Multiple phosphorylation of the carboxy-terminal domain (CTD) of the largest subunit in RNA polymerase II (RNAP II) is thought to play an important role in the transcription cycle. The preinitiation complex in a partially purified complete transcription system suggested that RNA polymerase IIA containing unphosphorylated CTD is involved in complex assembly, whereas RNA polymerase IIO containing Ser and Thr phosphorylated CTD is not involved in preinitiation complex assembly. Recently a minimal transcription system was developed which requires chemically defined minimal components for its transcription: TBP, TFIIB, TFIIF, RNAP II and a supercoiled adenovirus-2 major late promoter (Ad-2 MLP). It would be using interesting to determine the consequence of CTD phosphorylation on preinitiation complex formation using the minimal transcription system. Contrary to the results from the partially purified complete transcription system, both RNA polymerase IIA and IIO are equally recruited in the preinitiation complex formation. The discrepancy may result from the two different assays used to determine complex formation, the use of chemically undefined complete and defined minimal transcription systems. This implicates that some factors in the complete transcription system are involved in the distinction between RNAP IIA and IIO in complex assembly. In addition multiple tyrosine phosphorylation of the CTD of RNAP II was prepared with c-Abl kinase and its recruiting ability in the preinitiation complex was examined. Compare with Ser and Thr phosphorylated RNAP IIO, Tyr phosphorylated RNAP IlOy forms a stable preinitiation complex in both the minimal and complete transcription systems. Based on these results, it seems that tyrosine phosphorylation of the CTD is important in the transcription cycle on the special subset of class-II promoter or has a different role in the transcription process.
Dynamic modification of cytoplasmic and nuclear proteins by O-linked N-acetylglucosamine (O-GlcNAc) on Ser and Thr residues is ubiquitous in higher eukaryotes. And this modification may serve as a signaling mod-ification analogous to protein phosphorylation. Addition and cleavage of O-GlcNAc are catalyzed by O-linked GlcNAc transferase (OGT) and O-linked N-acety1glucosaminidase (O-GlcNAcase), respectively. Two types of human O-GlcNAcase gene were cloned and expressed as three fusion proteins in Escherichia coli. O-GlcNA-case activity showed in the order of thioredoxin fusion> $6{\times}His$ tag> GST fusion. O-GlcNAcase had enzy-matic activity against only ${\rho}$NP-GlcNAc of seven tested substrate analogs. Blast search revealed that O-GlcNAcase has two conserved domains, amino terminal hyaluronidase-like domain and carboxy terminal N-acetyltransferase domain. Extensive deletion studies were done to define catalytically important domains. The deletions of hyaluronidase-like domain and N-acetyltransferase domain abolished enzyme activity. But, N-ter-minal 55 amino acid deletion and C-terminal truncation showed lower activity. Based on deletion analysis, we suggest that hyaluronidase-like domain is essential for enzyme activity and carboxy terminal N-acetyltrans-ferase domain may be modulatory function.
The phosphorylation of C-terminal domain (CTD) of Rpb1p, the largest subunit of RNA polymerase II plays an important role in transcription and the coupling of various cellular events to transcription. In this study, its role in DNA damage response is closely examined in Saccharomyces cerevisiae, focusing specifically on several transcription factors that mediate or respond to the phosphorylation of the CTD. CTDK-1, the pol II CTD kinase, FCP1, the CTD phosphatase, ESS1, the CTD phosphorylation dependent cis-trans isomerase, and RSP5, the phosphorylation dependent pol II ubiquitinating enzyme, were chosen for the study. We determined that the CTD phosphorylation of CTD, which occurred predominantly at serine 2 within a heptapeptide repeat, was enhanced in response to a variety of sources of DNA damage. This modification was shown to be mediated by CTDK-1. Although mutations in ESS1 or FCP1 caused cells to become quite sensitive to DNA damage, the characteristic pattern of CTD phosphorylation remained unaltered, thereby implying that ESS1 and FCP1 play roles downstream of CTD phosphorylation in response to DNA damage. Our data suggest that the location or extent of CTD phosphorylation might be altered in response to DNA damage, and that the modified CTD, ESS1, and FCP1 all contribute to cellular survival in such conditions.
