Microencapsulation of acyclovir, an effective antiviral agent which acts as a specific inhibitor of herpes DNA polymerase, by carbopol-gelatin complex coacervation has been carried out to develop an oral controlled release preparation, which could improve the absorption characteristics in GI tract. After dissolving carbopol and gelatin separately in distilled water at $40^{\circ}C$, gelatin solution was mixed with carbopol solution while stirring at the same temperature. The pH of the mixture was lowered gradually by dropwise addition of 10% HCI with continuous stirring, and then, at pH 3.5, positively charged gelatin molecules were attracted to negatively charged carbopol. These coacervation processes were observed by optical microscopy during preparation. Plasma concentrations of acyclovir in rats after an oral administration of microcapsule suspension were assayed by HPLC, and pharmacokinetic parameters were calculated based on the model-independent analyses. Two standard formulations, oral solution and intravenous bolus injection, were used as references to compare the bioavailability. It has been revealed that $C_{max}$, $T_{max}$, and MRT of microcapsule suspension were greater than those of oral solution, which results in about two-fold increases in bioavailability. Therefore, in conclusion, the carbopol-gelatin microcapsule of acyclovir might be evaluated as an effective oral controlled release preparation which could increase the bioavailability of acyclovir.
Plasma and saliva concentrations of acetaminophen (AAP) were determined at various time points by HPLC after oral administration of AAP tablets (AAP 500 mg) to four healthy male Korean subjects. Saliva concentrations (S) of AAP were significantly correlated with plasma AAP concentrations (P). The S/P ratio of AAP was calculated to be 1.05 (r =0.944, $p<10^{-6}$) for all the data points from the subjects. It showed a little intersubject variation and ranged from 0.89 to 1.46 in each subject. Bioavailability parameters such as AUC, $C_{max}$ and $T_{max}$ which are usually obtained from the plasma concentration data will be predictable approximately by saliva concentration data. Saliva seems to be very convinient and useful samples for the preliminary studies of bioavailability and bioequivalence of AAP preparations, since it can be collected frequently without any painful venipuncture to the subjects, that is inevitable in plasma sampling. Evaluation of the bioavailability of a preparation by saliva samples will reduce the cost, time and safety risk greatly in developing a new drug delivery system for AAP.
The aim of this study was to investigate the effect of efonidipine on the pharmacokinetics of warfarin after oral and intravenous administration of warfarin in rats. Warfarin was administered orally (0.2 mg/kg) or intravenously (0.05 mg/kg) without or with oral administration of efonidipine (1 or 3 mg/kg) in rats. The effect of efonidipine on the cytochrome P450 (CYP) 3A4 activity was also evaluated. Efonidipine inhibited CYP3A4 enzyme activity with 50% inhibition concentration ($IC_{50}$) of $0.08{\mu}M$. Compared to those in the oral control group (warfarin without efonidipine), the area under the plasma concentration-time curve (AUC) of warfarin was significantly greater (1 mg/kg, P<0.05; 3 mg/kg, P<0.01) by 25.9-59.0%, and the peak plasma concentration ($C_{max}$) was significantly higher (3 mg/kg, P<0.05) by 26.2% after oral administration of warfarin with efonidipine, respectively. The total body clearance of warfarin was significantly (3 mg/kg, P<0.05) decreased by efonidifine. Consequently, the relative bioavailability of warfarin was increased by 1.26- to 1.59-fold and the absolute bioavailability of warfarin with efonidipine was significantly greater by 59.7-75.4 % compared to that in the control group (47.4%). In contrast, efonidipine had no effect on any pharmacokinetic parameters of warfarin given intravenously. Therefore, the enhanced oral bioavailability of warfarin may be due to inhibition of CYP 3A4-mediated metabolism in the intestine and/or liver and to reduction of total body celarance rather than renal elimination, resulting in reducing first-pass metabolism by efonidipine.
5-HT$_{2C}$ receptors have been considered as therapeutic targets for the treatment of various central nervous system disorders such as depression, anxiety, epilepsy, schizophrenia and sleep disorders. We chemically synthesized KKHQ80109 (K09) and KKHQ80114 (K14), selective 5-HT$_{2C}$ agonists, with the purpose of developing therapeutic agents for the treatment of obesity. The objective of this work is to investigate pharmacokinetic parameters and bioavailability of K09 and K14 in rats given orally or intravenously. Oral administration of 20 mg/kg K09 results in 4.11 hr of the terminal half-life and 89.16 ng/mL of C$_{max}$ at 5.00 hr (T$_{max}$). The terminal half-life of K14 was 3.83 hr with 215.81 ng/mL of C$_{max}$ at 3.33 hr (T$_{max}$) after oral dosing of 20 mg/kg K14, indicating that K14 is more rapidly absorbed than K09. Bioavailability showed 0.17-0.21 for K09 and 0.19-0.23 for K14. Urinary excretion of parent K09 and K14 was less than 1%, indicating that K09 and K14 undergo very extensive hepatic metabolism.
