To genetically breed powerful multifunctional antagonistic bacteria, the urease gene of alkalophilic Bacillus pasteurii was transferred into Bacillus subtilis YB-70 which had been selected as a powerful biocontrol agent against root-rotting fungus Fusarium solani. Urease gene was inserted into the HindIII site of pGB215-110 and designated pGU266. The plasmid pGU266 containing urease gene was introduced into the B. subtilis YB-70 by alkali cation transformation system and the urease gene was very stably expressed in the transformant of B. subtilis YB-70(pGU266). The optimal conditions for the transfomation were also evaluated. From the in vitro antibiosis tests against F. solani, the antifungal activity of B. subtilis YB-70 containing urease gene was much efficient than that of the non-transformed strain. Genetic improvement of B. subtilis YB-70 by transfer of urease gene for the efficient control seemed to be responsible for enhanced plant growth and biocontrol efficacy by combining its astibiotic action and ammonia producing ability.
Bacterial isolates, CC178, PTC25, HC39 and KY165 originally obtained from the leaves of cucumber or tomato were selected for biocontrol agents against gray mold of cucumber and tomato by in vivo cucumber seedling assay. Each suspension of the selected epiphytic bacteria were sprayed three times at seven-day interval from early stage of cucumber in a field. Incidence of gray mold on cucumber fruits treated with isolates CC178, PTC25, HC39 and KY165 was 15.3%, 18.2%, 23.6%, and 10.4%, respectively, whereas that of control was 38.0% after 7 days of final spray. On the other hand, treatment with the selected isolates, CC178, PTC25, HC39, and KY165 on tomato showed 2.2%, 1.3%, 2.9%, and 3.5% in the incidence of gray mold on leaves, whereas that of control was 9.3%. All selected isolates had strong antagonistic activity against Botrytis cinerea on dual culture plate assay.
Rhizobacteria are used as inoculants to enhance crop yield and for biological control of fungal pathogens. Fluorescent pseudomonads isolated from the rhizosphere of groundnut showed suppression of the phytopathogen Macrophomina phaseolina that causes charcoal rot of groundnut, an economically important agroproduct. Two strains of fluorescent pseudomonads, designated as PS1 and PS2, were selected as a result of in vitro antifungal activity. After 5 days of incubation at $28{\pm}1^{\circ}C$, both PS1 and PS2 caused clear inhibition zones in dual cultures, restricting the growth of M. phaseolina by 71 % and 74%, respectively. Both the strains were capable of producing siderophores, indole acetic acid, and hydrocyanic acid, and causing phosphate solubilization under normal growth conditions. These strains, when used as inoculants in groundnut, enhanced germination up to 15% and 30% with subsequent increase in grain yield by 66% and 77%, respectively. Conversely, when the pathogen alone was tested 57% decrease in yield was recorded. Thus the studies revealed the potential of the two pseudomonads not only as biocontrol agents against M. phaseolina, but also as a good growth promoter for groundnut.
The goal of this study was to identify and characterize selected Trichoderma isolates by metabolic profiling and enzyme assay for evaluation of their potential as biocontrol agents against plant pathogens. Trichoderma isolates were obtained from the Rural Development Administration Genebank Information Center (Wanju, Republic of Korea). Eleven Trichoderma isolates were re-identified using ribosomal DNA internal transcribed spacer (ITS) regions. ITS sequence results showed new identification of Trichoderma isolates. In addition, metabolic profiling of the ethyl acetate extracts of the liquid cultures of five Trichoderma isolates that showed the best anti-Phytophthora activities was conducted using gas chromatography-mass spectrometry. Metabolic profiling revealed that Trichoderma isolates shared common metabolites with well-known antifungal activities. Enzyme assays indicated strong cell wall-degrading enzyme activities of Trichoderma isolates. Overall, our results indicated that the selected Trichoderma isolates have great potential for use as biocontrol agents against plant pathogens.
Commercial biocontrol of microbial plant diseases and plant pests, such as nematodes, requires field-effective formulations. The isolate Pseudomonas chlororaphis O6 is a Gram-negative bacterium that controls microbial plant pathogens both directly and indirectly. This bacterium also has nematocidal activity. In this study, we report on the efficacy of a wettable powder-type formulation of P. chlororaphis O6. Culturable bacteria in the formulated product were retained at above $1{\times}10^8$ colony forming units/g after storage of the powder at $25^{\circ}C$ for six months. Foliar application of the diluted formulated product controlled leaf blight and gray mold in tomato. The product also displayed preventative and curative controls for root-knot nematode (Meloidogyne spp.) in tomato. Under laboratory conditions and for commercially grown melon, the control was at levels comparable to that of a standard commercial chemical nematicide. The results indicated that the wettable powder formulation product of P. chlororaphis O6 can be used for control of plant microbial pathogens and root-knot nematodes.
Kim, Chul Hong;Kim, Yong Hwan;Anderson, Anne J.;Kim, Young Cheol
The Plant Pathology Journal
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제30권2호
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pp.220-227
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2014
The GacS/GacA system in the root colonizer Pseudomonas chlororaphis O6 is a key regulator of many traits relevant to the biocontrol function of this bacterium. Proteomic analysis revealed 12 proteins were down-regulated in a gacS mutant of P. chlororaphis O6. These GacS-regulated proteins functioned in combating oxidative stress, cell signaling, biosynthesis of secondary metabolism, and secretion. The extent of regulation was shown by real-time RT-PCR to vary between the genes. Mutants of P. chlororaphis O6 were generated in two GacS-regulated genes, trpE, encoding a protein involved in tryptophan synthesis, and prnA, required for conversion of tryptophan to the antimicrobial compound, pyrrolitrin. Failure of the trpE mutant to induce systemic resistance in tobacco against a foliar pathogen causing soft rot, Pectobacterium carotovorum SCCI, correlated with reduced colonization of root surfaces implying an inadequate supply of tryptophan to support growth. Although colonization was not affected by mutation in the prnA gene, induction of systemic resistance was reduced, suggesting that pyrrolnitrin was an activator of plant resistance as well as an antifungal agent. Study of mutants in the other GacS-regulated proteins will indicate further the features required for biocontrol-activity in this rhizobacterium.
