ribosomal S6 kinase (RSK) and induced inhibitory phosphorylation of Cdc2 (Tyr 15) in IMR-90 cells. In the presence of an actin defect in IMR-90 cells, activating phosphorylation of Wee1 kinase (Ser 642) and inhibitory phosphorylation of Cdc25C (Ser 216) was also maintained. However, when kinase-dead RSK (DN-RSK) was overexpressed, we observed sustained activation of ERK1/2, but no delay in the G2/M transition, demonstrating that RSK functions downstream of ERK in cell cycle delay by actin dysfunction. In DN-RSK overexpressing IMR-90 cells treated with CD, phosphorylation of Cdc25C (Ser 216) was blocked and phosphorylation of Cdc2 (Tyr 15) was decreased, but the phosphorylation of Wee1 (Ser 642) was maintained, demonstrating that RSK directly controls phosphorylation of Cdc25C (Ser 216), but not the activity of Wee1. These results strongly suggest that actin dysfunction in primary cells activates ERK1/2 to inhibit Cdc2, delaying the cell cycle at G2/M by activating downstream RSK, which phosphorylates and blocks Cdc25C, and by directly activating Wee1.
This study investigated whether the addition of porcine sperm cytosolic factor (SCF) at fusion/activation affects in vitro development of porcine parthenogenetic(PA) and nuclear transfer (NT) embryos. To determine the optimum concentration of SCF, control group of oocytes was activated with 0.3M mannitol (1.0 mM $CaCl_2{\cdot}2H_2O$), other three groups of oocytes were parthenogentically activated with the fusion medium (0.1mM $CaCl_2{\cdot}2H_2O$) supplemented with 100, 200 or 300 ${\mu}$g/ml SCF, respectively. Matured oocytes were activated with two electric pulses (DC) of 1.2 kv/cm for 30 ${\mu}$sec. The activated embryos were cultured in PZM-3 under 5% $CO_2$ in air at $38.5^{\circ}C$ for 6 days. Oocytes activated in the presence of SCF showed a significantly higher blastocyst rate than control (p<0.05). Apoptosis rate was significantly lower in 100 ${\mu}$g/ml SCF group than other groups (p<0.05). Cdc2 kinase activity in control and SCF treatment group of oocytes was determined using MESACUP cdc2 kinase assay kit at 1, 5, 10, 15, 30, 45 and 60 min after activation. Cdc2 kinase activity was significantly decreased (p<0.05) in SCF group than MII oocytes or control within 5 min. For NT embryo production, reconstructed oocytes were fused in the fusion medium supplemented with 0.1 mM $CaCl_2{\cdot}2H_2O$ (T1), 1.0 mM $CaCl_2{\cdot}2H_2O$ (T2) and 0.1 mM $CaCl_2{\cdot}2H_2O$ with 100 ${\mu}$g/ml SCF (T3). Fused embryos were cultured in PZM-3 under 5% $CO_2$ in air at $38.5^{\circ}C$ for 6 days. Developmental rate to blastocyst stage was significantly higher in T3 than other groups (23.0% vs. 13.5 to 15.2%) (p<0.05). Apoptosis rate was significantly lower in T3 than T1 or T2 (p<0.05). The relative abundance of Bax-${\alpha}$/Bcl-xl was significantly lower in in vivo or SCF group than that of control (p<0.05). Moreover, the expression of p53 and caspase3 mRNA was significantly lower in in vivo or SCF group than that of control (p<0.05). These results indicate that the addition of SCF at fusion/activation might improve in vitro development of porcine NT embryos through regulating cdc2 kinase level and expression of apoptosis related genes.