The present study was to investigate the effect of glipizide on the pharmacokinetics of losartan in rats. Losartan was administered intravenously (3 mg/kg) and orally (9 mg/kg) in the presence and absence of glipizide (0.3 and 1 mg/kg) to rats. The pharmacokinetic parameters of losartan were significantly altered by the presence of glipizide compared with the control group (given losartan alone). Presence of glipizide significantly (p<0.05, 0.3 mg/kg) increased the area under the plasma concentration-time curve (AUC) of losartan by 48.2% and peak plasma concentration ($C_{max}$) of losartan by 47.4%. Consequently, the absolute bioavailability (AB%) of losartan in the presence of glipizide was 38%, which was enhanced significantly (p<0.05) compared to that in the oral control group (25%). The relative bioavailability (RB%) of losartan increased by 1.18- to 1.48-fold in the presence of glipizide. However, there was no significant change in the peak plasma concentration ($T_{max}$) and terminal half-life ($T_{1/2}$) of losartan in the presence of glipizide. In contrast, glipizide did not affect the pharmacokinetics of intravenous losartan. In conclusion, the presence of glipizide significantly enhanced the oral bioavailability of losartan, implying that glipizide might be mainly to inhibit the cytochrome P450 (CYP) 2C9-mediated metabolism, resulting in reducing gastrointestinal and/or hepatic first-pass metabilism of losartan rather than in reducing P-glycoprotein-mediated efflux and renal elimination of losartan. Concurrent use of glipizide with losartan should require close monitoring for potential drug interactions.
The study was performed to compare the dissolution, diffusion and absorption characteristics using Sartorius dissolution and absorption simulator and in vivo bioavailability of commercially available rifampicin capsules. Both brands C and F showed similar dissolution patterns and absorption properties through artificial gastric barrier in Sartorius simulator. Diffusion rate constants through the membrane of brands C and F were $3.04\;{\times}40^{-3}$ and $2.88\;{\times}\;10^{-3}cm/min$, respectively. Rifampicin capsules were administered orally to six fasted healthy volunteers according to cross-over design. The pharmacokinetic parameters between brands C and F, maximum plasma drug concentration$(C_{max})$, the time to reach $C_{max}$, absorption rate constant and area under the curve $(AUC_{0-24hr})$, elimination rate constant, and amount of drug excreted in urine were 6.11 and $7.27\;{\mu}g/ml$, 2.71 and 1.52 hr, 0.6371 and $1.6456 hr^{-1}$, 57.84 and $57.28\;{\mu}g\;{\cdot}\;hr/ml$, 0.1891 and $0.1734 hr^{-l}$, 119.98 and 119.93 mg, respectively. On the basis of experimental results, it was concluded that the bioavailability of brand C rifampicin capsules was almost the same as that of brand F rifampicin capsules.
In vivo clearance of BMS-182874 was primarily due to metabolism via stepwise N-demethylation. Despite in vivo clearance approached ca 50% of the total liver plasma flow, BMS-182874 was completely bioavailable after oral administration in rats. Saturable first-pass metabolism and the role of extrahepatic tissue were evaluated as possible reasons for complete oral bioavailability despite extensive metabolic clearance. Pharmacokinetic parameters were obtained after an intravenous and a range of oral doses of BMS-182874 in rats. Bile and urine were collected from bile-duct cannulated (BDC) rats and the in vivo metabolic pathways of BMS-182874 were evaluated. Pharmacokinetics of BMS-182874 were also compared in nephrectomized (renally impaired) vs. sham-operated control rats. Oral bioavailability of BMS-182874 averaged 100%, indicating that BMS-182874 was completely absorbed and the first-pass metabolism (liver or intestine) was negligible. The AUC and C/sub max/ values increased dose-proportionally, indicating kinetics were linear within the oral dose range of 13 to 290 mmole/kg. After intravenous administration of BMS-182874 to BDC rats, about 2% of intact BMS-182874 was recovered in excreta, indicating that BMS-182874 was cleared primarily via metabolism in vivo. The major metabolite circulating in plasma was the mono-N-desmethyl metabolite and the major metabolite recovered in excreta was the di-N-desmethyl metabolite. In vivo clearance of BMS-182874 was significantly reduced in nephrectomized rats. These observations suggest saturable first-pass metabolism is unlikely to be a mechanism for complete oral bioavailability of BMS-182874. Reduced clearance observed in the nephrectomized rats suggests that extrahepatic tissues (e.g., kidneys) may play an important role in the in vivo clearance of xenobiotics that are metabolized via N-demethylation.
