In order to investigate the safety of Aralia elata extract causing the reduction in the blood glucose level and oxidative stress in diabetes animals, these genotoxicity studies in bacterial and mammalian cell assay system such as Ames bacterial reverse mutation test and chromosomal aberration assay were performed. As results, in Ames bacterial reversion assay the extract in the range of 5,000-625 ug/plate did not induce mutagenicity in Salmonella typhimurium TA 98, TA 100, TA 1535 and TA 1537 strains with and without metabolic activation of S-9 mixture. For chromosomal aberration assay, $IC_{50}$ (50% inhibition concentration of cell growth) of the extract were determined; 792 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ without and 524 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ with S-9 mixture in Chinese hamster lung (CHL) fibroblast cell culture. Any significant chromosomal aberration was not observed in CHL cells treated with the extract at the concentrations of 792, 396 and 198 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ or 524, 262 and 131 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ in the absence or presence of S-9 metabolic activation, respectively. From these results, Aralia elata extract did not induce any harmful effects on the gene in bacteria and mammalian cell system used in these experiments.
Pseudomonas syringae pv. actinidiae (Psa) causes bacterial canker disease in kiwifruit. Antibacterial activity of plant essential oils (PEOs) originating from 49 plant species were tested against Psa by a vapor diffusion and a liquid culture assays. The five PEOs from Pimenta racemosa, P. dioica, Melaleuca linariifolia, M. cajuputii, and Cinnamomum cassia efficiently inhibited Psa growth by either assays. Among their major components, estragole, eugenol, and methyl eugenol showed significant antibacterial activity by only the liquid culture assay, while cinnamaldehyde exhibited antibacterial activity by both assays. The minimum inhibitory concentrations (MICs) of estragole and cinnamaldehyde by the liquid culture assay were 1,250 and 2,500 ppm, respectively. The MIC of cinnamaldehyde by the vapor diffusion assay was 5,000 ppm. Based on the formation of clear zones or the decrease of optical density caused by these compounds, they might kill the bacterial cells and this feature might be useful for managing the bacterial canker disease in kiwifruit.
Sodium hypochlorite alkaline was tested against Pseudomonas tolaasii causing bacterial blotch on cultivated oyster mushroom (Pleurotus ostreatus). The minimum inhibitory concentration of sodium hypochlorite against P. tolaasii contained active chlorine (AC) at 1.4 mg/l on plate assay. The highest cultivation yield was obtained from the treatment of AC 5.7 mg/l. Treatment of sodium hypochlorite at the rate of higher than AC 11.4 mg/l resulted in reduced yields at the harvest. However, the population of total bacteria on the bed surface treated with AC 5.7 mg/l of sodium hypochlorite was maintained to some extent. Inhibitory concentration against total bacteria on the bed surface was over AC 22.8 mg/l. Mushroom mycelium was damaged and its growth strongly inhibited at the concentration of AC 200 mg/l. Mushroom caps showed yellowish symptom by chemical injury by treatments of AC 74.1 mg/l or higher. Sporocarps infected by P. tolaasii were irrevocable at any concentration of sodium hypochlorite. Routine watering with AC 5.7 mg/l from mushroom initiation to the end of picking resulted in reduced bacterial blotch incidence of 40% and 86% at two mushroom farms. The treatment resulted in higher quality mushroom production compared to that conventionally watered with tap water alone.
Ingestion of food contaminated with microorganism, if not always, could lead to severe health problem. Preservatives has been added to food to prevent food from being contaminated with microorganism. But, these have potential to threaten the health. Therefore, much effort has been taken to find the safe materials showing the anti-microbial activity. In this study, we investigated the anti-bacterial activity of Oenothera lamarckiana aerial part extract against eight bacteria strain. In paper disc assay, extract inhibited the growth of Staphylococcus aureus, Methicillin-resistant S. aureus, Bacillus cereus and Shigella dysenteriae at 200 μg/disc, but not against Escherichia coli, E. coli O157:H7, Salmonella Typhi and S. enteritidis. Minimum inhibitory concentration (MIC) against Staphylococcus aureus, Methicillin-resistant S. aureus, Bacillus cereus and Shigella dysenteriae is 250, 250, 500 and 500 μg/mL, respectively. Compared with reported MIC of other plant resources, O. lamarckiana aerial part extract showed the relatively high anti-bacterial activity. O. lamarckiana aerial part could be suitable for the preservative development. But, it still remains to be studied to evaluate safety and so on.