In an attempt to evaluate the function of MAP kinase of porcine oocytes and to develop a method of assessment for kinase activity, we used MBP as a substrate to detect the MAP kinase activity of porcine oocytes matured in in vitro. The MAP kinase which had lower activity during the first 20 hours of culture started to show an increased amount of activity at 25 hours at which a collapse in nuclear membrane was induced. Significant (P<0.05) a, pp.ared at 30 hours of being cultured. The gel phosphorylation method, MBP which has been known to be a substrate for kinase such as cdc2 kinase, was phosphorylated at two positions corresponding to ERK 1 (44kDa) and ERK2 (42 kDa) which are known as mammalian MAP kinase. The existence of MARKK and MAP kinase were identified with western blotting at 0 hour culture of immature GV oocytes. The amount of those proteins did not increase during 40 hours of culture, which suggest that the increase of MAP kinase activity was caused by phosphorylaton rather than due to change in protein amount. MAPKK and MAP kinase were shown to be dephosporylated with deactivated at M 1 stage by inhibition of protein synthesis with cycloheximide added at the strat following the cultrue. We have reulsts that indicate the existedence of MAP kinase cascade which was activated simultaneously with start of porcine oocyte maturation (GVBD).
This study was conducted to investigate the effects of oocyte maturational age and activation condition on in vitro development of porcine parthenogenetic embryos (parthenotes). Porcine follicular oocytes were matured in vitro for 30 to 44 hr. Maturation rate was examined during in vitro maturation (IVM) every 2 hr interval. The cdc2 kinase activity was measured at 36 and 44 hr of IVM. Some oocytes were activated at 36 or 44 hr of IVM by three different conditions; 1) single electric stimulation (1.5 kV/cm for $30{\mu}sec$; ES), 2) double electric stimulations (1.5 kV/cm for $30{\mu}sec$, followed by 1.0 kV/cm for $50{\mu}sec$ after 1 hr; ES+ES) or 3) ES+ES followed by culture in 6-dimethlyaminopurine (6-DMAP) for 4 hr (ES+ES+D), and cultured for 6-7 days. Maturation rate was significantly increased as culture period was increased to 36 hr (66.9%, p<0.05), and then gradually increased to 87.1% at 44 hr of IVM. The cdc2 kinase activity was decreased (p<0.05) with culture period prolonged from 36 hr to 44 hr. Lower blastocyst formation rate (4.3%, p<0.05) were obtained by ES in 36 hr-matured oocytes compared to other treatments (16.5 and 20.5%) in the same age and the same treatment in 44 hr-matured oocytes (15.0%). High blastocyst formation rate (23.6%) was obtained by ES+ES+D in 44 hr-matured oocytes (p<0.05). These results demonstrate that porcine oocyte activation and in vitro development of parthenotes can be affected by interactions between oocyte maturational age and activation condition.
Although MCM2 is obviously important for the initiation of eukaryotic DNA replication, its role in $O_2$ dependent regulation of replicon initiation is poorly understood. In this report, I analysed the changes of MCM2 during the transition from hypoxically suppressed replicon initiation to the burst of initiation triggered by reoxygenation in T24 cells. A high level of chromatin bound and nucleosolic MCM2 was found under the hypoxic replicon arrest. In contrast low cytosolic MCM2 was noticed. Recovery of $O_2$ induced phosphorylation and diminution of chromatin bound MCM2, whereas cytosolic MCM2 increased. The level of chromatin bound Cdc7 did not change significantly upon reoxygenation. However, after reoxygenation, significant phosphorylation of Cdc7 and an increase of coimmunoprecipitation with its substrate (MCM2) were observed. This provides a hint that reoxygenation may promote the kinase activity of Cdc7. These changes might be the critical factors in $O_2$ dependent regulation of replicon initiation. Moreover, phosphorylation of Cdc7 by Cdk2 can be observed in vitro, but seems to fail to regulate the level of chromatin bound Cdc7 as well as the changes of MCM2 in response to reoxygenation of hypoxically suppressed cells.