This study was conducted to investigate the bioavailability of calcium derived from starfish as a new calcium source. Four-week old Sprague-Dawley female rats were divided 6 groups. The rats were received experimental diets containing two kinds of Ca sources, CaCO₃ or starfish, and three levels of Ca, low (0.1 %), medium (0.5%) and high (1.0%), respectively, for 6 weeks. The parameters which related to Ca bioavailability were measured : Serum Ca concentration, Alkaline phosphatase(ALP) and GOT activities ; tissue Ca contents, bone dimension and Ca, P, Mg contents; Ca retention and apparent absorption. Starfish Ca-fed rats did not show any difference from CaCO₃-fed rats in terms of growth, food intake and FER. Serum Ca, ALP and GOT activities as well as tissue Ca contents were not different between CaCO₃- and starfish Ca-fed groups. Although dimension of femur and lumbar was not different between CaCO₃- and starfish Ca-fed rats, ash content was high in starfish Ca-fed rats. Ca and P contents of femur and lumbar were not different between both groups. Starfish Ca-fed groups showed higher Mg contents than CaCO₃-fed groups in both femur and lumbar. Ca absorption rate and retention rate were significantly higher in starfish Ca-fed rats. These results indicate that Ca derived starfish did not show any negative effect on growth and Ca metabolism of rats compared to calcium carbonate. Starfish Ca can be recommended as a good Ca source on the basis of higher Ca absorption and bioavailability.
The objective of this study was to elucidate the feasibility to improve the solubility and bioavailability of poorly water-soluble itraconazole via solid dispersions by using supercritical fluid (SCF). Solid dispersions of itraconazole with hydrophilic polymer, HPMC 2910, were prepared by the aerosol solvent extraction system (ASES) under different process conditions of temperature/pressure. The particle size of solid dispersions ranged from 100 to 500 nm. The equilibrium solubility increased with decrease (15 to 10 MPa) in pressure and increase (40 to $60^{\circ}C$) in temperature. The solid dispersions prepared at $60^{\circ}C$/15 MPa showed a slight increase in equilibrium solubility (approximately 27-fold increase) when compared to pure itraconazole, while those prepared at $60^{\circ}C$/10MPa showed approximately 610-fold increase and no endothermic peaks corresponding to pure itraconazole were observed, indicating that itraconazole might be molecularly dispersed in HPMC 2910 in the amorphous form. The amorphous state of itraconazole was confirmed by DSC/XRD data. The pharmacokinetic parameters of the ASES-processed solid dispersions, such as $T_{max},\;C_{max},\;and\;AUC_{0-24h}$ were almost similar to $Sporanox_{\circledR}$ capsule which shows high bioavailability. Hence, it was concluded that the ASES process could be a promising technique to reduce particle size and/or prepare amorphous solid dispersion of drugs in order to improve the solubility and bioavailability of poorly water-soluble drugs.
A self-microemulsifying drug delivery system(SMEDDS) composed of Cremophor $EL^{\circledR},\;Labrasol^{circledR}$, and Lauroglycol $FCC^{circledR}$ was prepared for the enhancement of solubility, dissolution rate and bioavailability of ibuprofen(IBP), which is water-insoluble but soluble in oils and surfactants. Phase diagram with various regions including microemulsion area was depicted. The SMEDDS was encapsulated in soft gelatin capsules and their dissolution characteristics in various media were observed in comparison to the generic products commercially available in the market. Soft capsules of SMEDDS formulation showed better dissolution profiles, especially in acidic condition, than the others. For the period of 1 hr dissolution in pH 1.2 medium, it reached over 70% dissolution from soft capsules, compared to less than 40% dissolution from commercial reference tablets. On the other hand, in vivo pharmacokinetic parameters were obtained after oral administrations of different IBP preparations to Sprague Dawley rats. SMEDDS formulation showed higher $C_{max}$ and greater $AUC_{0-5hr}$ than the suspension of reference tablet or IBP powder. Therefore, it is possible to conclude that a newly developed soft capsules employing SMEDDS provides an alternative preparation to improve oral bioavailability of IBP.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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