In an effort to understand the role of the conserved domain and of the heterologous one-third part of the carboxy terminal domain of transglutaminase C (TGase II), attempts were made to express TGase II cDNA of human origin in yeast Saccharomyces cerevisiae as in a full-length form as well as in a form of C-terminal truncation. The 2$\mu$-based expression plasmids which contained the TGase II cDNA under the gal inducible promoter were introduced into yeast and the maintenance of the full-length and truncated form of the TGase II gene plasmids were confirmed by Southern blot. The expression of the TGase II gene was analysed by reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR), and western blot analyses. As assayed by [1,4$^{14}$C]-putrescine incorporation into succinylated casein, the full-lenth as well as the truncated forms of recombinant TGase II showed some catalytic activity. These results indicate that the N-terminal homologous domain of human TGase II retains a catalytically active domain. The level of TGase II expressed in yeast, however, was far lower than satisfactory and other expression system should be sought further chracterization of the enzyme. The negative effect of TGase II on the growth of yeast is interesting with respect to the physiological effect of TGase II in cornification of epidermal keratinocytes.
Bacteriophage T7 gene 2.5 protein, a single-stranded DNA binding protein, is required for T7 DNA replication, recombination, and repair. T7 gene 2.5 protein has two distinctive domains, DNA binding and C-terminal domain, directly involved in protein-protein interaction. Gene 2.5 protein participates in the DNA replication of Bacteriophage T7, which makes this protein essential for the T7 growth and DNA replication. What gene 2.5 protein makes important at T7 growth and DNA replication is its binding affinity to single-stranded DNA and the protein-protein important at T7 DNA replication proteins which are essential for the T7 DNA synthesis. We have constructed pGST2.5(WT) encoding the wild-type gene 2.5 protein and pGST2.5$\Delta $21C lacking C-terminal 21 amino acid residues. The purified GST-fusion proteins, GST2.5(WT) and GST2.5(WT)$\Delta$21C, were used for whether the carboxyl-terminal domain participates in the protein-protein interactions or not. GST2.5(WT) and GST2.5$\Delta$21C showed the difference in the protein-protein interaction. GST2.5(WT) interacted with T7 DNA polymerase and gene 4 protein, but GST2.5$\Delta$21C did not interact with either protein. Secondly, GST2.5(WT) interacts with gene 4 proteins (helicase/primase) but not GST2.5$\Delta$21C. these results proved the involvement of the carboxyl-terminal domain of gene 2.5 protein in the protein-protein interaction. We clearly conclude that carboxy-terminal domain of gene 2.5 protein is firmly involved in protein-protein interactions in T7 replication proteins.
Latent membrane protein 1 (LMP1) of the Epstein-Barr virus (EBV) is an integral membrane protein with six transmembrane domains, which is essential for EBV-induced B cell transformation. LMP1 functions as a constitutively active tumor necrosis factor receptor (TNFR) like membrane receptor, whose signaling requires recruitment of TNFR-associated factors (TRAFs) and leads to NF-${\kappa}B$ activation. NF-${\kappa}B$ activation by LMP1 is critical for B cell transformation and has been linked to many phenotypic changes associated with EBV-induced B cell transformation. Deletion analysis has identified two NF-${\kappa}B$ activation regions in the carboxy terminal cytoplasmic domains of LMP1, termed CTAR1 (residues 194-232) and CTAR2 (351-386). The membrane proximal C-terminal domain was precisely mapped to a PXQXT motif (residues 204-208) involved in TRAF binding as well as NF-${\kappa}B$ activation. In this study, we dissected the CTAR2 region, which is the major NF-${\kappa}B$ signaling effector of LMP1, to determine a minimal functional sequence. A series of LMP1 mutant constructs systematically deleted for the CTAR2 region were prepared, and NF-${\kappa}B$ activation activity of these mutants were assessed by transiently expressing them in 293 cells and Jurkat T cells. The NF-${\kappa}B$ activation domain of CTAR2 appears to reside in a stretch of 6 amino acids (residues 379-384) at the end of the carboxy terminus.
Conditional lethal mutation nup49-1 of a nuclear pore complex component gene was constructed in Saccharomyces cerevisiae. This mutation deleted one third of the essential NUP49 gene at the carboxy-terminal, but retained 13 repeats of the highly conserved GLFG domain. The nup49-1 mutant strain was viable with a slow-growth phenotype, indicating that the C-terminal is dispensable at normal growth temperature. This strain exhibited both temperature-sensitivity at 37.deg.C and cold-sensitivity at 16.deg.C. Temperature shift experiments revealed that the arrest phenotype at 37.deg.C was random in the cell division cycle. The nup49-1 mutation was tested to be recessive and is expected to be useful for the functional analysis of nuclear pore complex proteins as well as for studies of nuclear transport systems.