In this study, in vitro maturation system using fetal bovine serum (FBS) or porcine follicular fluid (pFF) was investigated to produce comparable oocytes to those derived from in vivo. Control group of oocytes was cultured in TCM 199 supplemented with 0.1% polyvinyl alcohol (PVA). Other three groups of oocytes were cultured in TCM 199 supplemented with 10% FBS, 10% pFF or 5% FBS + 5% pFF, respectively. After 44 h maturation, oocytes with the first polar body were activated with two electric pulses (DC) of 1.2 kv/cm for 30 ${\mu}sec$. Also, matured oocytes of four groups were reconstructed and fused. Reconstructed embryos were cultured in PZM-3 under 5% $CO_2$ in air at $38.5^{\circ}C$ for 6 days. The oocytes matured in the medium supplemented with FBS or/and pFF showed significantly higher maturation rates (64.0 vs. 73.9 to 85.2%). In PA embryos, cleavage rates (89.7 vs. 77.1 to 86.6%) and blastocysts rates (30.0 vs. 16.2 to 26.2%) were significantly higher in pFF group (p<0.05). In NT embryos, there was no difference among treatments in cleavage rate, but the blastocyst rates (28.5 vs. 15.5 to 24.6%) were significantly higher in pFF group (p<0.05). The apoptosis rate was significantly higher (p<0.05) in the control than other groups (10.8 vs. 4.9 to 8.2% for PA, 3.1 vs. 0.5 to 1.3% for NT). In order to select the comparable oocyte to in vivo oocytes, each group of oocytes was stained with Brilliant cresyl blue (BCB) after 42h maturation. The matured oocytes were separated according to color of cytoplasm; stained group (BCB+) and unstained group (BCB-). The oocytes matured in the presence of FBS or/and pFF showed significantly higher staining rates (70.3 to 72.7 vs. 35.1%) (p<0.05). To verify the fact that the supplementation of FBS or/and pFF can increase the maturation rates, cdc2 kinase activity, the catalytic subunit of MPF, was determined. The cdc2 kinase activity of the oocytes matured in the medium supplemented with FBS or/and pFF was significantly higher than control group (6.7 to 9.3 vs. 3.8). In conclusion, the supplementation of FBS or/and pFF can support in vitro maturation rate of porcine oocytes through the increment of cdc2 kinase activity level in the cytoplasm.
본 연구에서는 명아주과 수송나물속 솔장다리(Salsola collina Pall.) 추출물의 항산화 및 항암 활성을 분석하였다. 먼저 솔장다리의 에탄올 추출물의 DPPH radical scavenging activity를 분석한 결과, $IC_{50}$가 $4.82{\mu}g/ml$로 나타나 강한 항산화능을 보유하였음을 확인하였다. 또한 대장암 세포주(HT29), 폐암 세포주(A549), 간암 세포주(HepG2)를 사용하여 솔장다리 추출물의 암세포 사멸효과를 분석한 결과, $IC_{50}$가 각각 43.8, 64.1, $92.5{\mu}g/ml$로 강력한 세포사멸효과를 나타냈으며 특히 HT29에 대한 강한 사멸효과를 보였다. 솔장다리 추출물의 항암 활성 기전 분석을 위해 세포주기를 분석한 결과, 대장암세포인 HT29의 G2/M arrest를 유도하였으며 최고 농도인 $60{\mu}g/ml$까지 S기 세포수가 증가하였다. 세포주기관련 단백질의 발현 분석 결과, 솔장다리 추출물을 처리한 경우, G2기에서 M기로의 전이에 필수적인 단백질인 Cdc25C와 cyclin A의 발현이 감소되었고, 반면 Cdc25C와 Cdc2의 불활성화 형태인 p-Cdc25C, p-Cdc2는 증가하였다. 또한 p21과 Wee1의 발현도 증가되었다. 하지만 p53의 발현량은 변화가 없었다. 이러한 결과는 솔장다리 추출물을 처리한 경우, p53 비의존적으로 p21의 발현이 증가되어 cyclin A/Cdc2 complex의 활성이 조절되고, 이어서 G2/M phase의 check point에 작용하는 Wee1의 발현증가 및 Cdc25C, Cdc2의 인산화에 의한 불활성화를 통하여 G2/M arrest가 유도되는 것을 시사한다. 또한 솔장다리 추출물 처리에 의해 S기 진행을 조절하는 Cdk2의 발현량도 감소하여, cyclin A/Cdk2 complex가 감소되어 S기의 세포수가 증가한 것으로 보인다. 따라서 본 연구 결과를 통해 솔장다리 추출물이 높은 항산화 활성을 지니며 암세포의 세포주기를 조절하여 높은 항암 활성을 보유함을 확인하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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