Biofilm-related infections of Candida albicans are a frequent cause of morbidity and mortality in hospitalized patients, especially those with immunocompromised status. Options of the antifungal drugs available for successful treatment of drug-resistant biofilms are very few, and as such, new strategies need to be explored against them. The aim of this study was to evaluate the efficacy of phenylpropanoids of plant origin against planktonic cells, important virulence factors, and biofilm forms of C. albicans. Standard susceptibility testing protocol was used to evaluate the activities of 13 phenylpropanoids against planktonic growth. Their effects on adhesion and yeast-to-hyphae morphogenesis were studied in microplate-based methodologies. An in vitro biofilm model analyzed the phenylpropanoid-mediated prevention of biofilm development and mature biofilms using XTT-metabolic assay, crystal violet assay, and light microscopy. Six molecules exhibited fungistatic activity at ${\leq}0.5mg/ml$, of which four were fungicidal at low concentrations. Seven phenylpropanoids inhibited yeast-to-hyphae transition at low concentrations (0.031-0.5 mg/ml), whereas adhesion to the solid substrate was prevented in the range of 0.5-2 mg/ml. Treatment with ${\leq}0.5mg/ml$ concentrations of at least six small molecules resulted in significant (p < 0.05) inhibition of biofilm formation by C. albicans. Mature biofilms that are highly resistant to antifungal drugs were susceptible to low concentrations of 4 of the 13 molecules. This study revealed phenylpropanoids of plant origin as promising candidates to devise preventive strategies against drug-resistant biofilms of C. albicans.
4-Chlorotetrazolo[1,5-a]quinoxaline (III) was synthesized by azide (2+3) cycloaddition of 2,3-dichloroquinoxaline (II). Compound (III) on further refluxing with hydrazine hydrate furnished 4-hydrazinotetrazolo[1,5-a]quinoxaline (IV). Further refluxing of (IV) with different aromatic aldehydes in methanol yielded corresponding Schiff's bases V(a-j). Various 4-aminotetrazolo[1,5-a]quinoxaline based azetidinones VII(a-j) were synthesized by stirring the compounds V(a-j), at low temperature, with equimolar mixture of chloroacetylchloride & triethylamine in dry benzene, while 4-aminotetrazolo[1,5-a]quinoxaline based thiazolidinones VIII(a-j) were synthesized by refluxing Schiff's bases V(a-j) with thioglycolic acid in oil-bath. The structures of all the compounds were confirmed on the basis of $^1H$-NMR & FT-IR spectral data. All the newly synthesized compounds were screened for in-vitro antimicrobial activity against E. coli, S. aureus, K. pneumoniae & P. aeruginosa & antifungal activity against C. albicans. Few of them have exhibited the promising activity.
Antifungal compounds from Bacillus polyfermenticus CJ6 were purified using SPE, preparative HPLC, and reverse phase-HPLC. Antifungal compounds from B. polyfermenticus CJ6 were separated into three fractions (8, B, C) using preparative HPLC. LC/MS analysis of antifungal peaks suggested that B. polyfermenticus CJ6 produces lipopeptides; two kinds of iturin A ($C_{14}$, $C_{15}$), three kinds of surfactins ($C_{13}$, $C_{14}$, $C_{15}$), four kinds of fengycin A ($C_{14}$, $C_{15}$, $C_{16}$, $C_{17}$) and two kinds fengycin B ($C_{16}$, $C_{17}$). The antifungal activity of fraction 8, which was presumed as inturin A, was found to be stable after the pH, heat or proteolytic enzyme treatment, but it was unstable at 50-$70^{\circ}C$ for 24 hr. The antifungal activity of fraction B, which presumed as surfactins and fengycin A, was found to be stable after the heat treatment, but it was unstable in the pH 3.0 and after the protease (type I) or ${\alpha}$-chymotrypsin treatment. The antifungal activity of fraction C, which was presumed as fengycin A and B, was found to be stable in the pH 3.0-9.0 range and the heat treatment, but it was unstable with the treatment of protease (type I). The amino acid composition of the purified peaks 8-1 and 8-2 were Asx, Tyr, Gln, Pro, and Ser in a molar ratio of 3:1:1:1:1, which showed the same amino acid composition as iturin. From these results, we confirmed that antifungal compounds from B. polyfermenticus CJ6 most likely belonged to iturin A as well as surfactins and fengycins. As lipopeptides are known to act in a synergistic manner, the antifungal compounds from B. polyfermenticus CJ6 might have potential uses in biotechnology and biopharmaceutical applications.