KYC 3262 was selected as a biocontrol agent against anthracnose on hot pepper from 813 extracts of myxobacterial isolates. Dual culture with Colletotrichum acutatum and 813 myxobacterial extracts was conducted, and 19 extracts were selected that inhibited germination and mycelial growth of C. acutatum. All selections were Sorangium cellulosum, which are cellulolytic myxobacteria from soil. With the infection bioassay on detached fruits in airtight containers, KYC 3262, KYC 3512, KYC 3279, and KYC 3584 were selected. The listed four myxobacteria were cultured in CSG/1 liquid media, and harvested filtrates were sprayed on the infected fruits. KYC 3262 was selected from the studies of attached fruit in a greenhouse study. KYC 3262 filtrate was applied for 3 years (from 2011 to 2013) in a field study in Asan, Republic of Korea. Control values of the KYC 3262 in the field were 31%, 89%, and 82% in 2011, 2012, and 2013, whereas values of the fungicide spray treatment were 19%, 97%, and 91%, respectively. Yields (kg/20 plants) of the KYC 3262 were 2.66 kg and 18.6 kg in 2011 and 2013, respectively, and those of the fungicide treatment were 2.0 kg and 20.2 kg, in 2011 and 2013, respectively.
Citrus canker is a devastating disease of citrus caused by Xanthomonas citri subsp. citri (Xcc). A total of 134 endophytic bacteria were isolated from various gymnospermic and angiospermic plants. They were screened for their antagonistic activities against three wild-type and six streptomycin-resistant Xcc strains. TbL-22 and TbL-26, both later identified as Bacillus thuringiensis, inhibited all the wild and resistant Xcc strains. TbL-22 exerted the highest antagonistic activity against XccW3 and XccM6 with inhibition zones of $20.64{\pm}0.69$ and $19.91{\pm}0.87mm$, respectively. Similarly ethyl acetate extract of TbL-22 showed highest inhibition zones $15.31{\pm}2.08$ and $19.37{\pm}3.17mm$ against XccW3 and XccM6, respectively. TbL-22 reduced canker incidence on infected leaves by 64.05% relative to positive controls. Scanning electron microscopy revealed that the cell membranes of Xcc treated with ethyl acetate extract of TbL-22 were ruptured, lysed, and swollen. B. thuringiensis TbL-22 can effectively and sustainably controls streptomycin-resistant citrus canker.
Kim, Min-Jung;Chae, Dae-Han;Cho, Gyeongjun;Kim, Da-Ran;Kwak, Youn-Sig
The Plant Pathology Journal
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제35권5호
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pp.473-485
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2019
Kiwifruit (Actinidia spp.) is an economically important crop and a bacterial canker disease, caused by Pseudomonas syringae pv. actinidiae (Psa), is the most destructive disease in kiwifruit production. Therefore, prevent and control of the disease is a critical issue in kiwifruit industry worldwide. Unfortunately, there is no reliable control methods have been developed. Recently, interest in disease control using microbial agents is growing. However, kiwifruit microbiota and their roles in the disease control is mainly remaining unknown. In this study, we secured bacterial libraries from kiwifruit ecospheres (rhizosphere, endospere, and phyllosphere) and screened reliable biocontrol strains against Psa. As the results, Streptomyces racemochromogenes W1SF4, Streptomyces sp. W3SF9 and S. parvulus KPB2 were selected as anti-Psa agents from the libraries. The strains showed forcible antibacterial activity as well as exceptional colonization ability on rhizosphere or phyllosphere of kiwifruit. Genome analyses of the strains suggested that the strains may produce several anti-Psa secondary metabolites. Our results will contribute to develop biocontrol strains against the kiwifruit canker pathogen and the disease management strategies.
An antagonistic bacterium, Pseudomonas flurorescens MC07 inhibited the mycelial growth of Rhizoctonia solani, Pythium ultimum, Fusarium oxysporum, and Phytophthora capsici in on potato dextrose agan (PDA) and other media. The strain MC07 conlonizes various plant roots and possesses antifungal activity. To determine the role of antifungal activity of the bacterium in disease suppression, a mutant Okm3-4 which lost its activity was isolated after screening 2,500 colonies generated by Omegon-Km insertions. The mutant Okm3-4 showed diminished growth inhibition of R. solani, P. ultimum, F. oxysporum, and Ph. capsici in vitro and had reduced suppressive effects on sesame damping.-off compared to the parental strain. In soils, accumulation of the pathogens by continuous cropping, 90% of sesame plants were killed by natural infection of damping-off whereas, only 29% of plants grown from seeds treated with MC07 were killed. On the other hand, 85% of plants died when sesame seeds were treated with the Okm3-4 cells. This indicated that antifungal activity of MC07 in vitro is directly responsible for the suppression of damping-off disease. Emergence rates of sesame seeds in pots containing diseased soil were 33%. However, MC07 treatments on seeds significantly improved emergence rates, which has similar effects of Benomyl treatment. The mutant Okm3-4 exhibited 53% of emergence rate. This indicated that antifungal activity of MC07 also affects the emergence rate of sesame seeds.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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