We constructed a biospecific affinity surface using hyper-branched dendrimers on gold for biospecific recognition, and characterized the resulting surfaces by using confocal fluorescence microscopy. The dendrimer monolayer was firstly constructed on the mercaptoundecanoic acid SAM/Au with pentafluorophenyl ester activation and further functionalized with sulfo-NHS-biotin, an activated ester of biotin. To confirm the formation of biospecific affinity surface, FITC(fluorescein isothiocyanate)-labeled avidin was loaded onto the biotinylated dendrimer monolayer, and fluorescence images of the bound avidins were investigated with a confocal microscope. The constructed biospecific affinity surface showed a much more dense and uniform fluorescence compared to those from poly-L-lysine- and cystamine SAM-based affinity surfaces. For the dependency on the concentration of added FITC-labeled avidin on the affinity surface, derived fluorescence could be detectable from as low as $1{\mu}g/ml$, and intensified up to $50{\mu}g/ml$. Further reaction of FITC-labeled avidin layer with TMR(tetramethylrhodamine)-biocytins resulted in the efficient FRET(fluorescence resonance energy transfer) phenomenon. As an extension of the study, we attempted a patterning of the affinity surfaces on gold by microcontact printing. Fluorescence of the patterned surface demonstrated that FITC-labeled avidin molecules were specifically bound to the biotinylated patches.
Enzyme multilayers composed of avidin and biotin-labeled enzymes were prepared on the surface of electrode, through a strong affinity between avidin and biotin (binding constant: ca $10^{15} M^{-1}$). The enzyme multilayers were useful for the improvement of the performance characteristies of enzyme sensors. The output current of the enzyme sensors depended linearly on the number of enzyme layers deposited. Thus, lactate oxidase (LOx) and alcohol oxidase (AlOx) were deposited after being modified with biotin for constructing enzyme sensors sensitive to L-lactate and ethanol respectively. It was also possible to deposit two different kinds of enzymes successively in a single multilayer. The glucose oxidase (GOx) and ascorbate oxidase (AsOx) were built into a multilayer structure on a Platinum electrode. The GOx, AsOx multilayer-modified electrode was useful for the elimination of ascorbic acid interference of the glucose sensor.
오제스키병바이러스 또는 돼지콜레라바이러스에 인공 또는 자연감염된 돼지 10두를 실험동물로 공시하였으며, 감염돈의 편도선, 비장, 대뇌 및 연층(buffy coat)의 냉동 및 파라핀절편에서, avidin-biotin-peroxidase complex(ABC)를 이용하여 이들 바이러스를 면역조직화학적으로 검출하였다. 오제스키병바이러스 항원은 임파구와 대식세포의 핵내 또는 세포질에서 검출되었으며, 돼지콜레라바이러스 항원은 이들 세포의 세포질에서 검출되었고, ABC법은 양성반응 부위에서 갈색의 색소 침착을 일으켰다. 오제스키병바이러스 양성세포는 편도선과 대뇌에서 가장 빈번히 검출되었음에 반해 돼지콜레라바이러스는 비장에서 가장 빈번하였다. 그리고 연충에서도 이들 두가지 바이러스항원이 모두 검출되었다. ABC법은 이을 바이러스의 면역조직화학적 검출에 있어 특이성이 높고 배경의 비특이염색성이 낮아, 바이러스 분리동정을 거치지않고 이들 질병을 확진할 수 있는 진단수단으로 활용될 수 있을 것으로 생각된다.
Sentinel lymph node (SLN) imaging plays an important role in surgery of patients with breast cancer and melanoma. In this study, avidin (Av), a tetrameric protein glycosylated with mannose and N-acetylglucosamine molecules, was labeled with $^{64}Cu$ and then evaluated for LN imaging. $^{64}Cu$-Labeled $NeutrAvidin^{TM}$ (NAv), a non-glycosylated form of Av, was used for comparison. 1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-N,N',N'',N'''-tetraacetic acid (DOTA)-conjugated Av and NAv were prepared from the corresponding proteins and DOTA-NHS ester, which were then labeled with copper-64 and purified using PD-10 columns. The numbers of DOTA molecules conjugated to Av and NAv were 4.9 and 3.3, respectively. [$^{64}Cu$]Cu-DOTA-conjugated Av and NAv were prepared in 93% and 73% radiochemical yields, respectively. In vitro serum stability study showed that copper-64 remained stable on all radiotracers for 24 h (>97%). MicroPET/CT images showed that high radioactivity was accumulated in LNs within 15 min after footpad-injection of radiotracers. Tissue distribution data of mice demonstrated significantly higher uptake in the popliteal (PO) LN than lumbar (LU) LN for $^{64}Cu$-labeled Av (relative % ID/g excluding the injection sites: 66.2% and 26.0%, respectively) compared with those of $^{64}Cu$-labeled NAv (43.0% and 49.2%, respectively). The results of this study suggest that mannose molecules on Av enabled the radiotracer to retain in the first LN after mouse footpad-injection.
Avidin-biotin의 강한 결합력을 이용하여 금속 표면 위에 리포좀과 같은 유기 분자막의 다층 형성 과정을 QCA의 공진주파수와 공진저항의 변화를 측정하므로서 실시간 모니터링의 가능성을 검토하고, 유기 분자막이 금속 표면 위에 적층 됨에 따라 형성되는 적층 막에 대한 정보를 수집함으로서 바이오센서 시스템으로 QCA를 적용 가능함의 기초 데이터를 제공하고자 한다.