Lim, Seong Mi;Yoon, Mi-Young;Choi, Gyung Ja;Choi, Yong Ho;Jang, Kyoung Soo;Shin, Teak Soo;Park, Hae Woong;Yu, Nan Hee;Kim, Young Ho;Kim, Jin-Cheol
The Plant Pathology Journal
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v.33
no.5
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pp.488-498
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2017
The aim of this study was to identify volatile and agardiffusible antifungal metabolites produced by Bacillus sp. G341 with strong antifungal activity against various phytopathogenic fungi. Strain G341 isolated from four-year-old roots of Korean ginseng with rot symptoms was identified as Bacillus velezensis based on 16S rDNA and gyrA sequences. Strain G341 inhibited mycelial growth of all phytopathogenic fungi tested. In vivo experiment results revealed that n-butanol extract of fermentation broth effectively controlled the development of rice sheath blight, tomato gray mold, tomato late blight, wheat leaf rust, barley powdery mildew, and red pepper anthracnose. Two antifungal compounds were isolated from strain G341 and identified as bacillomycin L and fengycin A by MS/MS analysis. Moreover, volatile compounds emitted from strain G341 were found to be able to inhibit mycelial growth of various phytopathogenic fungi. Based on volatile compound profiles of strain G341 obtained through headspace collection and analysis on GC-MS, dimethylsulfoxide, 1-butanol, and 3-hydroxy-2-butanone (acetoin) were identified. Taken together, these results suggest that B. valezensis G341 can be used as a biocontrol agent for various plant diseases caused by phytopathogenic fungi.
A lactic acid bacterium having antifungal activity was isolated from kimchi. It was identified as Lactobacillus plantarum based on its morphological and biochemical properties, and 16S rRNA sequence, and designated as Lb. plantarum AF1. This isolate inhibited the growth of Aspergillus flavus ATCC 22546, A. fumigatus ATCC 96918, A. petrakii PF-1, A. ochraceus PF-2, A. nidulans PF-3, Epicoccum nigrum KF-1, and Cladosporium gossypiicola KF-2 under a dual culture overlay assay. Also, the antimicrobial activity was found to be active against various species of Gram-positive and Gram-negative bacteria. The antifungal activity was found to be stable after heat ($121^{\circ}C$, 15 min) and proteolytic enzyme treatment, but it was unstable over pH 5.0. The antifungal compound(s) was estimated to have a low molecular mass (below 3,000 Da).
The Streptomyces padanus isolate TH04, isolated from mummified peaches, showed strong antifungal activity to Monilinia fructicola. The inhibition activity of the isolate TH04 to mycelial growth and spore germination at 1% concentration of sub-antifungal powder made from culture suspension (CS) was ranged from 79.8% to 81.0% and from 73.9% to 75.8% to M. fructicola four strains, respectively. In the test of antifungal activity in mixed culture of the isolate and M. fructicola, inhibition rate was 7.5%, 86.8% and 94.0% in 0.01, 0.1, and 1% concentration of CS containing bacterial cell of the isolate, respectively. On apples (cultivar; Fuji), the control values of the isolate TH04 crude filtrates (0.1 and 1%) were 85.9% and 100%, respectively. The results suggest that the isolate TH04 indicate development possibility as biocontrol agent of brown rot caused by M. fructicola with the study on delivery method and fermentation condition to produce an antifungal compound.