Kim, Yeeun;Lee, Seohyeon;Park, Kyungah;Yoon, Hyunjin
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.32
no.5
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pp.602-611
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2022
The persistence of pathogenic Escherichia coli under acidic conditions poses a serious risk to food safety, especially in acidic foods such as kimchi. To identify the bacterial factors required for acid resistance, transcriptomic analysis was conducted on an acid-resistant enterotoxigenic E. coli strain and the genes with significant changes in their expression under acidic pH were selected as putative resistance factors against acid stress. These genes included those associated with a glutamate-dependent acid resistance (GDAR) system and copper resistance. E. coli strains lacking GadA, GadB, or YbaST, the components of the GDAR system, exhibited significantly attenuated growth and survival under acidic stress conditions. Accordantly, the inhibition of the GDAR system by 3-mercaptopropionic acid and aminooxyacetic acid abolished bacterial adaptation and survival under acidic conditions, indicating the indispensable role of a GDAR system in acid resistance. Intriguingly, the lack of cueR encoding a transcriptional regulator for copper resistance genes markedly impaired bacterial resistance to acid stress as well as copper. Conversely, the absence of YbaST severely compromised bacterial resistance against copper, suggesting an interplay between acid and copper resistance. These results suggest that a GDAR system can be a promising target for developing control measures to prevent E. coli resistance to acid and copper treatments.
Objective: To generate recombinant Bacillus subtilis (B. subtilis) engineered for expression of porcine ${\beta}-defensin-2$ (pBD-2) and cecropin P1 (CP1) fusion antimicrobial peptide and investigate their anti-bacterial activity in vitro and their growth-promoting and disease resisting activity in vivo. Methods: The pBD-2 and CP1 fused gene was synthesized using the main codons of B. subtilis and inserted into plasmid pMK4 vector to construct their expression vector. The fusion peptide-expressing B. subtilis was constructed by transformation with the vector. The expressed fusion peptide was detected with Western blot. The antimicrobial activity of the expressed fusion peptide and the recovered pBD-2 and CP1 by enterokinase digestion in vitro was analyzed by the bacterial growth-inhibitory activity assay. To analyze the engineered B. subtilis on growth promotion and disease resistance, the weaned piglets were fed with basic diet supplemented with the recombinant B. subtilis. Then the piglets were challenged by enteropathogenic Escherichia coli (E. coli). The weight gain and diarrhea incidence of piglets were measured after challenge. Results: The recombinant B. subtilis engineered for expression of pBD-2/CP1 fusion peptide was successfully constructed using the main codons of the B. subtilis. Both expressed pBD-2/CP1 fusion peptide and their individual peptides recovered from parental fusion peptide by enterokinase digestion possessed the antimicrobial activities to a variety of the bacteria, including gram-negative bacteria (E. coli, Salmonella typhimurium, and Haemophilus parasuis) and grampositive bacteria (Staphylococcus aureus). Supplementing the engineered B. subtilis to the pig feed could significantly promote the piglet growth and reduced diarrhea incidence of the piglets. Conclusion: The generated B. subtilis strain can efficiently express pBD-2/CP1 fusion antimicrobial peptide, the recovered pBD-2 and CP1 peptides possess potent antimicrobial activities to a variety of bacterial species in vitro. Supplementation of the engineered B. subtilis in pig feed obviously promote piglet growth and resistance to the colibacillosis.
A bacterial colony was isolated from the gut of the bean bug, Riptortus clavatus. From morphological and biochemical tests, the bacterial isolate showed the highest similarity to Staphylococcus succinus. DNA sequence of 16S rRNA gene of the bacterium supported the identification. Oral administration of penicillin G to adults of R. clavatus gave a dose-dependent mortality of adults of R. clavatus to adults along with significant decrease of the bacterial population in the gut. Similarly, three metabolites (benzylideneacetone, proline-tyrosine, and acetylated phenylalanine-glycine-valine) derived from an entomopathogenic bacterium, Xenorhabdus nematophila, also inhibited growth of the gut bacterial population and gave significant mortalities to R. clavatus. These results suggest that a gut bacterial population classified as Staphylococcus sp. is required for survival of R. clavatus and that the three bacterial metabolites had toxic effects on the bugs due to their antibacterial properties.