Magnetic nanoparticles prepared from an alkaline solution of divalent and trivalent iron ions could covalently bind protein via the activation of Nethyl-N-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide (EDC). Trypsin and avidin were taken as the model proteins for the formation of protein-nanoparticle conjugates. The immobilized yield of protein increased with molar ratio of EDC/nanoparticie. Higher concentrations of added protein could yield higher immobilized protein densities on the particles. In contrast to EDC, the yields of protein immobilization via the a ctivation of cyanamide were relatively lower. Nanoparticles bound with avidin could attach a single-stranded DNA through the avidin-biotin interaction and hybridize with a DNA probe. The DNA hybridization was confirmed by fluorescence microscopy observations. Immobilized DNA on nanoparticles by this technique may have widespread applicability to the detection of specific nucleic acid sequence and targeting of DNA to particular cells.
Adenosine deaminase (ADA) has been utilized as the label in devising a potentiometric homogeneous assay for riboflavin and riboflavin binding protein (RBP). The proposed homogeneous assay method employs an ADA-biotin conjugate as the signal generator and an avidin-riboflavin conjugate as the signal modulator in the solution phase. The catalytic activity of the ADA-biotin conjugate is inhibited in the presence of an excess amount of the avidin-riboflavin conjugate, and the observed inhibition is reversed in an amount proportional to the concentration of RBP added. When the analyte riboflavin is added to this mixture of ADA-biotin, avidin-riboflavin and RBP, the activity of the enzyme conjugate is re-inhibited in an amount proportional to the concentration of riboflavin. Since the enzyme label used in this system is ADA, an ammonia-producing enzyme, a potentiometric rather than photometric detection scheme is used to monitor the enzymatic activity in the assay.
This paper presents the fabrication and characterization of carbon films pyrolyzed with various photoresists for bioMEMS applications. To verify the usefulness of pyrolyzed carbon films as an electrode material in an electrochemical biosensor developed by the authors, interactions between avidin and biotin on the pyrolyzed carbon film were studied via electrochemical impedance spectroscopy based on electrostatic interactions between avidin and negatively-charged ferricyanide. The pyrolyzed carbon films were characterized using a surface profiler, a precision semiconductor parameter analyzer, a nanoindentor, scanning electron microscopy, and atomic force microscopy. Amine conjugated biotin was immobilized on the electrode using EDC/NHS as crosslinkers after $O_2$ plasma treatment to enhance functional groups on the carbon electrode pyrolyzed at $1000^{\circ}C$ with AZ9260. The detection of avidin binding with different concentrations in a range of 0.75 nM to $7.5\;{\mu}M$ to the pyrolyzed carbon electrode modified with biotin was carried out by measuring the electrochemical impedance change. The results show that avidin binds to the biotin on the electrode not by non-specific interaction but by specific interaction, and that EIS successfully detects this binding event. Pyrolyzed carbon films are a promising material for miniaturization, integration, and low-cost fabrication in electrochemical biosensors.
본 연구는 생물발광단백질인 aequorin을 표지물질로 사용해 신경전달물질인 serotonin에 대한 생물 발광면역분석법을 처음으로 개발하였다: serotonin-avidin 접합체는 Mannich 법으로 합성하였으며, 최적화된 avidin: formaldehyde: serotonin의 초기 몰 비는 1:12,000:25 이었다. 개발된 serotonin에 대한 생물발광면 역분석법은 좋은 감도(LOD of 0.68 ng/mL)와 넓은 검출 범위($5.0{\times}10^{-10}\;M\sim5.0{\times}10^{-7}\;M$)를 나타내었다(참고, 혈청 내 serotonin의 양은 $151{\pm}45\;ng$/mL 이다.). 교차반응성에 대한 연구 결과, 5-methoxytryptamine은 28.0% 의 교차반응성을 보인 반면, 3-methylindole, melatonin 그리고 5-hydroxylindole-3-acetic acid 은 교차반응성을 보이지 않았다. 또한, 혈청에서의 회수율은 만족할만한 값이 얻어졌다. 그러므로, 본 연구에서 제안된 생물발광면역분석법은 혈청 내의 serotonin 을 모니터링 하는데 좋은 분석법으로 사용될 수 있다.
본 연구는 우 casein을 신속, 정확하게 분석할 수 있는 특수 면역효소분석법을 개발하였다. Biotin이 연결된 casein과 peroxidase-conjugated avidin을 사용하였으며 면역화시킨 닭의 난황으로부터 추출한 항체를 이용하여 분석하였다. Sulfo-N-hydroxy succinimido biotin을 사용하여 casein에 biotin을 연결시키고 microplate에 고정한 뒤 peroxidase-conjugated avidin을 결합시켰다. 생산된 항체는 $\alpha$-와 $\beta$-casein에 특이적이었으며, 유청단백질, IgG, 우혈청 알부민과 교차반응은 면역효소분석법과 Western blot에서 나타나지 않았다. 본 분석법의 민감도는 2ng에서 20$\mu\textrm{g}$이었으며 Standard와 시료의 분석시 뚜렷한 평행곡선이 형성되었다. Intra-assay와 Inter-assay의 변이계수는 각각 5.5와 5.7%이었다. 그리고 비유 초기의 casein량을 조사한 결과 분만전 3일경부터 급격히 상승하는 것을 알 수 있었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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