Background: We have previously reported that not only cGMP but also 8-Br-cGMP or 8-pCPT-cGMP, specific and potent stimulators of cGMP-dependent protein kinase (cGMP-PK), increased basal L-type calcium current $(I_{Ca})$ in rabbit ventricular myocytes. Our findings in rabbit ventricular myocytes were entirely different from the earlier findings in different species, suggesting that the activation of cGMP-PK is involved in the facilitation of $I_{Ca}}$ by cGMP. However, there is no direct evidence that cGMP-PK can stimulate $I_{Ca}}$ in rabbit ventricular myocytes. In this report, we focused on the direct effect of cGMP-PK on $I_{Ca}}$ in rabbit ventricular myocytes. Methods and Results: We isolated single ventricular myocytes of rabbit hearts by using enzymatic dissociation. Regulation of $I_{Ca}}$ by cGMP-PK was investigated in rabbit ventricular myocytes using whole-cell voltage clamp method. $I_{Ca}}$ was elicited by a depolarizing pulse to +10 mV from a holding potential of -40 mV. Extracellular 8-(4-Chlorophenylthio)-guanosine-3',5'-cyclic monophosphate (8-pCPT-cGMP), potent stimulator of cGMP-dependent protein kinase (cGMP-PK), increased basal $I_{Ca}}$. cGMP-PK also increased basal $I_{Ca}}$. The stimulation of basal $I_{Ca}}$ by cGMP-PK required both 8-Br-cGMP in low concentration and intracellular ATP to be present. The stimulation of basal $I_{Ca}}$ by cGMP-PK was blocked by heat inactivation of the cGMP-PK and by bath application of 8-(4-chlorophenylthio)-guanosine-3',5'-cyclic monophosphate, Rp-isomer (Rp-pCPT-cGMP), a phosphodiesterase-resistant cGMP-PK inhibitor. When $I_{Ca}}$ was increased by internal application of cGMP-PK, IBMX resulted in an additional stimulation of $I_{Ca}}$. In the presence of cGMP-PK, already increased $I_{Ca}}$ was potentiated by bath application of isoprenaline or forskolin or intracellular application of cAMP. Conclusions: We present evidence that cGMP-PK stimulated basal $I_{Ca}}$ by a direct phosphorylation of L-type calcium channel or associated regulatory protein in rabbit ventricular myocytes.
For deciphering the cyclic guanosine monophosphate (cGMP) signaling pathway, we employed chemical proteomics to identify the novel target molecules of cGMP. We used cGMP that was immobilized onto agarose beads with linkers directed at three different positions of cGMP. We performed a pull-down assay using the beads as baits on tissue lysates and identified 9 proteins by MALDI-TOF (Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization Time-of-Flight) mass spectrometry. Some of the identified proteins were previously known cGMP targets, including cGMP-dependent protein kinase and cGMP-stimulated phosphodiesterase. Surprisingly, some of the co-precipitated proteins were never formerly reported to associate with the cGMP signaling pathway. The competition binding assays showed that the interactions are not by nonspecific binding to either the linker or bead itself, but by specific binding to cGMP. Furthermore, we observed that the interactions are highly specific to cGMP against other nucleotides, such as cyclic adenosine monophosphate (cAMP) and 5'-GMP, which are structurally similar to cGMP. As one of the identified targets, MAPK1 was confirmed by immunoblotting with an anti-MAPK1 antibody. For further proof, we observed that the membrane-permeable cGMP (8-bromo cyclic GMP) stimulated mitogen-activated protein kinase 1 signaling in the treated cells. Our present study suggests that chemical proteomics can be a very useful and powerful technique for identifying the target proteins of small bioactive molecules.
The relationship between second messenger cGMP and human cytomegalovirus (HCMV) replication was investigated. First, the intracellular level of cGMP ([cGMP]i) in HCMV-infected cells was measured. The [cGMP]i increased at early times after HCMV infection, reached maximum level at 12 hr and returned to basal level at 24 hr after virus infection, while [cGMP]i in mock-infected cells remained relatively unchanged. Increasing [cGMP]i resulted in enhanced transcription of HCMV major immediate early gene. For early gene expression, cGMP had varying effect. Expression of 1.2 kb RNA decreased and 2.2 kb RNA increased with increasing cGMP, while 2.7 kb RNA gene expression was not affected. HCMV early genes are regulated by immediate early gene, and the effect of cGMP on the regulatory effect of major immediate early gene on early genes was investigated. In the absence of cGMP, major immediate early gene repressed 2.7 kb RNA gene expression, while 1.2 kb RNA and 2.2 kb RNA early genes were not significantly affected. In the presence of $1\;{\mu}M$ cGMP, however, major immediate early gene stimulated the expression of three early genes.
