Plant growth promoting rhizobacteria and endophytic bacteria were isolated from different varieties of turmeric (Curcuma longa L.) from South India. Totally 50 strains representing, 30 PGPR and 20 endophytic bacteria were identified based on biochemical assays and 16S rDNA sequence analysis. The isolates were screened for antagonistic activity against Pythium aphanidermatum (Edson) Fitzp., and Rhizoctonia solani Kuhn., causing rhizome rot and leaf blight diseases in turmeric, by dual culture and liquid culture assays. Results revealed that only five isolates of PGPR and four endophytic bacteria showed more than 70% suppression of test pathogens in both assays. The SEM studies of interaction zone showed significant ultrastructural changes of the hyphae like shriveling, breakage and desication of the pathogens by PGPR B. cereus (RBacDOB-S24) and endophyte P. aeruginosa (BacDOB-E19). Selected isolates showed multiple Plant growth promoting traits. The rhizome bacterization followed by soil application of B. cereus (RBacDOB-S24) showed lowest Percent Disease Incidence (PDI) of rhizome rot and leaf blight, 16.4% and 15.5% respectively. Similarly, P. aeruginosa (BacDOB-E19) recorded PDI of rhizome rot (17.5%) and leaf blight (17.7%). The treatment of these promising isolates exhibited significant increase in plant height and fresh rhizome yield/plant in comparison with untreated control under greenhouse condition. Thereby, these isolates can be exploited as a potential biocontrol agent for suppressing rhizome rot and leaf blight diseases in turmeric.
Aphids are a large group of hemipteran pests that affect the physiology, growth, and development of plants by using piercing mouthparts to consume fluids from the host. Based an recent data, aphids modulate the microbiomes of plants and thereby affect the overall outcome of the biological interaction. However, in a few reports, aboveground aphids manipulate the metabolism of the host and facilitate infestations by rhizosphere bacteria (rhizobacteria). In this study, we evaluated whether aphids alter the plant resistance that is mediated by the bacterial community of the root system. The rhizobacteria were affected by aphid infestation of pepper, and a large population of gram-positive bacteria was detected. Notably, Paenibacillus spp. were the unique gram-positive bacteria to respond to changes induced by the aphids. Paenibacillus polymyxa E681 was used as a rhizobacterium model to assess the recruitment of bacteria to the rhizosphere by the phloem-sucking of aphids and to test the effect of P. polymyxa on the susceptibility of plants to aphids. The root exudates secreted from peppers infested with aphids increased the growth rate of P. polymyxa E681. The application of P. polymyxa E681 to pepper roots promoted the colonization of aphids within 2 days of inoculation. Collectively, our results suggest that aphid infestation modulated the root exudation, which led to the recruitment of rhizobacteria that manipulated the resistance of peppers to aphids. In this study, new information is provided on how the infestation of insects is facilitated through insect-derived modulation of plant resistance with the attraction of gram-positive rhizobacteria.
Microorganisms present in the rhizosphere soil plays a vital role in improving the plant growth and soil fertility. Many kinds of fertilizers including chemical and organic has been approached to improve the productivity. Though some of them showed significant improvement in yield, they failed to maintain the soil properties. Rather they negatively affected soil eventually, the land became unsuitable for agricultural. To overcome these problems, microorganisms have been used as effective alternative. For past few decades, plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) and arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) have been used as effective inoculants to enhance the plant growth and productivity. PGPR improves the plant growth and helps the plant to withstand biotic and abiotic stresses. AM fungi are known to colonize roots of plants and they increase the plant nutrient uptake. Spore associated bacteria (SAB) are attached to spore wall or hyphae and known to increase the AMF germination and root colonization but their mechanism of interaction is poorly known. Better understanding the interactions among AMF, SAB and PGPR are necessary to enhance the quality of inoculants as a biofertilizers. In this paper, current knowledge about the interactions between fungi and bacteria are reviewed and discussed about AMF spore associated bacteria.
