A cyclomaltodextrinase (SPCD) gene was cloned from Streptococcus pyogenes ATCC 700294. Its open reading frame consists of 567 amino acids (66.8 kDa), which shows less than 37% of amino acid sequence identity with the other CDase-family enzymes. The homo-dimeric SPCD with C-terminal six-histidines was expressed and purified from Escherichia coli. It showed the highest activity at pH 7.5 and $45^{\circ}C$, respectively. SPCD has the broad substrate specificities against ${\beta}$-cyclodextrin, starch, and maltotriose to produce mainly maltose, whereas it hydrolyzes pullulan to panose. It can also catalyze the hydrolysis of acarbose to glucose and acarviosine-glucose. Interestingly, it showed much higher activity on ${\beta}$-cyclodextrin and acarbose than that on starch, pullulan, or maltotriose, which makes SPCD distinguished from common CDase-family enzymes. Although SPCD has significantly high acarbose-hydrolyzing activity, it showed negligible transglycosylation activity.
A bacterial strain, KSl, possessing strong antifungal activity was isolated from soil samples of ginseng fields and identified as Bacillus subtilis. In greenhouse test, the culture filtrate of B. subtilis KS1 showed strong protective effect against several fungal diseases of agricultural plants such as cucumber gray mold and wheat leaf rust. In addition, the crude butanol fraction of the culture filtrate exhibited antagonistic effect against several fungi including plant or human pathogens, such as Botrytis maydis, Chytridium lagenarium and Candida albicans. The antifungal compound, SW1, produced by B. subtilis KS1 was purified through consecutive chromatographic separations on a pep-RPC column and a ${\mu}$ Bondapak $C_{18}$ reverse phase column. Temperature and pH showed little effect on the stability of the compound in the ranges $-20-121^{\circ}C$ and pH 4.0-10.0, respectively. The composition and structural characteristics of SW1 were analysed by HPLC and by $^1H-,\;^1H-^1H-COSY$, NOESY, COSY-NOESY and HOHAHA NMR spectroscopy, respectively, which revealed that the compound belongs to iturin A, a typical cyclic antifungal compound produced by B. subtilis. In contrast to the previously reported iturin A compounds which have one or no $-CH_3$ side chain in the hydrophobic hydrocarbon chain of ${\beta}-amino$ acids, SW1 was shown to have a ${\beta}-amino$ acid containing 12-carbon skeleton with two $-CH_3$ side chains.
Changes in quality characteristics of Bijijang (fermented soybean curd residus) prepared at $35^{\circ}C\;and\;40^{\circ}C$ for 0, 12, 24, 36, and 48 hr were investigated. Acidity of Bijijang increased, whereas pH and Hunter's color values decreased during fermentation. Immediately after Bijijang preparation, ${\alpha}-and\;{\beta}-amylase$ activities were very low, ${\beta}-Amylase$ activity during fermentation increased rapidly, with those fermented at $40^{\circ}C$ higher than at $35^{\circ}C$. Neutral pretense activity was significantly higher than acidic pretense activity, and increased gradually after 12 hr. Change in total nitrogen content in Bijijang was insignificant, whereas contents of amino-type and water-soluble nitrogens increased significantly during fermentation. Major free amino acids of Bijijang were Arg, Pro, Glu, Thr, Ser, and Lys at initial fermenting stage, and, as fermentation progressed, contents of Cys, Met Glu, Ile, Leu, and Phe increased. Reducing sugar contents of Bijijang fermented at $40^{\circ}C$ were higher than those fermented at $35^{\circ}C$. Sucrose content decreased and glucose content increased. Glucoside (genistin and daidzin) contents decreased and aglycone (genistein and daidzein) contents increased during preparation of Biji and fermentation of Bijijang. Contents of free sugars and isoflavones were higher in Bijijang fermented at $40^{\circ}C$ than at $35^{\circ}C$. Based on these results, fermentation at $40^{\circ}C$ for 48 hr was determined to be optimum fermentation condition for Bijijang.