Isomaltooligosaccharides (IMOs) have good prebiotic effects, and long IMOs (LIMOs) with a degree of polymerization (DP) of 7 or above show improved effects. However, they are not yet commercially available, and require costly enzymes and processes for production. The N-terminal region of the thermostable Thermoanaerobacter thermocopriae cycloisomaltooligosaccharide glucanotransferase (TtCITase) shows cyclic isomaltooligosaccharide (CI)-producing activity owing to a catalytic domain of glycoside hydrolase (GH) family 66 and carbohydrate-binding module (CBM) 35. In the present study, we elucidated the activity of the C-terminal region of TtCITase (TtCITase-C; Met740-Phe1,559), including a CBM35-like region and the GH family 15 domain. The domain was successfully cloned, expressed, and purified as a single protein with a molecular mass of 115 kDa. TtCITase-C exhibited optimal activity at 40℃ and pH 5.5, and retained 100% activity at pH 5.5 after 18-h incubation. TtCITase-C synthesized α-1,6 glucosyl products with over seven degrees of polymerization (DP) by an α-1,6 glucosyl transfer reaction from maltopentaose, isomaltopentaose, or commercialized maltodextrins as substrates. These results indicate that TtCITase-C could be used for the production of α-1,6 glucosyl oligosaccharides with over DP7 (LIMOs) in a more cost-effective manner, without requiring cyclodextran.
Protein dephosphorylation is important for cellular regulation, which is catalyzed by protein phosphatases. Among protein phosphatases, carboxy-terminal domain (CTD) phosphatases are recently emerging and new functional roles of them have been revealed. There are 7 CTD phosphatases in human genome, which are composed of CTD phosphatase 1 (CTDP1), CTD small phosphatase 1 (CTDSP1), CTD small phosphatase 2 (CTDSP2), CTD small phosphatase-like (CTDSPL), CTD small phosphatase-like 2 (CTDSPL2), CTD nuclear envelope phosphatase (CTDNEP1), and ubiquitin-like domain containing CTD phosphatase 1 (UBLCP1). CTDP1 dephosphorylates the second phosphor-serine of CTD of RNA polymerase II (RNAPII), while CTDSP1, STDSP2, and CTDSPL dephosphorylate the fifth phosphor-serine of CTD of RNAPII. In addition, CTDSP1 dephosphorylates new substrates such as mothers against decapentaplegic homologs (SMADs), cell division cycle-associated protein 3 (CDCA3), Twist1, tumor-suppressor protein promyelocytic leukemia (PML), and c-Myc. CTDP1 is related to RNA polymerase II complex recycling, mitosis regulation and cancer cell growth. CTDSP1, CTDSP2 and CTDSPL are related to transcription factor recruitment, tumor suppressor function and stem cell differentiation. CTDNEP1 dephosphorylates LIPIN1 and is related to neural tube formation and nuclear envelope formation. CTDSPL2 is related to hematopoietic stem cell differentiation. UBLCP1 dephosphorylates 26S proteasome and is related to nuclear proteasome regulation. In conclusion, noble roles of CTD phosphatases are emerging through recent researches and this review is intended to summarize emerging roles of CTD phosphatases.
Nuclear Factor 1 (NF1) proteins are a family of transcriptional factors consisting of four different types: NF1-A, -B, -C, and -X. Some NF1 transcription factors contain a heptasequence motif, SPTSPSY, which is found as a repeat sequence in the carboxy terminal domain (CTD) of the largest subunit of RNA polymerase II. A similar heptasequence, SPTSPTY, is contained in rat liver NF1-A at a position between residues 469 and 475. In order to investigate the roles of the individual amino acids of the heptasequence of rat liver NF1-A in transcriptional activation, we systematically substituted single and multiple amino acid residues with alanine residue(s) and evaluated the transcriptional activities of the mutated NF1-A. Substitution of a single amino acid reduced transcriptional activity by 10 to 30%, except for the proline residue at position 473, whose substitution with alanine did not affect transcriptional activity. However, changes of all four serine and threonine residues to alanine or of the tyrosine residue along with the serine residue at position 469 to alanine reduced the activity to almost background levels. Our results indicate that multiple serine and threonine residues, rather than a single residue, may be involved in the modulation of the transcriptional activities of the factor. Involvement of the tyrosine residue is also implicated.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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