The bacterial number, extracellular enzyme activities and structure of bacterial community which are major constituent of aquatic ecosystem within the artificial vegetation island (AVI) were compared to those of the nearby pelagic lake waters in order to evaluate the possibility of the AVI as a eco-technological measure for water quality improvement and restoration of littoral zone in man-made reservoirs. There was not a significant difference in the total number of bacteria, but the number of active (viable) bacteria within the AVI was about 0.7 to 4.1 times higher than nearby pelagic lake water. The ratio of the number of active bacteria versus the total number of bacteria was also higher in the AVI than nearby pelagic lake water. The activities of ${\beta}$-glucosidase and phosphatase were 1.0 to 13.1 and 0.8 to 7.3 times higher respectively in the AVI than nearby pelagic lake water, showing that microorganisms were more active within the AVI. The bacterial communities of the two waters, examined by FISH method, did not indicate a clear difference in the springtime when the growth of macrophytes was immature, but during summer and fall it showed a clear difference indicating the formation of distinct bacterial community within the AVI compared to nearby lake water. From the results of this study, we conclude that AVI can contribute to make up the littoral ecosystem which show rapid cycling of matters through active detritus food chain in the dam reservoirs which have unstable aquatic ecosystem due to short hydraulic residence time and to strengthen the self-purification capacity of the lake.
This study was conducted to select and screen for an antifungal bacterial strain showing pathogen inhibitory activity against Diaporthe actinidiae, which causes stem-end rot in kiwi fruit. Four bacterial strains were isolated which strongly inhibit Diaporthe actinidiae from among two hundred and fifty bacterial strains screened from the soil where kiwi fruit were grown. By co-culturing bacterial strain #72 and the pathogen causing the stem-end rot of kiwi fruit, bacterial strain #72 showed 81.0% antifungal activity against Diaporthe actinidiae. Bacterial strain #72 was identified to be from the genus Bacillus sp. based on morphological and biochemical characterization. The bacterialization of culture broth for Bacillus sp. #72 which was sterilized at $121^{\circ}C$ for 15 minutes and than purified by $0.45{\mu}m$ membrane filter showed almost all of the antagonistic activity against Diaporthe actinidiae. We have also confirmed that in vitro treatment of Bacillus sp. #72 cultured in SD+B+P(sugar 5%, soy sauce 3%, beef extract 0.2%, peptone 0.2%) medium efficiently inhibited the growth of Diaporthe actinidiae responsible for stem-end rot in kiwi fruit.
Pedraza, Luz Adriana;Bautista, Jessica;Uribe-Velez, Daniel
The Plant Pathology Journal
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v.34
no.5
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pp.393-402
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2018
Rice world production is affected due to the growing impact of diseases such as bacterial panicle blight, produced by Burkholderia glumae. The pathogen-induced symptoms include seedling rot, grain rot and leafsheath browning in rice plants. It is currently recognized the entrance of this pathogen to the plant, from infected seeds and from environmental sources of the microorganism. However, it is still not fully elucidated the dynamics and permanence of the pathogen in the plant, from its entry until the development of disease symptoms in seedlings or panicles. In this work it was evaluated the infection of B. glumae rice plants, starting from inoculated seeds and substrates, and its subsequent monitoring after infection. Various organs of the plant during the vegetative stage and until the beginning of the reproductive stage, were evaluated. In both inoculation models, the bacteria was maintained in the plant as an endophyte between $1{\times}10^1$ and $1{\times}10^5cfu$ of B. $glumae.g^{-1}$ of plant throughout the vegetative stage. An increase of bacterial population towards initiation of the panicle was observed, and in the maturity of the grain, an endophyte population was identified in the flag leaf at $1{\times}10^6cfu$ of B. $glumae.g^{-1}$ fresh weight of rice plant, conducting towards the symptoms of bacterial panicle blight. The results found, suggest that B. glumae in rice plants developed from infected seeds or from the substrate, can colonize seedlings, establishing and maintaining a bacterial population over time, using rice plants as habitat to survive endophyticly until formation of bacterial panicle blight symptoms.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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