An exoinulinase (${\beta}-D-fructofuranosidase$) gene was cloned by chromosome walking along the upstream region of the endoinulinase gene of Pseudomonas mucidolens isolated from soil. the exoinulinase gene consisted of an ORF of 0,506 bp encoding a polypeptide of 501 amino acids with a deduced molecular weight of 55,000. The exoinulinase produced by the recombinant Escherichia coli $DH5{\alpha}$ strain was also purified to homogeneity as determined by SDS-PAGE and a zymogram. The molecular weight of the purified exoinulinase according to both SDS-PAGE and gel filtration matched the deduced molecular weight of the protein described above, thereby indicating that the native form of the exoinulinase was a monomer. The purified enzyme hydrolyzed activity value of 2.0. Furthermore, no inulo-oligomers were liberated from the inulin substrate in the enzymatic reaction mixtures incubated for 90 min at $55^{\circ}C$. Taken together, these results indicate that the purified ${\beta}-D-fructofuranosidase$ was an exoinulinase. The pH and temperature optima of the exoinulinase were pH 6.0 and $55^{\circ}C$, respectively. the enzymehad no apparent requirement for a cofactor, and its activity was completely inactivated by $Ag^{+},{\;}Hg^{2+},{\;}and{\;}Zn^{2+}$. Kinetic experiments gave $K_m,{\;}V_{max},{\;}and{\;}K_{cat}$ values for inulin of 11.5 mM, 18 nM/s, and $72{\;}s^{-1}$, respectively. the exoinulinase was fairly stable in broad pH conditions (pH 5-9), and at pH 6.0 it showed a residual activity of about 70% after 4 h incubation at $55^{\circ}C$.
Castro, Fernanda Cavallari de;Cruz, Maria Helena Coelho;Leal, Claudia Lima Verde
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.29
no.8
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pp.1065-1074
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2016
Growth factors play an important role during early ovarian development and folliculogenesis, since they regulate the migration of germ cells to the gonadal ridge. They also act on follicle recruitment, proliferation/atresia of granulosa cells and theca, steroidogenesis, oocyte maturation, ovulation and luteinization. Among the growth factors, the growth differentiation factor 9 (GDF9) and the bone morphogenetic protein 15 (BMP15), belong to the transforming growth factor beta (TGF-${\beta}$) superfamily, have been implicated as essential for follicular development. The GDF9 and BMP15 participate in the evolution of the primordial follicle to primary follicle and play an important role in the later stages of follicular development and maturation, increasing the steroidogenic acute regulatory protein expression, plasminogen activator and luteinizing hormone receptor (LHR). These factors are also involved in the interconnections between the oocyte and surrounding cumulus cells, where they regulate absorption of amino acids, glycolysis and biosynthesis of cholesterol cumulus cells. Even though the mode of action has not been fully established, in vitro observations indicate that the factors GDF9 and BMP15 stimulate the growth of ovarian follicles and proliferation of cumulus cells through the induction of mitosis in cells and granulosa and theca expression of genes linked to follicular maturation. Thus, seeking greater understanding of the action of these growth factors on the development of oocytes, the role of GDF9 and BMP15 in ovarian function is summarized in this brief review.
A specific deleted version of ARABIDOPSIS RESPONSE REGULATOR1 (ARR1) lacking the signal receiver domain (1.152 amino acids)-coding sequence, referred to as $ARR1{\Delta}DDK$, was amplified using Arabidopsis thaliana cDNA prepared from adult leaves and transferred into the genome of Nicotiana tabacum cv. Samsun under the transcriptional control of a ${\beta}$-estradiol-inducible expression system. The ectopic expression of $ARR1{\Delta}DDK$ affected the morphology of transgenic seedlings and their segments in vitro. In the presence of an inducer, ${\beta}$-estradiol, ectopic expression of $ARR1{\Delta}DDK$ induced only the formation of soft, pseudo-bulbous tissue in the root tip region of intact seedlings, which appeared similar to callus generated on a hypocotyl segment in the presence of 2,4-D and 6-benzyladenine (BA), both at $1\;{\mu}M$. Those callus tissues on the root tip region could not generate shoots unless $1\;{\mu}M$ BA was supplied. In segment culture, ectopic expression of $ARR1{\Delta}DDK$ induced calluslike tissue around the cut-end of cotyledon and hypocotyl segments with occasional shoot formation, suggesting that the expression of $ARR1{\Delta}DDK$ could substitute for the effects of cytokinin on these segments. Additionally, treatment with only ${\beta}$-estradiol induced NtWUS, a WUS ortholog in tobacco, which was detected during the process of callus tissue formation in the root tip region and also in cotyledon or hypocotyl segments. These findings suggest that the NtWUS might be associated in the transdifferentiation process caused by the functional regulation of $ARR1{\Delta}DDK$ in transgenic tobacco seedlings.