Kim, Tae-Hyung;Chung, Ge-Hoon;Park, Seok-Beom;Chey, Won-Young;Jun, Sung-Jun;Kim, Joong-Soo;Oh, Seog-Bae
International Journal of Oral Biology
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v.36
no.2
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pp.83-89
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2011
Substantia gelatinosa (SG) neurons receive synaptic inputs from primary afferent $A{\delta}$- and C-fibers, where nociceptive information is integrated and modulated by numerous neurotransmitters or neuromodulators. A number of studies were dedicated to the molecular mechanism underlying the modulation of excitability or synaptic plasticity in SG neurons and revealed that second messengers, such as cAMP and cGMP, play an important role. Recently, cAMP and cGMP were shown to downregulate each other in heart muscle cells. However, involvement of the crosstalk between cAMP and cGMP in neurons is yet to be addressed. Therefore, we investigated whether interaction between cAMP and cGMP modulates synaptic plasticity in SG neurons using slice patchclamp recording from rats. Synaptic activity was measured by excitatory post-synaptic currents (EPSCs) elicited by stimulation onto dorsal root entry zone. Application of 1 mM of 8-bromoadenosine 3,5-cyclic monophosphate (8-Br-cAMP) or 8-bromoguanosine 3,5-cyclic monophosphate (8-Br-cGMP) for 15 minutes increased EPSCs, which were maintained for 30 minutes. However, simultaneous application of 8-BrcAMP and 8-Br-cGMP failed to increase EPSCs, which suggested antagonistic cross-talk between two second messengers. Application of 3-isobutyl-1-methylxanthine (IBMX) that prevents degradation of cAMP and cGMP by blocking phosphodiesterase (PDE) increased EPSCs. Co-application of cAMP/cGMP along with IBMX induced additional increase in EPSCs. These results suggest that second messengers, cAMP and cGMP, might contribute to development of chronic pain through the mutual regulation of the signal transduction.
Intact germinal vesicle (GV) arrest and release are essential for maintaining the fertility of mammals inducing human. Intact germinal vesicle release, maturation of oocytes is maintained by very complex procedures along with folliculogenesis and is a critical step for embryonic development. Cyclic guanosine monophosphate (cGMP) has been suggested a key factor for meiotic arrest but so far its mechanisms are controversy. In this study we examine the effects of cGMP on germinal vesicle breakdown in cumulus-enclosed oocytes and denuded oocytes. Spontaneous maturation was inhibited by a cGMP agonist, 8-Br-cGMP with concentration dependent manners both in cumulus-enclosed oocytes and denuded oocytes. The inhibitory effect was more severe in denuded oocytes than cumulus-enclosed oocytes. The Rp-8-Br-cGMP and Rp-pCPT-8-Br-cGMP did not severely block GVB compared to 8-Br-cGMP. The spontaneous GVB inhibitory effects were different by the existence of cumulus. Based on them it is suggested that the cumulus modulates the role of cGMP in GV arrest.
The effect of acetylcholine, oxytocin and prostaglandin $F_{2{\alpha}}$ ($PGF_{2{\alpha}}$) on cyclic nucleotide levels in estrogen-primed rabbit whole uterus were studied in the presence and absence of 1-methyl-3-isobutyl xanthine (MIX), a phosphodiestrase inhibitor, and indomethacin, a prostagandin inhibitor. In the absence of MIX, acetylcholine increased guanosine 3', 5'-cyclic monophosphate (cGMP), but had no effect on adenosine 3', 5'-cyclic monophosphate (cAMP) levels. In contrast, oxytocin had no influence on cGMP, but decreased cAMP levels. $PGF_{2{\alpha}}$ increased cGMP and decreased cAMP levels. MIX increased both cAMP and cGMP levels. Oxytocin and $PGF_{2{\alpha}}$ further increased cGMP levels, indicating activation of guanylate cyclase activity. The ratio of cAMP/cGMP was decreased by uterine stinulants both in presence and absence of MIX. Indomethacin elevated cAMP and cGMP revels. The effects of uterine stimulants in the presence of indomethacin on cyclic nucleotide levels were varied from tissue to tisse. In general, oxytocin decreased cGMP and $PGF_{2{\alpha}}$ increased cAMP/cGMP levels, but the effects were statisically nonsignicficant. The cAMP/cGMP ratio was increased by uterine stimulant in the presence of indomethacin. In conclusion, uterine stimulants eased cAMP/cGMP ratio which indicates that the uterine stimulants have opposing effects on adenylate cyclase and guanylate cyclase activities. The endometrium plays a role in the regulation of cyclic nucleotide levels and uterine contraction by means of PG synthesis. Indomethacin has an unknown activities besides both of PG synthetase and phosphodiesterase inhibitions.
Phospholipase D (PLD) plays an important role as a signaling molecule in the activation of neutrophils. In this study, effect of nitric oxide (NO) and cGMP on the activation of PLD in human neutrophils was investigated. Sodium nitroprusside (SNP), an agent to produce NO spontaneously in cells, alone increased PLD activity and the maximal activation was obtained with 0.5 mM SNP. Dibutyryl-cAMP, an agent to increase an intracellular cAMP concentration inhibited formyl-Met-Leu-Phe (fMLP)-stimulated PLD activity but 8-bromo-cGMP (300 $\mu$M), an agent to increase an intracellular cGMP concentration did not affect basal and fMLP-stimulated PLD activity. NO-induced activation of PLD was not blocked by KT 5823, an inhibitor of cGMP-dependent protein kinase (PKG), suggesting that NO-induced PLD activation is not mediated by cGMP. NO also stimulated p38 mitogen activated protein kinase (MAPK) in human neutrophils, indicated by increased phosphorylation of p38 MAPK in Western blotting. NO-induced phosphorylation of p38 MAPK was not inhibited by KT 5823 or n-butanol. RhoA, an regulatory factor of PLD activation was trans-located from cytosolic fraction to plasma membranes by fMLP or phorbol ester, and fMLP-stimulated but not phorbol ester-stimulated translocation of RhoA was inhibited by cGMP. These results suggest that NO stimulates PLD activity through other unidentified facto.(s) than cGMP even though cGMP inhibits the artivation of RhoA.