한국식물병리학회 2004년도 The 2004 KSPP Annual Meeting & International Symposium
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pp.65-67
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2004
During initial interactions of bacteria with their host plants, most plants recognize the bacterial infections and repel the pathogen by plant defense mechanism. The most active plant defense mechanism is the hypersensitive response (HR) which is the localized induced cell death in the plant at the site of infection by a pathogen. A primary locus induced in gram-negative phytopathogenic bacteria during this initial interaction is the Hrp locus. The Hrp locus is composed of a cluster of genes that encodes the bacteral Type 111 machinery that is involved in the secretion and translocation of effector proteins to the plant cell. DNA sequence analysis of hrp gene in phytopathogenic bacteria has revealed a Hrp pathogenicity is]and (PAI) with a tripartite mosaic structure. For many gram-negative pathogenic bacteria, colonization of the host's tissue depends on the type III protein secretion system (TTSS) which secrets and translocates effector proteins into the host cell. Effectors can be divided into several groups including broad host range effectors, host specific effectors, disease specific effectors, and effectors inhibit host defenses. The role of effectors carrying LRR domain in plant resistance is very elusive since most known plant resistance gene carry LRR domain. Host specific effectors such as several avr gene products are involved in the determination of the host specificity. Almost all the phytopathogenic Xanthomonas spp. carry avrBs1, avrBs2, and avrBs3 homologs. Some strains of X. oryzae pv. oryzae carry more than 10 copies of avrBs3 homologs. However, the functions of all those avr genes in host specificity are not characterized well.;
In vivo expression technology (IVET) has been developed to study bacterial gene expression in Salmonella typhimurium during host infection. The expression of selected genes by IVET has been elevated in vivo but not in vitro. The selected genes turned out to be important for bacterial virulence and/or pathogenicity. IVET depends on a synthetic operon with a promoterless transcriptional fusion between a selection marker gene and a reporter gene. The IVET approach has been successfully adapted in other bacterial pathogens and plant-associated bacteria using different selection markers. Pseudomonas putida suppresses citrus root rot caused by Phytophthora parasitica and enhances citrus seedling growth. The WET strategy was adapted based on a transcriptional fusion, pyrBC'-lacZ, in P. putida to study the bacterial traits important far biocontrol activities. Several genes appeared to be induced on P. parasitica hyphae and were found to be related with metabolism and regulation of gene expression. It is likely that the biocontrol strain took a metabolic advantage from the plant pathogenic fungus and then suppressed citrus root rot effectively. The result was parallel with those from the adaptation of IVET in P. fluorescens, a plant growth promoting rhizobacteria (PGPR). Interestingly, genes encoding components for type III secretion system have been identified as rhizosphere-induced genes in the PGPR strain. The type III secretion system may play a certain role during interaction with its counterpart plants. Application of IVET has been demonstrated in a wide range of bacteria. It is an important strategy to genetically understand complicated bacterial traits in the environment.
Kim, Soohong;Kim, Hyeran;Park, Keunchun;Cho, Da Jeong;Kim, Mi Kyung;Kwon, Chian;Yun, Hye Sup
Molecules and Cells
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제44권9호
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pp.670-679
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2021
Vesicle-associated membrane proteins 721 and 722 (VAMP721/722) are secretory vesicle-localized arginine-conserved soluble N-ethylmaleimide-sensitive factor attachment protein receptors (R-SNAREs) to drive exocytosis in plants. They are involved in diverse physiological processes in plants by interacting with distinct plasma membrane (PM) syntaxins. Here, we show that synaptotagmin 5 (SYT5) is involved in plant defense against Pseudomonas syringae pv tomato (Pst) DC3000 by regulating SYP132-VAMP721/722 interactions. Calcium-dependent stimulation of in vitro SYP132-VAMP722 interaction by SYT5 and reduced in vivo SYP132-VAMP721/722 interaction in syt5 plants suggest that SYT5 regulates the interaction between SYP132 and VAMP721/722. We interestingly found that disease resistance to Pst DC3000 bacterium but not to Erysiphe pisi fungus is compromised in syt5 plants. Since SYP132 plays an immune function to bacteria, elevated growth of surface-inoculated Pst DC3000 in VAMP721/722-deficient plants suggests that SYT5 contributes to plant immunity to Pst DC3000 by promoting the SYP132-VAMP721/722 immune secretory pathway.