The MJP1 bacterial strain, which possesses antifungal activity, was isolated from meju and identified as Bacillus subtilis based on its morphological and biochemical properties, as well as its 16S rRNA sequence. Antimicrobial activity was found against various species of Gram-positive bacteria, yeasts, and molds, including food-spoilage microorganisms. The antifungal activity was found to be stable after heat and proteolytic enzyme treatment, and in the pH range of $6.0{\sim}10.0$. The antibacterial activity was stable in the pH range of $6.0{\sim}10.0$, but about 50% of the activity was lost after 24 hr at $30^{\circ}C$. The antibacterial compound was also inactivated by proteolytic enzyme treatment, indicating its proteinaceous nature. The apparent molecular masses of the partially purified antifungal and antibacterial compounds, as indicated by using the direct detection method in Tricine-SDS-PAGE, were approximately 2.4 kDa and 4.5 kDa, respectively. These studies suggest that B. subtilis MJP1 produces two bacteriocin-like substances with antifungal and antibacterial activities.
A bacterial strain antagonistic to some fungal phytopathogens was isolated from the stem of a Persimmon tree in Yeongam, Korea. This bacterium was identified as Bacillus subtilis by 16S rRNA gene sequencing and designated as B. subtilis GDYA-1. In in vivo experiment, the fermentation broth exhibited antifungal activities against Magnaporthe oryzae on rice plants, Phytophthora infestans on tomato plants, and Puccinia recondita on wheat plants. We isolated one antifungal compound and its chemical structure was determined by mass and $^1H$-NMR spectral data. The antifungal substance was identified as benzoic acid. It inhibited mycelial growth of M. oryzae, Rhizoctonia solani, Sclerotinia sclerotiorum, and P. capsici with minimum inhibition concentration (MIC) values, ranging from 62.5 to 125 ${\mu}g/ml$. Moreover, the substance effectively suppressed Phytophthora blight of red pepper caused by P. capsici in a pot experiment. To the author's knowledge, this is the first report on the antifungal activity of benzoic acid against phytopathogenic fungi. Benzoic acid and B. subtilis GDYA-1 may contribute to environmental-friendly protect crops from phytopathogenic fungi.
Kim, Min-Soo;Lee, Kyoung-Tae;Jeon, Sung-Min;Ka, Kang-Hyeon
The Korean Journal of Mycology
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v.41
no.4
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pp.236-242
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2013
It is known not only that antifungal compounds such as sparassol, methyl orsellinate (ScI) and methyl-dihydroxy-methoxy-methylbenzoate (ScII) were produced during submerged culture from Sparassis crispa, but also that ScI and ScII were appeared higher antifungal activity than sparassol. The aim of this study, antifungal compounds of Sparassis latifolia were purified from mycelial culture media and identified by using NMR and ESI-MS. Based on HPLC analysis, methyl orsellinate and sparassol were detected at 15 min and 31 min of retention time, respectively. The compounds derived from S. latifolia were classified into four production patterns according to their strains. The strains originated from host plant Larix kaempferi and Pinus koraiensis showed different patterns of compound production, whereas the strains originated from host plant P. densiflora and Abies holophylla showed almost same patterns. There was no correlation between mycelial biomass and compound production. KFRI 645 strain from L. kaempferi exhibited higher methyl orsellinate production (0.170 mg/ml). Sparassol was produced by KFRI 747 from P. densiflora (0.004 mg/ml). Thus, our result revealed the new fact that methyl orsellinate and sparassol have different patterns according to the strains originated from different host plants.
Hibiscus syriacus L. (Malvaceae) is widely distributed over Korean, China, India and Siberia. The dried flower of Hibiscus syriacus is used as a folk medicine for curing of hematochezia, dysentery, obstruction due to wind-phlegm, regurgitation, and vomiting of food, and the dried root bark is used antipyretic, anthelmintic and antifungal agents. From a chloroform extract of root bark of this plant, compound I, II, and III were isolated and the structures were elucidated by various spectroscopic analyses. These compounds were identified as syringaresinol. E-N-feruloyltyramine, and Z-N-feruloyltyramine, respectively and were isolated from this plant for the first time. Compound II and III exhibited lipid peroxidation inhibitory activities with $IC_{50}$ of 15.5 and 28.6 ${\mu}g/ml$, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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