In order to investigate the effect of intracellular cyclic GMP on the calcium channel, whole cell patch clamp technique with internal perfusion method was used in the single ventricular myocytes of the rabbit. Cyclic GMP, cGMP analogues, cAMP, isopernaline and forskolin were perfused into cells and their effects on the calcium current were analysed by applying depolarizing step pulse of 10 mV in amplitude for 200 msec from holding potential of -40 mV. Calcium currents usually activated from -30 mV and then reached a peak at +10 mV. Amplitude of the calcium current was standardized with membrane capacitance, 50 pF. Peak amplitude at +10 mV in control was -0.15 nA/50pF. When 100 mM cAMP was applied from the pipette, peak amplitude of calcium current increased to -0.32 nA and addition of 1 mM isoprenaline further increased its amplitude. In the presence of cGMP it alone also produced an increase of the calcium current to -0.52 nA/50pF and addition of isoprenaline or forskolin increased its magnitude to -[0.55~0.95] nA/50pF. Simultaneous application of cGMP and cAMP increased the calcium current to -0.67 nA/50pF. Among the cGMP analogues, 8-Br-cGMP was the most potent stimulant for the calcium current activation. From the above results it could be concluded tlat cGMP increases the calcium current not through cAMP dependent protein kinase nor cAMP dependent phosphodiesterase pathway, but through independent phosphorylation pathway, possibly cGMP dependent protein kinase pathway.
The aim of present study is to investigate the effects of cGMP on hyperpolarization activated inward current ($I_f$), pacemaker current of the heart, in rabbit sino-atrial node cells using the whole-cell patch clamp technique. When sodium nitroprusside (SNP, $80{\mu}M$), which is known to activate guanylyl cyclase, was added, $I_f$ amplitude was increased and its activation was accelerated. However, when $I_f$ was prestimulated by isopreterenol (ISO, $1{\mu}M$), SNP reversed the effect of ISO. In the absence of ISO, SNP shifted activation curve rightward. On the contrary in the presence of ISO, SNP shifted activation curve in opposite direction. $8Br-cGMP(100\;{\mu}M)$, more potent PKG activator and worse PDE activator than cGMP, also increased basal $I_f$ but did not reverse stimulatory effect of ISO. It was probable that PKG activation seemed to be involved in SNP-induced basal $I_f$ increase. The fact that SNP inhibited ISO-stimulated $I_f$ suggested cGMP antagonize cAMP action via the activation of PDE. This possibility was supported by experiment using 3-isobutyl-1-methylxanthine (IBMX), non-specific PDE inhibitor. SNP did not affect $I_f$ when $I_f$ was stimulated by $20{\mu}M$ IBMX. Therefore, cGMP reversed the stimulatory effect of cAMP via cAMP breakdown by activating cGMP-stimulated PDE. These results suggest that PKG and PDE are involved in the modulation of $I_f$ by cGMP: PKG may facilitate $I_f$ and cGMP-stimulated PDE can counteract the stimulatory action of cAMP.
These studies were designed to examine the differential effect of nitric oxide (NO) and cGMP on glutamate neurotransmission. In primary cultures of rat cerebellar granule cells, the glutamate receptor agonist N-methyl-D-aspartate (NMDA) stimulates the elevation of intracellular calcium concentration ($[Ca^{2+}]_i$), the release of glutamate, the synthesis of NO and an increase of cGMP. Although NO has been shown to stimulate guanylyl cyclase, it is unclear yet whether NO alters the NMDA-induced glutamate release and ${[Ca^{2+}]}_i$ elevation. We showed that the NO synthase inhibitor, NG-monomethyl-L-arginine (NMMA), partially prevented the NMDA-induced release of glutamate and elevation of ${[Ca^{2+}]}_i$ and completely blocked the elevation of cGMP. These effects of NO on glutamate release and [Ca2+]i elevation were unlikely to be secondary to cGMP as the cGMP analogue, dibutyryl cGMP (dBcGMP), did not suppress the effects of NMDA. Rather, dBcGMP slightly augmented the NMDA-induced elevation of ${[Ca^{2+}]}_i$ with no change in the basal level of glutamate or ${[Ca^{2+}]}_i$. The extracellular NO scavenger hydroxocobalamine prevented the NMDA-induced release of glutamate providing indirect evidence that the effect of NO may act on the NMDA receptor. These results suggest that low concentration of NO has a role in maintaining the NMDA receptor activation in a cGMP-independent manner.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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