Hwang, Ji Yeon;Shim, Ji Seon;Song, Min-Young;Yim, Sung-Vin;Lee, Seung Eun;Park, Kang-Sik
Journal of Ginseng Research
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v.40
no.3
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pp.278-284
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2016
Background: The ginsenoside Rb1 (Rb1) is the most abundant compound in the root of Panax ginseng. Recent studies have shown that Rb1 has a neuroprotective effect. However, the mechanisms underlying this effect are still unknown. Methods: We used stable isotope labeling with amino acids in cell culture, combined with quantitative mass spectrometry, to explore a potential protective mechanism of Rb1 in ${\beta}$-amyloid-treated neuronal cells. Results: A total of 1,231 proteins were commonly identified from three replicate experiments. Among these, 40 proteins were significantly changed in response to Rb1 pretreatment in ${\beta}$-amyloid-treated neuronal cells. Analysis of the functional enrichments and protein interactions of altered proteins revealed that actin cytoskeleton proteins might be linked to the regulatory mechanisms of Rb1. The CAP1, CAPZB, TOMM40, and DSTN proteins showed potential as molecular target proteins for the functional contribution of Rb1 in Alzheimer's disease (AD). Conclusion: Our proteomic data may provide new insights into the protective mechanisms of Rb1 in AD.
For the development of a glucanolytic yeast strain. the seceretion of endo-1.4-$\beta$-D-glucanase (CMCase) of Bacillus subtilis was performed in yeast using glucoamylase gene (STA1) of Saccharomyces diastaticus. A 1.7 kb-DNA fragment of STA1 gene containing authentic promoter, signal sequence, threonine serine-rich (TS) region and N-terminal region (98 amino acids) of mature glucoamylase was ligated to YEp 24. E. coli-yeast shuttle vector. And then. CMCase structural gene of B. subtilis was fused in frame with the 1.7 kb-DNA fragment of STA1 gene, resulting in recombinant plasmid pYES('24. Yeast transformant harboring pYESC24 had no CMCase activity. So. we deleted TS region and N-terminal region of mature glucoamylase existing between signal sequence and CMCase structural gene in pYESC24. consequently constructed recombinant plasmid pYESC11. The yeast transformed with the newly constructed recombinant plasmid pYESC11 efficiently secreted CMCase to extracellular medium. After 4 days culture. total CMCase activity of this transformant was 44.7 units/ml and over 93% of total CMCase activity was detected in culture supernatant.
7S and 11S globulins are two major storage proteins in soybean seed. For improving the quality of soybean seed protein, an increase of 11S/7S ratio would be a desirable objective because 11S globulin contains much more sulfur-containing amino acids than 7S globulin. In this study, six soybean varieties grown at three locations were used for genetic variation analysis of 7S and 11S globulins. It was possible to screen the soybean genotypes having aberrant subunit compositions of the two globulins by a sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). So, heritabilities, genotypic and phenotypic correlations among eight globulin fraction contents of soybean seeds were estimated. The mean value of 7S and 11S globulin fraction contents were 38.9% and 61.1%, respectively, and the ratio of 7S to 11S globulin ranged from 0.58 to 0.74. The high heritability value was found in $\beta$ subunits but the values of acidic and basic subunits were relatively low. Genotypic correlations were higher than the corresponding phenotypic correlations in most of globulin subunit contents. $\beta$ subunits was negatively correlated with $\alpha$ and $\alpha$' subunits among 7S fractions, while no significant correlation between $\alpha$ and $\alpha$' subunits could be found In case of 11S fractions, acidic and basic subunits exhibited no genotypic but negative phenotypic correlation.
A special eosinophilic agarase exo-type ${\beta}$-agarase gene, AgaDL6, was cloned from a marine agar-degrading bacterium, Flammeovirga sp. HQM9. The gene comprised 1,383-bp nucleotides encoding a putative agarase AgaDL6 of 461 amino acids with a calculated molecular mass of 52.8 kDa. Sequence analysis revealed a ${\beta}$-agarase domain that belongs to the glycoside hydrolase family (GH) 16 and a carbohydrate-binding module (CBM_4_9) unique to agarases. AgaDL6 was heterologously expressed in Escherichia coli BL21 (DE3). Enzyme activity analysis of the purified protein showed that the optimal temperature and pH of AgaDL6 were $50^{\circ}C$ and 3.0, respectively. AgaDL6 showed thermal stability by retaining more than 98% of activity after incubation for 2 h at $50^{\circ}C$, a feature quite different from other agarases. AgaDL6 also exhibited outstanding acid stability, retaining 100% of activity after incubation for 24 h at pH 2.0 to 5.0, a property distinct from other agarases. This is the first agarase characterized to have such high acid stability. In addition, we observed no obvious stimulation or inhibition of AgaDL6 in the presence of various metal ions and denaturants. AgaDL6 is an exo-type ${\beta}$-1,4 agarase that cleaved agarose into neoagarotetraose and neoagarohexaose as the final products. These characteristics make AgaDL6 a potentially valuable enzyme in the cosmetic, food, and pharmaceutical industries.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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