The growth of red pepper plants was enhanced by treatment with the rhizobacterium, Bacillus cereus MJ-1. Red pepper shoots showed a 1.38-fold increase in fresh weight (fw) and roots showed a 1.28-fold fw gain. This plant growth-promoting rhizobacterium (PGPR) has been reported to produce gibberellins (GAs). Other GAs-producing rhizobacteria, Bacillus macroides CJ-29 and Bacillus pumilus CJ-69, also enhanced the fw of the plants. They were less effective than B. cereus MJ-1, though. The endogenous GAs content of pepper shoots inoculated with MJ-1 was also higher than in shoots inoculated with CJ-29 or CJ-69. When inoculated with MJ-1, bacterial colonization rate of the roots was higher than that of roots inoculated with CJ-29 or CJ-69. These results support the idea that the plant growth-promoting effect of the bacteria also positively related with the efficiency of root colonization by the bacteria. In addition, we identified the major endogenous GAs of the red pepper as originating from both the early C-13 hydroxylation and the early non C-13 hydroxylation pathways, with the latter being the predominant pathway of GA biosynthesis in red pepper shoots.
Indole-3-acetic acid (IAA) production is a typical mechanism of plant growth promotion by some rhizobacteria. However, a functional genomic study is necessary to unravel the function and mechanism of IAA signaling during rhizobacteria-plant interactions. In this study, the expression of SlIAA1 and SlIAA9 among the auxin response genes in tomato was examined during the interaction between IAA-producing Acinetobacter guillouiae SW5 and tomato plants. When 3-day grown tomato seedlings were treated for 30 min with 10~100 µM of IAA produced by bacteria from tryptophan, the relative mRNA levels of SlIAA1 and SlIAA9 increased significantly compared with those of the control, demonstrating that IAA produced by this bacterium can induce the expressions of both genes. Inoculation of live A. guillouiae SW5 to tomato seedlings also increased the expressions of SlIAA1 and SlIAA9, with more mRNA produced at higher bacterial density. In contrast, treatment of tomato seedlings with dead A. guillouiae SW5 did not significantly affect the expression of SlIAA1and SlIAA9. When 3-day bacterial culture in tomato root exudates was administered to tomato seedlings, the relative mRNA level of SlIAA1 increased. This result indicated that the plant may take up IAA produced by bacteria in plant root exudates, which may increase the expression of the auxin response genes, with resulting promotion of plant growth.
Because of the importance of the type III protein-secretion system in bacteria-plant interaction, its function in bacterial pathogenesis of plants has been intensively studied. To identity bacterial proteins interacting with Xanthomonas hrp gene products that are involved in pathogenicity, we performed the glutathione-bead binding analysis of Xanthomonas lysates containing GST-tagged Hrp proteins. Analysis of glutathione-bead bound proteins by 1-DE and MALDI-TOF has demonstrated that Avr proteins, RecA, and several components of the type III secretion system interact with HrpB protein. This proteomic approach could provide a powerful tool in finding interaction partners of Hrp proteins whose roles in host-pathogen interaction need further studies.
Disease resistance in plants is often controlled by gene-for-gene mechanism in which avirulence (avr) gene products encoding by pathogens are specifically recognized, either directly or indirectly by plant disease resistance (R) gene products. Recent studies arising from molecular cloning of a number of R genes from various plant species that confer resistance to different pathogens and corresponding avr genes from various pathogens resulted in the accumulation of a wealth of knowledge on mode of action of gene-for-gene interaction. Specially, members of the NBS-LRR class of R genes encoding proteins containing a nucleotide binding site (NBS) and carboxyl-terminal leucine-rich repeats (LRRs) confer resistance to very different types of phytopathogens, such as bacteria, fungi, oomycetes, viruses, nematodes and aphids. This article reviewed the molecular events that occur up-stream of defense response pathway, specially, bacterial avr gene protein recognition mediated by NBS-LRR type R gene product in plant based on current research results of well studied model plants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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